Unter einem"bioartifiziellen"Implantat verstehen wir hier ein mit den Mitteln des sogenannten"tissue engineering"gewonnenes mit technischen Mitteln nachgebildetes Gewebe aus biologischen Materialien. Im weiteren Sinne werden darunter hier auch solche Konstrukte gefasst, in die künstliche, nicht biologische Materialien (Kunststoffe, Polymere) mit eingearbeitet sind, jedoch sofern sie nicht biologisch abbaubar sind bevorzugt an vollständig von biologischen Materialien verdeckter Position oder an einer Position, an der keine ungünstigen immunologischen Reaktionen auf das künstliche Material zu erwarten sind, wie z. B. an vom Körper nach außen oder zum Verdauungstrakt gerichteten Stellen.

Als Grundlage für das bioartifizielle Implantat oder Gewebe werden biologische Matrixsubstanzen, in der Regel Kollagen, oder biologisch verträgliche, ggf. biologisch abbaubare Kunststoffe verwendet ; diese können in eine Struktur gepresst oder gegossen werden. Unter einer biologischen Gewebematrix wird eine solche verstanden, die nach Azellularisierung eines durch Entnahme aus einem Körper gewonnenen natürlichen biologischen Materials als"Gerüst"mit natürlicher Struktur zurückbleibt. Die verschiedenen Matrices werden anschließend-gegebenenfalls nach Zwischenlagerung, Einfrieren oder sonstigen Verarbeitungsschritten-mit lebensfähigen Zellen besiedelt (rebesiedelt). Die verschiedenen für die Besiedlung benötigten Zellen werden häufig und wenn möglich aus autologen Zellen expandiert und in vitro kultiviert.

Gelegentlich werden als Matrix auch biologisch verträgliche Kunststoffe verwendet, die durch Besiedlung mit körpereigenen Zellen maskiert werden, um eine Abstoßung zu vermeiden. Wenn biologisch abbaubare Kunststoffe verwendet werden, hofft man, dass diese im Körper mit der Zeit zu natürlichem körpereigenem Material umgebildet werden (Remodelling). Diese Versuche sind jedoch häufig unbefriedigend.

Die Erfindung bezieht sich speziell auf ein bioartifizielles Trachea-Implantat.

Zahlreiche Ursachen erfordern eine Resektion und Rekonstruktion der Trachea.

Hierunter fallen kongenitale Fehlbildungen, wie die langstreckige Trachealstenose, die Agenesie oder Atresie, tracheo-ösophageale Fisteln oder Traumata im Sinne eines Intubationstraumas oder nach Unfällen. Ferner machen primäre und sekundäre Tumoren (Ösophagus CA, Schilddrüsen CA) im Rahmen der Tumorchirurgie eine angemessene Resektion notwendig, die heute ausschließlich mit Re-Anastomosierungen der Trachea einhergehen (Backer CL, Mavroudis C, Dunham ME, Holinger L., Intermediate-term results of the free tracheal autograft for long segment longenital tracheal stenosis. J Pediatr Surg 2000 Jun ; 35 (6) : 813-8 ; discussion 818-9).

Insbesondere die Carina-Resektion weist die höchste postoperative Mortalität in der Thoraxchirurgie auf. Etwa 17 % der Patienten versterben intraoperativ, bei ca. 39 % der Patienten treten postoperative Komplikationen auf, die in etwa 43 % der Fälle zum Tode führen. Zu den häufigsten Komplikationen zählt die Insuffizienz oder Stenose der Anastomose (17,2 %). Das 5-Jahresüberleben liegt bei ca. 42 % (Mitchell 2001). Der wesentliche Grund für die Komplikationen ist die hohe Spannung, die an der Trachea-Anastomose entsteht. Mit zunehmender Länge des zu reserzierenden Trachealsegments steigt die Spannung an der Anastomose und sinkt der Operationserfolg.

Aus diesem Grund sind Resektionen auf unter 50 % der Trachealänge (max. ca.

4-6 cm) beschränkt. Hierdurch wird die Indikation zum operativen Eingriff deutlich limitiert. Durch zahlreiche Ausschlusskriterien entgeht einem großen Teil der Patienten die Möglichkeit einer chirurgischen Intervention. Für die überwiegende Mehrzahl Betroffener stellt die Verfügbarkeit eines geeigneten Trachealersatzes somit eine lebenswichtige Therapieoption dar.

Zahlreiche Versuche sind unternommen worden, die Trachea mittels synthetischer Polypropylen-Gewebe (Marlix mesh tubes) (Sekine T, Nakamura T, Liu Y, Ueda H, Matsumoto K, Shimizu Y. Collagen coated Y-shaped prosthesis for carinal replacement promotes regeneration of the trachea epithelium. ASAIO J 2000 Jul-Aug ; 46 (4) : 421-5 ; Sekine T, Nakamura T, Shimizu Y, Liu Y, Ueda H, Matsumoto K, Experimental carinal replacement with an Y-shaped collagen-conjugated prosthesis. J Thorac Cardiovasc Surg 2000 Jun ; 48 (3) : 125-9) oder biologischen Conduits (z. B. Aortensegmente, kryokonservierte Homografts) (Kunachak S, Kulapaditharom B, Vajaradul Y, Rochanawutanon M, Cryopreserved, irradiated trachea homograft transplanation for laryngotracheal reconstruction in human beings. Otolaryngol Head Neck Surg 2000 Jun ; 122 (6) : 911-6) zu versorgen, jedoch fand bis heute keine Methode klinische Akzeptanz. Bei allen diesen Verfahren treten Nekrosen im Bereich der Anastomosen und somit Luftlecks auf, da diese Implantate nicht mit den patienteneigenen Gefäßen verbunden werden konnten.

Für den Ersatz von Trachealgewebe nach notwendigen Resektionen steht somit derzeit kein Implantat zur Verfügung. Es besteht eine dringendes Bedürfnis an Implantaten, mit denen die postoperativen Komplikationen vermieden und die bislang hohe intraoperative Mortalität verringert werden könnte.

Der Erfindung liegt daher die Aufgabe zugrunde, ein bioartifizielles Trachea- Implantat und ein Verfahren zu seiner Herstellung zur Verfügung zu stellen, das die bei bisherigen Implantaten bestehenden Nachteile vermeidet und eine naturähnliche Anbindung und Versorgung des Implantats am Implantationsort ermöglicht.

Zur Lösung dieser Aufgabe werden bei dem erfindungsgemäßen Verfahren lebensfähige Zellen mit Stützfunktion zwischen einer inneren röhren-oder schlauchförmigen biologischen oder künstlichen Matrix und einer koaxial um dieser angeordneten äußeren, mit einer Gefäßversorgung ausgestatteten, tubulären Gewebematrix eingebracht und bis zur Bildung eines Zellverbandes auf der Matrix bzw. zwischen den Matrices kultiviert. Dies kann unter üblichen Kulturbedingungen bei 37 °C im Inkubator geschehen.

Bei der äußeren tubulären Gewebematrix handelt es sich erfindungsgemäß um eine einem Spenderkörper entnommene allogene, xenogene oder autologe a) azellularisierte oder teilazellularisierte oder b) azellularisierte oder teilazellularisierte und wenigstens teilweise rebesiedelte oder c) native tubuläre, d. h. rohr-oder schlauchförmige, biologische vaskularisierte Gewebematrix, die vorzugsweise aus dem Magen-Darm-Trakt stammt und insbesondere dem Jejunum oder Ileum mit anhängendem, anschlussfähigem Gefäßast entnommen worden ist.

Wenn möglich sollte das für die äußere tubuläre Gewebematrix isolierte Gewebe autolog sein, d. h. dem Patienten entnommen sein, der später das Trachea-Implantat erhalten soll. Alternativ kommen allogene Materialien von menschlichen Organspendern oder auch xenogene Gewebematrices in Frage.

Die äußere tubuläre Gewebematrix besitzt eine primäre Gefäßversorgung, deren Struktur auch bei einer etwaigen Azellularisierung-die, wie nachfolgend noch beschrieben wird, nicht in jedem Falle erforderlich ist-erhalten bleibt. Bei der Isolation des Gewebes wird wenigstens ein funktionsfähiger Gefäßast, der auch ursprünglich (d. h. primär) mit dem Gewebe verbunden ist, zusammen mit dem Gewebe entnommen und mit diesem präpariert. Der wenigstens eine Gefäßast oder Gefäßbaum kann in besonders bevorzugter Ausführung so ausgebildet sein, dass er mit einem intramuralen, d. h. die Wandschichten der Gewebematrix durchziehenden, Kapillarnetz verbunden ist. Es kann sich um ein klein-, mittel-oder größerlumiges Gefäßnetz handeln, wobei darauf zu achten ist, dass der Gefäßstiel chirurgisch an das Blutgefäßsystem des Implantat- Empfängers angeschlossen (anastomosiert) werden kann.

Der Gefäßast oder-baum besteht im allgemeinen aus einer zuführenden Arterie und einer abführenden Vene. Die Gewebematrix kann auch mit bis zu 6, vorzugsweise 2 bis 5 Gefäßästen verbunden sein. Besonders bevorzugt ist der Gefäßast mit einem dazugehörigen Netzwerk aus kleinlumigen Gefäßen versehen. Die im Einzelfall zu wählende Anzahl von Gefäßästen hängt u. a. von der Länge und Größe des Implantates ab. Das gesamte vorstehend beschriebene System von Blutgefäßen stellt die Gefäßversorgung der äußeren tubulären biologischen Gewebematrix dar.

Die Azellularisierung der bei diesem Verfahren verwendeten biologischen Matrices kann mit dem Fachmann hinlänglich bekannten Verfahren, d. h. mit allen bekannten Mitteln, wie chemischen, biochemischen, physikalischen, mechanischen oder sonstigen Verfahren, durchgeführt werden und braucht daher hier nicht gesondert beschrieben zu werden. Häufig erfolgt die Azellularisierung durch enzymatischen Zellverdau, bzw. mit schonenden chemischen Mitteln in einer Lösung, in die die Matrix eingelegt wird. Eine zumindest teilweise mechanische Ablösung der Zellen, vor allem oberer Schichten, ist möglich.

Bei Verwendung allogener oder xenogener Matrices werden Matrix und Gefäßäste vorzugsweise vollständig azellularisiert. Bei Verwendung einer autologen Matrix dagegen, in der Regel einer patienteneigenen Darmmatrix, kann eine Azellularisierung mit anschließender autologer Rebesiedlung in Einzelfällen unterbleiben oder durch Co-Kultur erfolgen. Dadurch kann die Besiedlung des Kapillarnetzes und des Gefäßsystems mit den Gefäßästen praktisch vollständig erhalten bleiben. Die geeigneten Azellularisierungsverfahren kann der Fachmann zweckentsprechend auswählen.

Die nach teilweiser oder vollständiger Azellularisierung erhaltene Gewebematrix kann anschließend mit ebenfalls dem Fachmann bekannten Besiedlungsverfahren mit biologischen, lebensfähigen, d. h. zu Anwachsen und weiterem Wachstum befähigten, Zellen besiedelt werden.

Als innere Matrix kann eine Röhre aus biokompatiblem Material oder eine azellularisierte oder teilazellularisierte, ggf. wenigstens teilweise rebesiedelte, oder native röhrenförmige Gewebematrix verwendet werden. Sofern es sich um ein biologisches Material handelt, gilt für die Azellularisierung und Rebesiedlung grundsätzlich das für die äußere tubuläre Matrix gesagte. Alternativ, kann ein biokompatibles Material, z. B. aus Kunststoff verwendet werden. In Frage kommen u. a. Röhren aus Kunstfasergeweben, in die Zellen beidseitig gut einwachsen können.

Alternativ können auch glatte Röhren oder Folien mit vorzugsweise abweisender Oberfläche als innere Stützmatrix verwendet werden, wobei diese nach Abschluss des Verfahrens wieder entfernt werden kann. Auf der inneren Implantat-Oberfläche liegen dann nach Abschluss des Verfahrens die vorzugsweise autologen Zellen mit Stützfunktion frei. Diese können anschließend mit einer weiteren Deckschicht besiedelt werden, beispielsweise mit Flimmerepithel.

Die innere, biologische oder künstliche röhrenförmige Matrix, die einen kleineren Querschnittsdurchmesser hat als die äußere Gewebematrix (die mit Gefäßen versorgt ist) wird für das Verfahren so innerhalb der äußeren tubulären Gewebematrix angeordnet, dass zwischen beiden ein ring-bzw. wiederum schlauchförmiger, tubulärer Zwischenraum bleibt oder leicht gebildet werden kann, in den nun Zellen mit Stützfunktion eingebracht werden.

Unter"Zellen mit Stützfunktion"sind im Sinne dieser Erfindung solche Zellen zu verstehen, die auch natürlicherweise im Körper eine Stützfunktion ausüben (differenzierte Zellen eines Stützgewebes), in erster Linie Knorpelzellen-wie sie in natürlicher Trachea vorhanden sind. Die Knorpelzellen können auch unter Zumischung anderer Zellen mit Stützfunktion, wie z. B. Knochenzellen, verwendet werden. Hierdurch kann die Festigkeit des Implantats variiert werden. Vorzugsweise werden Knorpelzellen (Chondrozyten) verwendet, weiter vorzugsweise aus Rippenknorpel. Es können auch zu den gewünschten Zellen entwickelbare Vorläuferzellen, vorzugsweise mesenchymale Stammzellen, eingesetzt werden, die im Laufe der Kultivierung innerhalb dieses Verfahrens an Ort und Stelle zu den gewünschten Zellen mit Stützfunktion ausreifen.

Für das Einbringen zwischen die innere röhren-oder schlauchförmige Matrix und die äußere mit der Gefäßversorgung ausgestattete Matrix können die Zellen mit Stützfunktion wie üblich in Suspension in Nährlösung oder Blut vorliegen, oder aber in einer Zubereitung mit biologischen oder synthetischen Hilfsstoffen, wie z. B. Fibrinkleber, Kollagen usw. und/oder weiteren Zellen. Die Zubereitung oder die Suspension kann eine viskose oder pastöse Konsistenz haben und beispielsweise Gelbildner und/oder Polymere enthalten.

Das Einbringen erfolgt mit üblichen Mitteln, beispielsweise durch Einspritzen. In einer bevorzugten Ausführungsform kann die äußere Gewebematrix auf der inneren Matrix vor dem Einbringen der Zellen mit Stützfunktion mehrfach ringförmig abgebunden werden. Dies geschieht beispielsweise durch Schnüre oder Schläuche (Abbinder) von außen. Die Zellen werden danach-wie oben beschrieben in Nährlösung oder einer Zubereitung-in einen oder vorzugsweise mehrere ringförmige Zwischenräume zwischen äußerer und innerer Matrix eingespritzt.

Zusätzlich können weitere Zellen gemeinsam mit den Zellen mit Stützfunktion oder vor oder nach dem Einbringen der Zellen mit Stützfunktion in den ringförmigen Zwischenraum eingebracht werden. Diese oder andere weitere Zellen können auch in zusätzlichen Schritten außen auf die äußere Gewebematrix mit dem außenliegenden wenigstens einen Gefäßast und/oder innen auf die Innenseite der inneren röhrenförmigen Matrix (lumina) aufgebracht und aufgesiedelt werden.

Als weitere Zellen können je nach Bedarf die verschiedensten Zellen verwendet werden, insbesondere Fibroblasten und/oder Mesenchymalzellen, wie glatte Muskelzellen, Endothelzellen oder Epithelzellen. Die für die Besiedlung ausgewählten Zellen können autologe, allogene oder xenogene Zellen sein, äußerst vorzugsweise jedoch autologe bezogen auf den späteren Implantat- Empfänger. Es ist vorteilhaft, bereichsweise und/oder in mehreren Schichten mit verschiedenen Zellen zu besiedeln, so wie dies dem morphologischen Aufbau und der Funktion des natürlichen Trachealgewebes entspricht, welches dem Fachmann bekannt ist. Zu nennen ist hier auch die Besiedlung der inneren/luminalen Schicht mit Flimmerepithel.

Auf die Rebesiedlung von außen kann verzichtet werden, wenn die Matrix nativ und autolog ist und vom Körper nach Implantation selbst umgebildet werden soll oder azellularisiert ist und vom Körper nach Implantation selbst besiedelt werden soll.

Auf die Rebesiedlung von innen kann verzichtet werden, wenn die innere Matrix künstlich ist, xenogen oder allogen und azellularisiert, oder autolog.

Ob auf die in vitro Besiedlung verzichtet wird, kann der Fachmann nach den Anforderungen des Einzelfalls entscheiden, eine Rebesiedlung mit autologen Zellen wird jedoch im allgemeinen zu empfehlen sein.

Falls erwünscht können Mischungen verschiedener Zellarten verwendet werden.

Die Zellen können innerhalb von Zellzubereitungen mit Hilfsstoffen vermengt aufgegeben werden. Die Zellen können auch vermengt mit Polymeren, wie Polycarbonaten, Polylactaten usw. verwendet werden. Insbesondere können Kollagene oder z. B. Fibrin (-kleber) verwendet werden.

Bei Verwendung einer allogenen oder xenogenen Gewebematrix wird der wenigstens eine Gefäßast vorzugsweise mit Endothelzellen besiedelt. Falls die innere Matrix ebenfalls biologisch durch Gewebeentnahme erhalten wurde, werden im Inneren (lumina) vorzugsweise autologe vaskuläre Endotheizellen aufgesiedelt.

Die für eine Besiedlung zu verwendenden Zellen stammen vorzugsweise aus biotisch gewonnenem Material, insbesondere vom vorgesehenen Implantat- Empfänger. Sie werden in vitro mit herkömmlichen Verfahren expandiert und mit im Stand der Technik bekannten Verfahren kultiviert.

Bereits während der Besiedlung können die aufgesiedelten Zellen mit Hilfe der angeschlossenen Gefäßversorgung, nämlich dem einen oder den mehreren Gefäßästen, mit Nährstoffen und Sauerstoff versorgt werden. Dadurch wird zunächst das Anwachsen und Einwachsen erleichtert und beschleunigt. Gerade bei größeren Zellzahlen und stärkeren Schichtdicken ermöglicht die Versorgung über das erfindungsgemäß vorhandene primäre Gefäßsystem erst eine ausreichende und dauerhafte Versorgung mit Nährstoffen, Mineralien und Sauerstoff. Ein frühzeitiges Absterben des Implantats durch Zelltod und degenerativen Umbau kann so verhindert werden. Nur so kann die Vitalität komplexer Zellverbände, Gewebe bzw. Organe erhalten werden.

Durch das Besiedeln der Gewebematrix mit Zellen wird ein erfindungsgemäßes bioartifizielles, primär vaskularisiertes Trachea-Implantat erhalten. Dieses hat den Vorteil, dass es im Gegensatz zu herkömmlichen synthetischen, biologischen und bioartifiziellen Geweben primär vaskularisiert ist. Zeitgleich mit der Transplantation kann es daher an den Blutkreislauf des Transplantatempfängers angeschlossen werden. Die Zellen in allen Wandschichten des Implantates, also auch in den tiefergelegenen Arealen, können mit Nährstoffen versorgt werden und sterben nicht ab. Damit wird im Gegensatz zu allen bisher verfügbaren Trachea-Implantaten eine frühzeitige Degeneration, insbesondere eine Insuffizienz oder Stenose im Bereich der Anastomosen, vermieden und zusätzlich die langfristige Funktionsfähigkeit des Transplantats bzw. Implantats sichergestellt.

Wenn wenigstens ein vollständiger Gefäßast bereits bei Entnahme des Gewebes für die äußere Gewebematrix als intakter Gefäßstamm mit angeschlossenem intramuralen Kapillarnetz isoliert wird und während der weiteren Verfahrensschritte funktionsfähig gehalten wird, hat das erfindungsgemäße bioartifizielle, primär vaskularisierte Trachea-Implantat den Vorteil, bereits während der Herstellung die in vivo vorliegende biochemische zelluläre Zusammensetzung und morphologische geometrische Struktur zu besitzen. Damit werden das Einwachsen des Transplantats bzw. Implantats sowie eine den natürlichen Bedingungen und Anforderungen entsprechende Funktionsaufnahme im Empfänger erleichtert.

Ein weiterer großer Vorteil des erfindungsgemäßen bioartifiziellen, primär vaskularisierten Trachea-Implantats besteht darin, dass außer autologen Zellen auch autologes Gewebematerial verwendet werden kann (vorzugsweise Darmabschnitte des Empfängers), so dass eine Abstoßung vermieden wird.

Das erfindungsgemäße Trachea-Implantat kann eine ganze Trachea, z. B. auch mit Bifurkation, oder ein Teilstück sein. Der Trachea-Ersatz kann bedarfsgerecht für den Empfänger zugeschnitten sein, als längeres oder kurzeres Tracheastück oder beliebiger Trachea Abschnitt.

Da durch die hier beschriebene Technik die Möglichkeit besteht, die Länge des Trachea-Ersatzes anzupassen, können Zugkräfte an den Anastomosen vermieden werden, die ursächlich sind für das postoperative Auftreten von Stenosen oder Insuffizienzen im Bereich der Anastomosen.

Der erfindungsgemäße Trachea-Ersatz kann zur Behandlung jeder Erkrankung der Trachea (und des Bronchialbaums) eingesetzt werden, die mit z. B.

Kompression oder Destruktion der Trachea einhergeht und die z. B. eine Resektion der Trachea oder eines Trachealsegments erforderlich macht.

Besonders bevorzugte Einsatzgebiete sind u. a. der Trachea-und Bronchialersatz bei pulmonalen und trachea Fehlanlagen oder Fehlbildungen, wie z. B. langstreckige Trachealstenose, Agenesie oder Atresie, tracheo-ösophageale Fisteln. Bei Erkrankungen, nach Verletzungen oder Verlust durch Trauma, Tumor oder Entzündungen der Trachea oder eines Bronchus.

Durch die Erfindung wurde erstmals ein vitales vaskularisiertes Trachea- lmplantat zur Verfügung gestellt, das sich gerade im Bereich der Anastomosen gut angleicht und damit Probleme, wie sie bei Einsatz von künstlichen Trachea- Prothesen entstehen, vermeidet. Das erfindungsgemäße Trachea-Implantat ermöglicht, selbst große Defekte spannungsfrei und langfristig suffizient zu rekonstruieren. Es ist zu erwarten, dass durch das neue Trachea-Implantat erstmals die intra-und postoperative Komplikationsrate (Morbidität) und damit verbunden die Mortalitätsrate bei trachealen Erkrankungen enorm gesenkt werden kann. Folgeoperationen nach Trachea-Operationen im Kindesalter werden durch eigenes Längenwachstum überflüssig gemacht. Die Erfindung besitzt daher auch erhebliche gesundheitsökonomische Bedeutung.

Durch die Erfindung eröffnen sich völlig neue Behandlungsmöglichkeiten von kurz-und insbesondere von langstreckigen Trhealstenosen,-neoplasien,-fisteln etc.

Im folgenden wird die Erfindung anhand eines Beispiels näher dargestellt. Das Beispiel dient rein illustrativen Zwecken. Dem auf dem Gebiet geschulten Fachmann werden daraus andere mögliche Ausführungsformen unmittelbar deutlich werden.

Zunächst wird das allgemeine Vorgehen anhand einer Skizze erläutert.

Figur 1 zeigt eine schematische Darstellung des Aufbaus des bioartifiziellen, primär vaskularisierten Trachea-Implantats im Längsschnitt.

Das im ganzen mit 100 bezeichnete Implantat zeigt eine innere, röhrenförmige Matrix 10, die nicht vaskularisiert ist und das Implantat während der Herstellung, zur inneren Oberfläche hin als eine Stützmatrix abschließt. Außen auf der inneren, röhrenförmigenmatrix 10 befindet sich, koaxial um die Matrix 10 angeordnet, eine äußere, mit einer Gefäßversorgung 20 ausgestattete Gewebematrix 30. Diese kann zu Beginn der Implantatherstellung auf der inneren Matrix 10 aufliegen, oder sie kann in einem geeigneten Reaktor im Abstand zur inneren Matrix 10 so eingespannt sein, dass sich ein ringförmiger Zwischenraum zwischen den beiden Matrizes 10 und 30 befindet. Die Gefäßversorgung 20 geht von einem eine Vene (V) und eine Arterie (A) umfassenden Gefäßast aus. Figur 1 zeigt weiter ringförmig aufgesiedelte Bereiche aus Zellen mit Stützfunktion 40, insbesondere Chondrozyten aus Rippenknorpel. Die ringförmigen Bereiche können beispielsweise erhalten werden, indem eine Stützzellen- (Chondrozyten-) Suspension nach Abbinden ringförmiger Bereiche zwischen die zunächst aufeinanderliegenden Matrizes 10 und 30 eingespritzt wird. Nach dem Einspritzen werden die Zellen auf der Matrix bzw. zwischen den Matrizes bis zur gewünschten Ringstärke bei 37 °C inkubiert. Weiterhin ist bei dem schematisch gezeigten Ausführungsbeispiel auf der Innenseite der inneren, röhrenförmigen Matrix 10 ein Flimmerepithel 50 aufgebracht.

AnwendungsbeisPiel : Spendertiere : Als Organspender für die Matrix-Gewinnung und zur Isolation von u. a.

Knorpelzellen wurden weibliche Schweine im Alter von 3 Monaten verwendet.

Für die Matrix-Herstellung wurde ein Darmsegment mit anhängendem Gefäßast isoliert und mit 4'C kalter Nebacetin-Lösung (1 g Nebacetin/1000 ml NaCI 0,9%) intravasal und intraluminal perfundiert. Für den Transport wurde das vaskularisierte Darmsegment ebenfalls in 4 ° C kalter Nebacetin-Lösung gelagert. Für die Chondrozyten-Gewinnung fand Rippenknorpel Verwendung.

Hierzu wurden beidseits die zwei unteren Rippen entnommen und ebenfalls in 4 °C kalter Nebacetin-Lösung gelagert und transportiert.

Die Organentnahmen sowie alle Operationen am Tier fanden stets unter den üblichen sterilen OP-Bedingungen statt.

Zellisolierung : Der Rippenknorpel wurde in 1 mm3-Stücke zerkleinert, in PBS-Lösung gewaschen und mit 1 mg/ml Typ-II-Kollagenase (Seromed, Berlin, Germany) über 16 h in einem Erlenmeyerkolben bei 37 °C im Wasserbad inkubiert. Durch Filtration durch ein Nylonsieb (Porengröße 200 m, Reichelt Chemie, Heidelberg) wurden Chondrozyten von unverdautem Knorpel getrennt.

Inaktivierung der Kollagenase fand mittels Suspendieren in Zellmedium (HAM- F12,10% FCS, 1 % Penicillin/Streptomycin) und Zentrifugieren statt. Zur Vitalitätsprüfung und Zellzahlbestimmung wurde die Trypan-Blau-Färbung verwendet.

3dimensionale Zellkultivierung : In eine Kulturvorrichtung (Bioreaktor) wurde eine nicht vaskularisierte Matrixröhre gespannt, über die eine vaskularisierte Matrix wie oben erhalten gezogen wurde. In den spaltförmigen Zwischenraum wurden die Chondrozyten injiziert, suspendiert in Nährmedium oder Fibrinkleber mit ca. 10'Zellen/ml. Die Kulturvorrichtung wurde mit Zellmedium (HAM-F12,10 % FCS, 1 % Penicillin/Streptomycin) gefüllt, und es wurde bei 37 °C für 4 bis 6 Wochen inkubiert. Dabei wurde die Matrix außen und innen mit Zellmedium umspült. alternative Ausführungsformen : Die Chondrozyten wurden auch im Gemisch mit Knochenmarkszellen oder Knochenzellen gegeben. Das Verhältnis ist frei einstellbar.

Nach Abschluss der Chondrozyten-Besiedlung wurden außen auf das Implantat (auf seiten des Gefäßasts) Endothelzellen aufgegeben und luminal vaskuläre Endotheizellen.