GEBIET DER ERFINDUNG

Die vorliegende Erfindung liegt auf dem Gebiet der Probenvorbereitung und Probenpositionierung für die Mikroskopie. Insbesondere betrifft sie eine Kapillarzelle und eine Anordnung, welche die Kapillarzelle enthält, sowie ein Verfahren zur Aufnahme, zur Positionierung und zur Untersuchung einer fluoreszierenden, aufgehellten mikroskopischen Probe mithilfe eines Fluoreszenzmikroskopes (Epi-, Konfokal-, und Lichtscheiben-Mikroskopes).

VERWANDTER STAND DER TECHNIK

Zur Untersuchung von biologischen oder medizinischen Proben wird im Stand der Technik die Fluoreszenzmikroskopie verwendet. In der medizinischen Forschung wird die Fluoreszenzmikroskopie beispielsweise eingesetzt, um die Wirkung (z. B. die Toxizität), die eine bestimmte Substanz auf eine Probe hat, zu beobachten.

Als Proben werden unter anderem Zellkulturen, bestimmte Embryos, z. B. die von Fadenwürmern, von Zebrafischen oder von Mäusen, und Biopsien verwendet.

In der Fluoreszenzmikroskopie werden die zu untersuchenden Strukturen typischerweise mit einem Fluoreszenzfarbstoff markiert. Eine andere Möglichkeit besteht darin, Proben zu verwenden, die bereits bestimmte Fluoreszenzfarbstoffe enthalten.

Damit fluoreszenzmikroskopische Probenbilder aufgenommen werden können, muss die Probe mit Licht einer bestimmten Wellenlänge beleuchtet werden, die zu einer Anregung des Fluoreszenzfarbstoffes führt. Infolge der Anregung emittiert der Fluoreszenzfarbstoff Fluoreszenzlicht, dessen Wellenlänge im Allgemeinen von der Wellenlänge des anregenden Beleuchtungslichtes abweicht. Mithilfe eines Mikroskops kann das Fluoreszenzlicht detektiert und somit die mit dem Fluo- reszenzfarbstoff behafteten Probenstrukturen sichtbar gemacht werden. Um nur die Probenstrukturen aus einer bestimmten Probenebene abzubilden und die aus anderen Probenebenen bzw. -schichten auszublenden, kann die Probe lokal in einer Ebene beleuchtet werden, sodass nur Strukturen aus der beleuchteten Probenebene zur Fluoreszenzlichtemission angeregt werden. Als Folge der selektiven Lichtebenenbeleuchtung zeigt die mikroskopische Abbildung des Fluoreszenzlichtes daher nur Probenstrukturen der beleuchteten Ebene. Man spricht von Lichtscheiben-Fluoreszenz-Mikroskopie.

Um eine dreidimensionale Darstellung von fluoreszierenden Probenstrukturen zu erhalten, kann die Lichtscheibe relativ zu einer stationären Probe oder die Probe relativ zu einer stationären Lichtscheibe verschoben werden. Die Fluoreszenzbilder aus unterschiedlichen Probenschichten können dann zu einer dreidimensionalen Darstellung der entsprechenden Probenstruktur zusammengefügt werden.

Um möglichst scharfe Bilder der Probenstruktur zu erhalten, sollte das aus dem Probeninneren emittierte Fluoreszenzlicht innerhalb der Probe möglichst wenig gestreut werden. Eine Möglichkeit besteht in Verwendung von Proben, die von Natur aus durchsichtig sind, wie beispielsweise kleine Fischembryonen. Eine andere Möglichkeit besteht darin, die Probe durch ein spezielles Aufhellungsverfahren (engl. Clearing) transparent werden zu lassen, ohne dass dabei die zu untersuchenden Probenstrukturen zerstört werden.

Für die Aufhellung wird die Probe zunächst dehydriert und anschließend in einem Aufhellungsmedium eingelegt. Das Aufhellungsmedium dringt in die Probe ein und gleicht den Brechungsindex der intrazellulären und der extrazellulären Bestandteile aneinander an. Dies hat zur Folge, dass Licht, das die Probe durchläuft, wesentlich weniger gestreut wird, die Probe also transparent wird. Üblicherweise wird die Probe mit Alkohol dehydriert. Das Aufhellungsmedium, in dem die Probe nach der Dehydration eingelegt wird, weist einen hohen, zur biologischen Probe passenden Brechungsindex auf. Diese Medien sind meist unpolare - und damit wasserlösliche - Lösungsmittel, weshalb die Probe normalerweise erst entwässert wird. Ein typisches Aufhellungsmedium besteht aus einem Teil Benzylalkohol und zu zwei Teilen aus Benzylbenzoat (Abkürzung: BABB).

Nachdem die Fluoreszenzprobe aufgehellt wurde, kann sie mithilfe eines Fluoreszenzmikroskops, beispielsweise eines Lichtscheiben-Fluoreszenz-Mikroskops, untersucht werden. Anstatt eines Lichtscheiben-Fluoreszenz-Mikroskops können auch andere Arten von Fluoreszenzmikroskopen verwendet werden, beispielsweise Epi- oder Konfokal- Fluoreszenzmikroskope. In der Lichtscheibenmikroskopie wird die Probe normalerweise in eine Kammer eingebracht, die mit einem Immersionsmedium gefüllt ist. Das Immersionsmedium hat einen hohen Brechungsindex, der dazu führt, dass die Divergenz des Fluoreszenzlichtes beim Austritt aus der Probe, bzw. beim Austritt aus einem Medium, in dem die Probe eingebettet ist, nicht vergrößert wird. Das Immersionsmedium gestattet eine höhere Auflösung der Probenbilder.

Die Aufnahme bzw. die Positionierung der Probe innerhalb der Kammer ist oft sehr aufwendig. Ein weiteres Problem besteht darin, dass das Immersionsmedium, das sich in der Kammer befindet, mit der Probe in Kontakt treten und die Aufhellung beeinträchtigen kann. In dem Artikel „Ultramicroscopy Reveals Axonal Transport Impairments in Cortical Motor Neurons at Prion Disease", Ermolayev et al, Biophysical Journal, Vol. 96, 3390-3398, April 2009 wird beschrieben, dass eine Probe für eine fluoreszenzmikroskopischen Untersuchung mithilfe eines Acrylamidklebers an einem Glasstab befestigt wurde. Durch Verschieben des der Glasstabes konnte die Probe innerhalb einer Kammer positioniert werden.

Eine andere Möglichkeit zur Probenaufnahme und zur Probenpositionierung für die Untersuchung mit einem Mikroskop wird in der Patenanmeldung US 2010/0067104 AI beschrieben. Die US 2010/0067104 AI offenbart einen Probenhalter, der sich in einer Kammer befindet, die mit einer Immersionsflüssigkeit gefüllt werden kann. Die Probe ist in einem Agarosegelzylinder eingebettet, der eine höhere Solidität als das Immersionsmedium hat, das den Agarosegelzylinder umgibt. Der Agarosezylinder ist mit dem Probenbehälter verbunden und steht bei einer Untersuchung zumindest teilweise mit dem Immersionsmedium in Kontakt. Mithilfe eines Verschiebetisches und eines weiteren Antriebes kann der Agarosegelzylinder zusammen mit der Probe relativ zu einem Detektionsobjektiv positioniert werden. Die bekannten Vorrichtungen und Verfahren zur Aufnahme, zur Positionierung und zur Untersuchung von aufgehellten mikroskopischen Fluoreszenzproben erlauben zwar die Aufnahme von dreidimensionalen Darstellungen, sind jedoch mit einigen Nachteilen behaftet. Beispielsweise kann die Aufhellung der Probe durch das Immersionsmedium beeinträchtigt werden. Weiterhin ist im Stand der Technik die Probenaufnahme recht aufwendig.

Auch ist aus dem Stand der Technik keine Aufnahme bekannt, die für eine Untersuchung von lebenden mikroskopischen Proben geeignet ist.

ZUSAMMENFASSUNG DER ERFINDUNG

Der vorliegenden Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, eine Vorrichtung und ein Verfahren für eine verbesserte Probenaufnahme, -positionierung und -Untersuchung zur Verfügung zu stellen, welche die oben genannten Nachteile vermeiden.

Diese Aufgabe wird gelöst durch eine Kapillarzelle nach Anspruch 1, durch eine Anordnung nach Anspruch 17 und 18 sowie durch ein Verfahren nach Anspruch 20 und 23. Vorteilhafte Weiterbildungen sind in den unabhängigen Ansprüchen angegeben.

Die erfindungsgemäße Kapillarzelle umfasst einen Kapillarabschnitt sowie einen oberen und einen unteren Verschlussabschnitt, die mit dem Kapillarabschnitt verbunden sind. Der Kapillarabschnitt umfasst eine Wand, die zumindest abschnittsweise eben und transparent ist. Die Wand umschließt ein Probenvolumen. Die Kapillarzelle ist geeignet, in einem Kammervolumen positioniert zu werden. Der Kapillarabschnitt ist durch den oberen und den unteren Verschlussabschnitt verschlossen, sodass das Probenvolumen von dem Kammervolumen getrennt ist.

Die erfindungsgemäße Kapillarzelle bietet für die Aufnahme und die Untersuchung einer aufgehellten mikroskopischen Fluoreszenzprobe eine Reihe von Vorteilen.

Dadurch, dass das Probenvolumen von dem Kammervolumen getrennt ist, kann die Probe innerhalb des Probenvolumens in einem bestimmten Probenmedium eingebettet sein, das sich von dem Immersionsmedium in dem Kammervolumen unterscheidet. Diese Trennung zwischen Probenvolumen und Kammervolumen ist von großer praktischer Bedeutung. In dem Probenvolumen können sich beispielsweise toxische Substanzen befinden, mit denen die Probe behandelt werden soll. Weiterhin kann sich in dem Probenvolumen eine giftige organische Lösung zur Anpassung des Brechungsindex befinden. Eine Ausbreitung dieser giftigen Substanzen in das vergleichsweise große und offene Kammervolumen ist unerwünscht und wird durch die Trennung verhindert. Auch werden viel kleinere Mengen der entsprechenden Substanz benötigt, um innerhalb des Probenvolumens eine bestimmte Konzentration einzustellen.

Die Trennung verhindert jedoch nicht nur den Austritt des Probenmediums, sondern auch, dass das Immersionsmedium aus dem Kammervolumen mit der Probe in Kontakt tritt. Beispielsweise könnte andernfalls die Aufhellung der Probe, die innerhalb des Probenvolumens in einem Aufhellungsmedium eingebettet ist, durch das Immersionsmedium verschlechtert werden. Die erfindungsgemäße Kapillarzelle verhindert diesen negativen Effekt und stellt damit eine langfristige Probenaufhellung und hohe Abbildungsqualität sicher.

Generell lässt sich sagen, dass es die Trennung von Probenvolumen und Kammervolumen überhaupt erst ermöglicht, Immersionsaufnahmen von einer Probe durchzuführen, die sich in einer probenspezifischen sowie einer beliebig und unabhängig vom Immersionmedium einstellbaren Umgebung befindet.

Ein weiterer Vorteil des abgeschlossenen Probenvolumens besteht darin, dass der Aufenthaltsort der Probe auf das Probenvolumen begrenzt wird. Damit wird verhindert, dass die Probe wegdiffundiert und in dem Kammervolumen verloren geht. Dies ist besonders vorteilhaft bei der Untersuchung von lebenden Proben, die sich bei einer Untersuchung mit der erfindungsgemäßen Kapillarzelle nicht aus dem Probenvolumen herausbewegen können.

Die erfindungsgemäße Kapillarzelle wirkt sich zudem positiv auf die Bildqualität aus. Gekrümmte Übergangsflächen zwischen unterschiedlichen Medien im Strahlengang des zu detektierenden Fluoreszenzlichtes oder im Beleuchtungsstrahlengang führen zu optischen Verzerrungen. Diese optischen Verzerrungen beeinträchtigen die Aufnahmequalität. Dadurch, dass bei der erfindungsgemäßen Kapillarzelle die Wand des Kapillarabschnitts zumindest abschnittsweise eben und transparent ist, kann das Fluoreszenzlicht der Probe die Kapillarzelle verzerrungsfrei verlassen. Somit können mit der erfindungsgemäßen Kapillarzelle hochaufgelöste und realitätsgetreue Probenbilder mit einem Minimum an Aberrationen aufgenommen werden.

Die zumindest abschnittsweise ebene und transparente Wand ist auch vorteilhaft für eine lokale Fluoreszenzanregung einer zu beleuchtenden Lichtebene. Aufgrund der ebenen und transparenten Wand wird der Beleuchtungsstrahl nicht verzerrt und die lokale Anregung kann erheblich präziser erfolgen als dies bei einer Beleuchtung durch gekrümmte Flächen möglich wäre.

Die erfindungsgemäße Kapillarzelle eignet sich insbesondere für die Probenuntersuchung mit einem Lichtmikroskop, dessen Illuminations- und Detektionsachse rechtwinklig zueinander stehen, und/oder mit einem Lichtscheiben-, einem Epi- oder einem Konfokal- Fluoreszenzmikroskop .

Vorzugsweise ist die genannte Verbindung zwischen dem oberen und/oder dem unteren Verschlussabschnitt und dem Kapillarabschnitt lösbar. In diesem Fall weist der Kapillarabschnitt eine obere und/oder eine untere Öffnung auf, die durch den oberen bzw. den unteren Verschlussabschnitt verschlossen werden kann. Um die Probe in das Probenvolumen einzubringen, kann die Probe zunächst auf dem unteren Verschlussabschnitt abgelegt werden, beispielsweise mithilfe einer Pipette oder eines Mikromanipulators. Anschließend kann der Kapillarabschnitt mit dem unteren Verschlussabschnitt verbunden werden und damit die Probe in das in das Probenvolumen eingebracht werden. Eine andere Möglichkeit besteht darin, die Probe durch die obere Öffnung des Kapillarabschnitts in das Probenvolumen einzubringen.

In einer vorteilhaften Weiterbildung umfasst die Kapillarzelle einen Einlass und einen Aus- lass. Durch den Einlass kann beispielsweise die zu untersuchende Probe in das Probenvolumen eingebracht werden. Weiterhin können durch den Einlass dem Probenvolumen auch Medien zur Probenbehandlung zugeführt werden. Entsprechend kann durch den Auslass ein derartiges Medium aus dem Probenvolumen abgeführt werden. Die Zu- und Abfuhr des Mediums durch den Einlass bzw. den Auslass können auch gleichzeitig erfolgen, sodass innerhalb des Probenvolumens ein Fluss erzeugt wird. Der Fluss kann - wie unten beschrieben - zur Probenzentrierung eingesetzt werden.

Mithilfe des Einlasses und des Auslasses können die Umgebungsbedingungen der Probe präzise und wunschgemäß eingestellt oder verändert werden. Diese Einstellung bzw. Veränderung der Probenumgebung kann auch während der Untersuchung durchgeführt werden, ohne dass die Probe dazu entnommen werden muss. Vorzugsweise sind Einlass und Auslass in unterschiedlichen Verschlussabschnitten angeordnet, z. B. der Einlass im oberen und der Auslass im unteren Verschlussabschnitt oder umgekehrt. Dadurch kann der Fluss in Längsrichtung des Kapillarabschnittes erzeugt werden.

Vorzugsweise umfasst die Kapillarzelle einen ersten und einen zweiten ebenen Wandabschnitt. Diese beiden Wandabschnitte weisen in unterschiedliche Richtungen, sodass sowohl die Beleuchtung der Probe als auch die Detektion des Fluoreszenzlichtes verzerrungsfrei in den entsprechenden Richtungen erfolgen kann. Dabei tritt durch den ersten ebenen Wandabschnitt von der Probe ausgehendes Fluoreszenzlicht aus der Kapillarzelle aus und Anregungslicht durch den zweiten ebenen Wandabschnitt in die Kapillarzelle ein.

In einer bevorzugten Ausführungsform weist der Kapillarabschnitt der Kapillarzelle einen polygonalen, insbesondere einen quadratischen oder einen oktogonalen Querschnitt auf. Diese Querschnittsformen sind besonders vorteilhaft. Einerseits kann das von der Probe ausgehende Fluoreszenzlicht den Kapillarabschnitt in unterschiedlichen Richtungen durch ebene Wandabschnitte verlassen. Dadurch kann - bei einer entsprechenden Drehung der Kapillarzelle - die Probe in verschiedenen Perspektiven mit hoher Qualität abgebildet werden. Andererseits kann die Probe auch in den verschiedenen, oben genannten Perspektiven durch ebene Wandabschnitte präzise und lokal beleuchtet werden. Dabei kann die Probe insbesondere aus Richtungen beleuchtet werden, die von der Detektionsrichtung abweichen. Beispielsweise können bei einem regelmäßigen oktogonalen Querschnitt die Beleuchtung und die Detektion im rechten Winkel zueinander und durch ebene Wandabschnitte erfolgen. Bei einer Drehung des Kapillarabschnitts mit oktogonalem Querschnitt mitsamt der Probe können für acht unterschiedliche Probenperspektiven hochaufgelöste Bilder durch die entsprechenden ebenen Wandabschnitte beobachtet werden. Für jede der acht Probenperspektiven wird die Probe insbesondere durch einen entsprechenden ebenen Wandabschnitt beleuchtet. Dabei muss weder die Richtung der Detektion noch die der Beleuchtung geändert werden.

Vorzugsweise ist die Probe auf ein kleines Probenvolumen, insbesondere auf einen kleinen lateralen Bereich eingeschränkt, sodass die innere Querschnittsfläche des Kapillarabschnitts vorzugsweise < 10 mm ² und besonders vorzugsweise < 7 mm ² ist.

Die Querschnittsfläche sollte allerdings nicht beliebig klein sein, damit auch entsprechend größere Proben untersucht werden können. Außerdem sollte ausreichend Probenvolumen zur Verfügung stehen, um eine definierte Probenumgebung bereitstellen und aufrechterhalten zu können. Daher ist die innere Querschnittsfläche des Kapillarabschnitts vorzugsweise > 0,1 mm ² und besonders vorzugsweise > 0,2 mm ² .

Es hat sich gezeigt, dass diese Bereiche einen optimalen Kompromiss zwischen einer möglichst starken Probeneingrenzung, einem ausreichend großen Probenvolumen, einer einfachen Handhabung sowie einer guten Herstellbarkeit darstellen.

Die Wandstärke des Kapillarabschnitts ist vorzugsweise < 200 μιη und besonders vorzugsweise < 100 μιη und/oder vorzugsweise > 30 μιη und besonders vorzugsweise > 50 μιη. Die Erfinder haben erkannt, dass diese Bereiche einen idealen Kompromiss zwischen Herstellbarkeit und Stabilität der Kapillarzelle sowie geringer optischer Aberration bieten.

Um die Kapillarzelle einfacher für die Untersuchung ausrichten zu können, weist der Kapillarabschnitt vorzugsweise eine regelmäßige polygonale Querschnittsfläche auf. Dabei weichen die Winkel zwischen benachbarten Seitenflächen des Kapillarabschnitts vorzugsweise nur wenig voneinander ab. Vorzugsweise weichen die Winkel von ihrem Mittelwert weniger als ± 0,5°, besonders vorzugsweise weniger als ± 0,2° ab.

In einer vorteilhaften Weiterbildung besteht die Wand des Kapillarabschnitts zumindest abschnittsweise aus einer gasdurchlässigen Membran. Dadurch kann die Konzentration eines gelösten Gases (z. B. Sauerstoff oder C0 ₂ ) und/oder der pH- Wert innerhalb des Probenvolumens entsprechend der Gaskonzentration außerhalb der Kapillarzelle eingestellt oder verändert werden. So kann auf einfache Art und Weise eine definierte Probenumgebung geschaffen oder die Probenumgebung definiert verändert werden. Zudem werden die Überwachung und die Beobachtung der Gaskonzentration erheblich vereinfacht. Beispielsweise kann die Sauerstoff- oder die C0 ₂ -Konzentration innerhalb der Kapillarzelle durch Messung außerhalb der Kapillarzelle bestimmt werden.

Die Wand der Kapillarzelle besteht vorzugsweise zumindest abschnittsweise aus qualitativ hochwertigem optischem Glas. Das optische Glas besitzt vorzugsweise eine hohe Gleichmäßigkeit des Brechungsindex. Geeignet ist beispielsweise die Glassorte Schott N-F45 mit einem Brechungsindex n von n > 1,46 und/oder von n < 1,52. Dadurch kann die Bildqualität zusätzlich erhöht werden, da Streueffekte und Verzerrungseffekte weiter reduziert werden.

In einer vorteilhaften Weiterbildung der Kapillarzelle ist die Oberfläche der Wand zumindest abschnittsweise behandelt. Die Behandlung kann beispielsweise darin bestehen, dass die Oberfläche mit einer Verspiegelung und/oder mit einer Sperrfilterschicht und/oder mit einer Antireflexbeschichtung versehen wird. Die Beschichtung kann dabei in einem Bedampfungs- verfahren, einem Sol-Gel- Verfahren oder einem Galvanisierungsverfahren durchgeführt werden. Durch die Antireflexbeschichtung können störende Reflektionen, beispielsweise von Fluoreszenzlicht der Probe, an den Wandbereichen der Kapillarzelle verringert und die Erzeugung von Spiegelbildern der Probe vermindert werden. Durch die Sperrfüterschicht können bestimmte Wellenlängenbereiche des Fluoreszenzlichts ausgeblendet werden oder die Anregung der Probe für bestimmte Wellenlängenbereiche nicht angeregt werden. Dadurch kann z. B. eine Probe, bei der verschiedene Strukturen mit verschiedenen Fluoreszenzfarbstoffen präpariert sind, selektiv bezüglich einer bestimmten Struktur untersucht werden. Darüber hinaus, wird durch die Sperrfilterschicht die Detektion von Streulicht minimiert. Durch die Verspiegelung eines Wandabschnitts der Kapillarzelle kann die Justierung des Beleuchtungslaserstrahls vereinfacht werden und der Beleuchtungsstrahl senkrecht oder annähernd senkrecht zu einem Wandabschnitt der Kapillarzelle ausgerichtet werden.

Weiterhin ist es vorteilhaft, wenn die Wand der Kapillarzelle eine Markierung aufweist, um die Kapillarzelle einfacher innerhalb des Kammervolumens positionieren zu können. Mithilfe der Markierung kann die Kapillarzelle schnell und einfach an eine vorbestimmte Referenzposition verschoben werden. Die Referenzposition kann dabei beispielsweise optisch - etwa mit einem Positionierungslaser - angezeigt werden.

Zur Zentrierung und Fixierung der Probe innerhalb der Kapillarzelle umfasst die Kapillarzelle vorzugsweise einen Probenzentrierer. Der Probenzentrierer ist vorzugsweise im Bereich des unteren Verschlussabschnitts angeordnet. Der Probenzentrierer besitzt eine Selbstzentrierungsfunktion, durch welche die Probe beim Absinken innerhalb der Kapillarzelle zentriert wird. Die Probe wird dabei durch den Probenzentrierer aufgrund der Schwerkraft passiv zentriert. Ein aktives Zentrieren ist nicht erforderlich. Dies entspricht dem Prinzip der kinematischen Lagerung.

Um die kinematische Lagerung der Probe zu verbessern, wird zum Beispiel - wie oben beschrieben - innerhalb der Kapillarzelle ein gerichteter Fluss bzw. eine Strömung erzeugt, durch den eine Kraft auf die Probe ausübt wird. Durch diese Kraft wird die Probe mithilfe des Probenzentrierers an einem Beobachtungsort festgehalten. Die kinematische Lagerung ist besonders vorteilhaft für die Untersuchung von lebenden Proben, die sich ohne die kinematische Lagerung frei in dem Probenvolumen bewegen können.

Der Probenzentrierer enthält vorzugsweise ein Führungsmittel, mit mindestens einer Füh- rungsfläche und/oder Führungskante. Die Führungsfläche und/oder Führungskante ist zur Längsachse des Kapillarabschnitts geneigt und läuft radial auf einen Beobachtungsort zu. Dadurch wird eine Probe, die sich in Längsrichtung des Kapillarabschnitts auf den Beobachtungsort zubewegt - etwa aufgrund der Schwerkraft oder einer Strömung - durch die Führungsfläche bzw. die Führungskante in radialer Richtung zum Beobachtungsort geführt. Die Führungsfläche und/oder Führungskante wirkt wie eine schiefe Ebene, die eine Probenbewegung in Längsrichtung des Kapillarabschnitts zumindest teilweise in eine radiale Bewegung umlenkt. Die radiale Bewegungsrichtung ist senkrecht zur Längsrichtung und zur Wand des Kapillarabschnitts. Am Beobachtungsort wird eine weitere Bewegung Probe in Längsrichtung geometrisch verhindert, sodass die Probe am Beobachtungsort aufgrund der auf sie einwirkenden Kräfte zentriert bleibt.

In einer vorteilhaften Weiterbildung weist das Führungsmittel mindestens eine erste Aussparung auf, die derart angeordnet ist, dass vom Beobachtungsort ausgehendes Licht die erste Aussparung durchlaufen und durch den zugehörigen genannten ersten ebenen Wandabschnitt aus dem Kapillarabschnitt austreten kann. Durch die erste Aussparung wird sichergestellt, dass das von der Probe ausgehende Fluoreszenzlicht zumindest teilweise verzerrungsfrei aufgenommen werden kann - und nicht vollständig durch die Führungsmittel geblockt oder nicht-ebene Wandabschnitte verzerrt wird.

Vorzugsweise weist das Führungsmittel auch mindestens eine zweite Aussparung auf. Die zweite Aussparung ist derart angeordnet, dass Licht, das den Beobachtungsort durch den genannten zweiten ebenen Wandabschnitt beleuchtet, die zweite Aussparung durchlaufen kann. Dadurch wird sichergestellt, dass die Probe trotz Zentrierung im Probenzentrierer ausreichend und verzerrungsfrei beleuchtet werden kann.

Weiterhin umfasst die Erfindung eine Anordnung zur Positionierung einer mikroskopischen Probe. Die Anordnung umfasst eine Kapillarzelle nach einer der zuvor beschriebenen Ausführungsformen und einen Verschiebetisch, wobei die Kapillarzelle mit dem Verschiebetisch verbindbar ist, insbesondere mithilfe einer Magnetverbindung. Einerseits kann die Kapillarzelle aufgrund der Magnetverbindung schnell und ausreichend fest auf dem Verschiebetisch befestigt werden. Andererseits ist die Verbindung schnell und einfach lösbar, sodass die Kapillarzelle auch ohne aufwendige Umbaumaßnahmen entfernt werden kann, beispielsweise für den Austausch der Probe oder für eine Veränderung der Probenumbebung. Mithilfe des Verschiebetisches kann die Kapillarzelle innerhalb der Kammer positioniert werden, insbesondere um ihre Längsachse gedreht und/oder in XYZ-Richtung verschoben werden. Zusätzlich umfasst die Erfindung eine Anordnung zur Positionierung und zur Untersuchung einer mikroskopischen Probe, insbesondere einer aufgehellten, fluoreszierenden Probe mithil- fe eines Lichtscheiben-Fluoreszenz-Mikroskopes. Diese Anordnung umfasst die zuvor genannte Anordnung zur Positionierung und zusätzlich eine Kammer. Die Kammer umfasst eine zumindest abschnittsweise transparente Kammerwand, die das genannte Kammervolumen definiert. Der Verschiebetisch ist zusammen mit der Kapillarzelle zumindest teilweise innerhalb des Kammervolumens angeordnet, sodass eine Probe für eine Untersuchung innerhalb des Kammervolumens positioniert werden kann.

Das Kammervolumen kann beispielsweise mit einer Immersionsflüssigkeit - etwa mit Wasser - gefüllt werden. Da die Kammerwand zumindest abschnittsweise transparent ist, kann von der Probe ausgehendes Fluoreszenzlicht die Kammer verlassen und außerhalb der Kammer aufgenommen werden. Mithilfe des Verschiebetisches kann die Kapillarzelle - und damit die Probe - innerhalb der Kammer positioniert werden. Die Positionierung kann in einer Drehung und/oder in einer Verschiebung in eine beliebige Raumrichtung bestehen. Da die Kapillarzelle verschlossen ist, ist das Kammervolumen von dem Probenvolumen getrennt. Durch die Trennung wird eine Beeinträchtigung der Probe durch das Immersionsmedium ausgeschlossen. Außerdem wird ausgeschlossen, dass das Immersionsmedium durch das Probenmedium verunreinigt oder vergiftet wird.

Vorzugsweise umfasst die Kammerwand ein erstes Fenster und ein zweites Fenster. Durch das erste Fenster kann die Probe, die sich innerhalb der Kapillarzelle befindet, beleuchtet und zur Fluoreszenz angeregt werden. Das von der Probe ausgehende Fluoreszenzlicht kann die Kammer durch das zweite Fenster verlassen und außerhalb der Kammer aufgenommen werden. Die Fester sind dem Beobachtungsort vorzugsweise aus verschiedenen Richtungen zugewandt sind. Dadurch wird sichergestellt, dass das detektierte Fluoreszenzlicht nicht von dem wesentlich intensiveren Beleuchtungslicht überlagert wird. Dies hat den Vorteil, dass kein zusätzlicher Filter benötigt wird, um das zu detektierende Fluoreszenzlicht von dem Beleuchtungslicht zu befreien. Die vorliegende Erfindung umfasst weiterhin ein Verfahren zum Einbringen einer mikroskopischen Probe in eine Kapillarzelle nach einer der oben beschriebenen Ausführungsformen. Dazu wird die Probe zunächst, beispielsweise mit einer Pipette oder mit einem Mikromanipu- lator, auf dem unteren Verschlussabschnitt, abgelegt. Anschließend wird der untere Verschlussabschnitt mit dem Kapillarabschnitt verbunden. Dabei wird die Probe durch die untere Öffnung des Kapillarabschnitts in das Probenvolumen eingebracht und die Kapillarzelle verschlossen. Wenn sich der Probenzentrierer auf dem unteren Verschlussabschnitt befindet, kann die Probe bei diesem Verfahrensschritt auch direkt auf dem Probenzentrierer abgelegt werden, bevor die Kapillarzelle mit dem unteren Verschlussabschnitt verschlossen wird.

Alternativ kann die Probe auch durch die obere Öffnung des Kapillarabschnitts in die Kapillarzelle eingebracht werden. Dazu wird der obere Verschlussabschnitt der geschlossenen Kapillarzelle entfernt und die Probe - ggf. zusammen mit einem Probenmedium - in das Probenvolumen eingebracht bzw. eingefüllt. Anschließend wird der Kapillarabschnitt wieder mit dem oberen Verschlussabschnitt verbunden und die Kapillarzelle geschlossen.

Eine weitere Alternative besteht darin, die Probe durch den Einlass in das Probenvolumen einzubringen. Diese Alternative kann auch mit erfindungsgemäßen Kapillarzellen verwendet werden, bei denen die Verbindung zwischen dem Kapillarabschnitt und den Verschlussabschnitten nicht lösbar ist und bei denen die Verschlussabschnitte permanent mit dem Kapillarabschnitt verbunden sind.

Vorzugweise wird in dem erfindungsgemäßen Verfahren die Probe nach dem Einbringen in das Probenvolumen - und vor der Untersuchung - innerhalb der Kapillarzelle zentriert. Die Zentrierung erfolgt dadurch, dass die Probe aufgrund einer Strömung bzw. eines Flusses des Probenmediums oder aufgrund der Schwerkraft in Längsrichtung des Kapillarabschnitts auf dem Beobachtungsort zubewegt wird, wobei die Probe mithilfe des Führungsmittels des Probenzentrierers in radialer Richtung zum Beobachtungsort geführt wird. Die Strömung kann dabei wie zuvor beschrieben erzeugt werden.

In einer vorteilhaften Weiterbildung umfasst das erfindungsgemäße Verfahren weiterhin ein Einleiten eines Mediums zur Probenbehandlung. Das Einleiten des Mediums zur Probenbehandlung erfolgt dabei durch den Einlass. Dabei kann das Einleiten vor oder während der Untersuchung der Probe erfolgen. Wenn das Einleiten während der Untersuchung erfolgt, kann beispielsweise untersucht werden, welche Auswirkung eine Veränderung der Probenumgebung auf die Probe hat.

Weiterhin umfasst die Erfindung ein Verfahren zur Untersuchung einer aufgehellten mikroskopischen Fluoreszenzprobe mit der zuvor beschriebenen Anordnung mithilfe eines Licht- scheiben-Fluoreszenz-Mikroskopes. Das Verfahren umfasst die Schritte des Positionierens der Fluoreszenzprobe, des Beleuchtens der Fluoreszenzprobe und des Detektierens von Fluoreszenzlicht.

Das Positionieren der Fluoreszenzprobe erfolgt dabei mithilfe des Verschiebetisches, der die Kapillarzelle um ihre Längsachse dreht und/oder in XYZ-Richtung verschiebt. Die Fluoreszenzprobe wird durch das erste Fenster beleuchtet, sodass die Fluoreszenzprobe zur Fluoreszenz angeregt wird. Das der Probe entstammende Fluoreszenzlicht wird außerhalb der Kammer hinter dem zweiten Fenster detektiert. Beleuchtungs- und Detektionsrichtung weichen voneinander ab, sodass das detektierte Fluoreszenzlicht nicht von intensiverem Beleuchtungslicht überlagert wird. Die Beleuchtungs- und Detektionslinse können mit Linsenschiebern mit hoher Genauigkeit entlang der entsprechenden optischen Achsen positioniert werden. Dadurch kann die Verschiebung der Fokalebene, welche durch eine Änderung der räumlichen Brechungsindexverteilung in der Kammer verursacht wird, kompensiert werden.

Die vorliegende Erfindung umfasst weiterhin ein Verfahren, das aus einer beliebigen Kombination der vorgenannten Verfahren versteht.

KURZBESCHREIBUNG DER FIGUREN

Weitere Vorteile und Merkmale der Erfindung ergeben sich aus der folgenden Beschreibung, in der die Erfindung anhand von bevorzugten Ausführungsbeispielen unter Bezugnahme auf die beigefügten Zeichnungen näher erläutert wird. Darin zeigen:

Fig. la), b) eine schematische Perspektivansicht von zwei unterschiedlichen Ausführungsformen der erfindungsgemäßen Kapillarzelle,

Fig. 2a)-c) schematische Perspektivansichten von drei unterschiedlichen Ausführungsformen eines Probenzentrierers,

Fig. 3 eine schematische Perspektivansicht einer erfindungsgemäßen Anordnung zur

Aufnahme, Positionierung und Untersuchung einer Probe,

Fig. 4 negative Probenebenenaufnahmen einer fluoreszenzmarkierten Brusttumor-Zellanhäufung, die mit einer erfindungsgemäßen Anordnung aufgenommen wurden,

Fig. 5 negative Probenebenenaufnahmen einer Zellanhäufung mit fluoreszenzmarkierten

Zellkernen, die mit einer erfindungsgemäßen Anordnung aufgenommen wurden,

Fig. 6 negative Probenebenenaufnahmen der Zellanhäufung aus Fig. 5, wobei die Zellanhäufung für die Untersuchung aufgehellt wurde.

BESCHREIBUNG BEVORZUGTER AUSFÜHRUNGSFORMEN

Fig. 1 a) und b) zeigen eine schematische perspektivische Ansicht von zwei Ausführungsformen der erfindungsgemäßen Kapillarzelle 10a, 10b. Die Kapillarzelle 10a, 10b umfasst einen Kapillarabschnitt 12a, 12b, einen unteren Verschlussabschnitt 14a, 14b und einen oberen Verschlussabschnitt 16a, 16b. Der Kapillarabschnitt 12a, 12b umfasst eine Wand 18a, 18b, die ein Probenvolumen umschließt. Der obere Verschlussabschnitt 16a, 16b umfasst einen Einlass 20 und der untere Verschlussabschnitt 14a, 14b umfasst einen Auslass 22. Der Kapillarabschnitt 12a, 12b hat eine obere Öffnung 24 und eine untere Öffnung 26, die mit dem oberen Verschlussabschnitt 16a, 16b bzw. mit dem unteren Verschlussabschnitt 14a, 14b verschlossen werden können. Die Wand 18a, 18b ist transparent und besteht vorzugweise aus optischem Glas, sodass eine Probe (nicht gezeigt), die sich innerhalb des Kapillarabschnitts 12a, 12b befindet, beleuchtet und zur Fluoreszenz angeregt werden kann. Das von der Probe emittierte Fluoreszenzlicht kann die Kapillarzelle 10a, 10b durch die transparente Wand 18a, 18b verlassen.

Die in Fig. la gezeigte Ausführungsform der Kapillarzelle 10a umfasst einen Kapillarabschnitt 12a mit einem quadratischen Querschnitt. Die Wand 12a umfasst somit vier ebene Seitenflächen, durch die eine Probe innerhalb der Kapillarzelle 10a in vier unterschiedlichen Probenansichten betrachtet und untersucht werden kann. Dazu kann entweder bei einer feststehenden Kapillarzelle 10a die Detektionsrichtung entsprechend angepasst werden oder aber die Detektionsrichtung festgehalten und die Kapillarzelle 10a entsprechend gedreht werden. Dabei entsprechen in dem Ausführungsbeispiel von Fig. la) die Drehwinkel Vielfachen von 90°. Für die Untersuchung in jeder der vier Probenperspektiven wird das Fluoreszenzlicht detektiert, welches den Kapillarabschnitt 12a im 90°- Winkel zur Beleuchtungsrichtung ver- lässt. Bei der Untersuchung in jeder der vier Probenperspektiven wird die Probe durch eine ebene Seitenfläche beleuchtet. Das zu detektierende Fluoreszenzlicht durchläuft somit eine benachbarte ebene Seitenfläche des Kapillarabschnitts 12a.

Die in Fig. lb gezeigte Kapillarzelle 10b enthält einen Kapillarabschnitt 12b mit einem okta- gonalen Querschnitt. Dementsprechend besitzt der Kapillarabschnitt 12b acht ebene Seitenflächen. Dadurch kann eine Probe innerhalb des Kapillarabschnitts 12b für acht unterschiedliche Probenperspektiven durch zugehörige ebene Seitenflächen betrachtet werden. Aufgrund des oktagonalen Querschnitts wird bei der Kapillarzelle 10b vorzugsweise Fluoreszenzlicht detektiert, das den Kapillarabschnitt 12b in einem Winkel von 45° oder 90° zur Beleuchtungsrichtung verlässt.

Durch den Einlass 20 kann dem Probenvolumen ein Medium zugefügt werden und durch den Auslass 22 kann ein Medium aus dem Probenvolumen abgeführt werden. Durch gleichzeitiges Zu- und Abführen kann innerhalb des Probenvolumens ein Fluss bzw. eine Strömung in Längsrichtung (in Fig. la und in Fig. lb durch einen vertikalen Doppelpfeil dargestellt) er- zeugt werden. Die radiale Richtung ist in Fig. la und Fig. lb durch einen horizontalen Doppelpfeil dargestellt.

Fig. 2a)-c) zeigen drei Ausführungsformen eines Probenzentrierers 28a,b,c mit dem eine Probe (nicht gezeigt) in der Kapillarzelle 10 zentriert werden kann. Die Probenzentrierer 28a,b,c aus Fig. 2 umfassen Führungsmittel mit jeweils vier Führungskanten 30. Die Probenzentrierer 28a,b,c werden derart in der Kapillarzelle 10 angeordnet, dass die Führungskanten 30 zur Längsachse (vertikale Doppelpfeile in Fig. la), b)) des Kapillarabschnitts 12a, b geneigt sind und in radialer Richtung (horizontale Doppelpfeile in Fig. 1) auf einen Beobachtungsort 32 zulaufen. Die Probenzentrierer 28a,b,c enthalten weiterhin vier Aussparungen mit jeweils einer ersten Aussparung 34 und einer zweiten Aussparung 35.

Die erste Aussparung 34 gestattet, dass Fluoreszenzlicht, das von einer Probe am Probenort 32 emittiert wird, die Kapillarzelle 10 verlassen kann, ohne dass dabei das Fluoreszenzlicht von den Führungsmitteln gebrochen, gestreut oder blockiert wird. Die zweite Aussparung 35 gestattet, die Probe am Probenort 32 zu beleuchten, ohne dass die Beleuchtung durch die Führungsmittel beeinträchtigt wird. Dadurch, dass die erste Aussparung 34 und die zweite Aussparung 35 - vom Probenort 32 aus gesehen - in unterschiedliche Richtungen weisen, kann Fluoreszenzlicht detektiert werden, dessen Richtung entsprechend von der Richtung des Beleuchtungslichtes abweicht. Somit ist das detektierte Fluoreszenzlicht nicht von dem Beleuchtungslicht überlagert, wodurch die Detektion erheblich vereinfacht wird.

Die in Fig. 2a)-c) gezeigten Probenzentrierer 28a,b,c mit jeweils vier Aussparungen werden vorzugsweise in der Kapillarzelle 10a mit quadratischem Querschnitt des Kapillarabschnitts 12a verwendet. In der Kapillarzelle 10a können die gezeigten Probenzentrierer 28a,b,c derart angeordnet werden, dass sich - vom Probenort 32 aus gesehen - hinter jeder der vier Aussparungen eine zugehörige ebene Seitenfläche befindet. Beleuchtung und Detektion, die durch ebene Seitenflächen erfolgen, werden somit nicht durch die Führungsmittel beeinträchtigt. Die Begriffe„erste Aussparung" und„zweite Aussparung" beziehen sich in der vorliegenden Beschreibung auf das detektierte Fluoreszenzlicht bzw. die Beleuchtung. Wenn die Kapillarzelle 10a mit einem der Probenzentrierer 28a,b,c bei einer feststehenden Detektion und Be- leuchtung verwendet und die Kapillarzelle 10a gedreht wird, dann wechseln die Bezeichnungen„erste" und„zweite" Aussparung zwischen den vier Aussparungen in Abhängigkeit von dem aktuellen Drehwinkel.

Für andere Querschnittsformen des Kapillarabschnitts 12 ist der Probenzentrierer 28 vorzugsweise entsprechend angepasst, sodass jeder ebenen Seitenfläche des Kapillarabschnitts 12 eine entsprechende Aussparung des Probenzentrierers 28 zugeordnet werden kann.

Der Probenzentrierer 28a,b,c kann beispielsweise auf dem unteren Verschlussteil 14 angeordnet sein. Wenn der untere Verschlussteil 14 mit dem Kapillarabschnitt 12 verbunden ist und ein Probenmedium mit einer Probe durch die obere Öffnung 24 des Kapillarabschnitts 12 in das Probenvolumen eingebracht wird, dann sinkt die Probe aufgrund der Schwerkraft in Längsrichtung des Kapillarabschnitts 12 auf den Beobachtungsort 32 zu. Sobald die Probe mit einer der vier Führungskanten 30 in Kontakt tritt, wird die Probe in radialer Richtung dem Beobachtungsort 32 zugeführt. Für die Zentrierung muss die Probe dem Beobachtungsort 32 jedoch nicht notwendigerweise durch die Schwerkraft zugeführt werden. Die Probe kann auch durch einen Fluss in Längsrichtung des Kapillarabschnittes auf den Beobachtungsort 32 zubewegt werden, sodass die Probe am Beobachtungsort 32 zentriert und fixiert wird. Diese Art der Zentrierung bzw. Fixierung wird in der vorliegenden Offenbarung als „kinematische Lagerung" bezeichnet.

Fig. 3 zeigt eine Anordnung 36 zur Aufnahme, zur Positionierung und zur Untersuchung einer aufgehellten mikroskopischen Probe. Die Anordnung 36 umfasst eine erfindungsgemäße Kapillarzelle 10, einen Verschiebetisch 38 und eine Kammer 40. Die Kammer 40 umfasst eine Kammerwand 42, die ein Kammervolumen definiert. Die Kapillarzelle 10 ist mit dem Verschiebetisch 38 verbunden und innerhalb des Kammervolumens angeordnet. Die Kammerwand 42 umfasst weiterhin ein erstes Fenster 44 und ein zweites Fenster 46. Das erste und das zweite Fenster 44, 46 sind der Kapillarzelle 10 und dem Beobachtungsort 32 jeweils aus unterschiedlichen Richtungen zugewandt. Weiterhin sind in Fig. 3 eine Beleuchtungslinse 48, ein Linsenschieber 50 und eine Detektionslinse 52 gezeigt. Durch das erste Fenster 44 kann die Probe, die sich in der Kapillarzelle 10 befindet, beleuchtet und zur Fluoreszenz angeregt werden. Von der Probe emittiertes Fluoreszenzlicht kann die Kammer 40 durch das zweite Fenster 46 verlassen und mithilfe der Detektionslinse 52 detek- tiert werden. Um die Probe für unterschiedliche Probenansichten zu untersuchen, wird die Kapillarzelle 10 mithilfe des Verschiebetisches 38 um ihre Längsachse gedreht. Detektions- und Beleuchtungsrichtung bleiben dabei vorzugsweise im Wesentlichen ortsfest. Da die Wand 18 der Kapillarzelle 10 ebene, transparente Seitenflächen aufweist, kann die Kapillarzelle 10 derart ausgerichtet werden, dass dem ersten und zweiten Fenster 44, 46 jeweils eine ebene, transparente Seitenfläche zugewandt ist. Dadurch kann einerseits Fluoreszenzlicht aufgenommen werden, das ausschließlich ebene Flächen durchlaufen hat. Andererseits kann die Probe, da sie ausschließlich durch ebene Flächen beleuchtet wird, scharf abgegrenzt von anderen fluoreszenzmarkierten Probenbereichen lokal beleuchtet werden. Somit können verzerrungsfreie Bilder von Probenstrukturen mit hoher Auflösung aufgenommen werden.

In der Anordnung 36 aus Fig. 3 sind die Beleuchtung und die Detektion um 90° zueinander versetzt, sodass das detektierte Fluoreszenzlicht nicht von intensiverem Beleuchtungslicht überlagert ist. In das Kammervolumen kann ein Immersionsmedium für Aufnahmen mit einer vergrößerten numerischen Apertur eingebracht werden. Dadurch kann die Auflösung vergrößert werden. Hierzu wird vorzugsweise ein kleiner Abstand zwischen der Kapillarzelle 10 und Detektionslinse 52 gewählt. Dazu kann die Kammerwand 42 auch abschnittsweise in Richtung der Kapillarzelle 10 eingebuchtet sein, sodass die Detektionslinse 52 auch wesentlich dichter an die Kapillarzelle 10 herangebracht werden kann als es in Fig. 3 dargestellt ist.

Um Zellanhäufungen dreidimensional zu untersuchen, können die Zellanhäufungen je nach Größe und Transparenz aufgehellt werden, um eine Streuung des Fluoreszenz- und des Anregungslichtes innerhalb der Probe zu minimieren. Durch ein Verschieben der Kapillarzelle 10 mithilfe des Verschiebetisches 38 entlang der Detektionsrichtung verschiebt sich auch die Beleuchtung innerhalb der Probe. Dadurch werden Fluoreszenzstoffe einer anderen Probenebene selektiv zur Fluoreszenz angeregt. Das aufgenommene Fluoreszenzbild entspricht dann den Strukturen aus einer anderen Ebene der Probe. Indem die Probe durch den Beleuchtungsstrahl geschoben wird und die dabei aufgenommen Bilder zusammengefügt werden, kann eine dreidimensionale Darstellung der Probenstruktur erstellt werden.

Fig. 4 zeigt Aufnahmen aus unterschiedlichen Probenebenen einer Zellanhäufung, die aus Zellen eines Brusttumors besteht und die etwa 10000 Zellen umfasst. Die Aufnahmen wurden mit der erfindungsgemäßen Anordnung 36 aufgenommen und invertiert. Durch die Invertierung erscheinen in Fig. 4 - ebenso wie in Fig. 5 und Fig. 6 - die fluoreszierenden Bereiche dunkel und umgekehrt - die ursprünglich hellen Bereiche dunkel. Für die Aufnahmen wurden das Strukturprotein Actin mit dem Fluoreszenzfarbstoff Phalloidin-AF488 und die Zellkerne mit dem Fluoreszenzfarbstoff Draq 5 markiert. Insgesamt sind in Fig. 4 zehn Aufnahmen aus unterschiedlichen Probentiefen gezeigt, wobei der Ebenenabstand zwischen zwei horizontal benachbart dargestellten Aufnahmen etwa 50 μιη beträgt. Die Länge der schwarzen horizontalen Skalierungsbalken in Fig. 4 beträgt 50 μιη. Es ist zu sehen, dass in der oberen Reihe die ersten drei Aufnahmen von rechts und in der unteren Reihe die ersten drei Aufnahmen von links nicht fluoreszierende Bereiche im Inneren aufweisen. Diese Bereiche sind darauf zurückzuführen, dass die entsprechenden Zellen im Kern der Zellanhäufung aufgrund von Nährstoff- und Gasaustauschmangel abgestorben sind. Übrig sind lediglich Zellfragmente, die keine vergleichbaren fluoreszierenden Zellkernstrukturen enthalten, die mit denen der äußeren Zellen vergleichbar sind.

Fig. 5 und 6 zeigen jeweils zehn Aufnahmen einer Probe aus unterschiedlichen Probentiefen. Bei der untersuchten Probe handelt es sich um eine Zellanhäufung, deren Zellkerne mit dem Fluoreszenzfarbstoff Draq 5 markiert wurden. Der Ebenenabstand zwischen zwei horizontal benachbart dargestellten Aufnahmen beträgt etwa 40 μιη. Beide Aufnahmesequenzen aus Fig. 5 und Fig. 6 wurden mit der erfindungsgemäßen Anordnung 36 durchgeführt. Im Gegensatz zu der Probe aus Fig. 5 wurde die Probe aus Fig. 6 für die Untersuchung aufgehellt.

Der Vergleich von Fig. 5 und Fig. 6 zeigt deutlich den Vorteil einer Aufhellung der untersuchten Fluoreszenzprobe. In der aufgehellten Probe aus Fig. 6 können die Zellkerne aus tieferen Probenschichten, die sich im Inneren der Probe befinden, deutlich aufgenommen werden. In Fig. 5 dagegen gelangt das Fluoreszenzlicht dieser Zellkerne - sofern sie überhaupt von dem Beleuchtungslicht erreicht werden - aufgrund der Streuung im Probeninneren nicht an die Probenoberfläche. Daher konnten diese Zellkerne in Fig. 5 nicht abgebildet werden.

Für die Untersuchung von aufgehellten Proben, wie in Fig. 6 gezeigt, ist die erfindungsgemäße Kapillarzelle 10 besonders vorteilhaft: Während der Untersuchung kann die Probe innerhalb des Probenvolumens in einer speziellen Aufhellungslösung - beispielsweise einer Mischung aus Benzylalkohol und Benzylbenzoat - zur Anpassung des Brechungsindex eingelegt sein. Außerhalb des Probenvolumens kann das Kammervolumen dagegen mit einer wässri- gen Immersionslösung gefüllt sein. Aufgrund der Trennung von Proben- und Kammervolumen können Wasserimmersionsobjektive verwendet werden. Ferner wird die Probe - die zur Aufhellung dehydriert wurde - nicht durch die wässrige Immersionslösung re-hydriert. Somit kann mit der Kapillarzelle 10 eine optimale Probenaufhellung auch für beliebig lang andauernde Längzeituntersuchungen aufrechterhalten werden.

Ein weiterer Vorteil ist, dass für die Aufnahmen mit großer numerischer Apertur Wasser als Immersionsmedium verwendet werden kann. Die Trennung verhindert, dass die gesundheitsschädliche Aufhellungslösung aus dem Probenvolumen in das Kammervolumen gelangt und sich mit der Immersionslösung vermischt. Dadurch kann die aufgehellte Probe nicht nur mit verbesserter Auflösung sondern auch gleichzeitig für den Experimentator gesundheitsunbedenklich untersucht werden, ohne dass die Objektive von dem Aufhellungsmedium angegriffen werden. Da die Aufhellungsmedien die Linsen stark schädigen können, wird im Stand der Technik oft Luft als Immersionsmedium zwischen Probe und Objektivlinse gewählt, wodurch die Lichtsammlung vergleichsweise gering ist. Mit der Kapillarzelle der vorliegenden Erfindung können dagegen Objektive mit besseren Lichtsammeieigenschaften verwendet und die Objekte gleichzeitig vor einer Schädigung geschützt werden.

Es ist zu beachten, dass die Fig. 4 bis 6 lediglich als Beispiel für eine Anwendung der vorliegenden Erfindung dienen, die jedoch keinesfalls auf die im Detail beschriebenen Anwendungen beschränkt sein soll. Beispielsweise ist es auch möglich, mithilfe der erfindungsgemäßen Kapillarzelle 10 lebende Proben zu untersuchen, die innerhalb eines probenspezifischen Kulturmediums untersucht werden. Die in den Zeichnungen und der vorhergehenden Beschreibung aufgezeigten und detailliert beschrieben bevorzugten Ausführungsbeispiele sind als rein beispielhaft und die Erfindung nicht einschränkend anzusehen. Es wird darauf hingewiesen, dass nur die bevorzugten Ausführungsbeispiele dargestellt und beschrieben sind und sämtliche Veränderungen und Modifizierungen, die derzeit und künftig im Schutzumfang der Erfindung liegen, geschützt werden sollen. Die gezeigten Merkmale können in beliebiger Kombination von Bedeutung sein.

BEZUGSZEICHENLISTE

10a, b Kapillarzelle

12a, b Kapillarabschnitt

14a, b Unterer Verschlussabschnitt

16a, b Oberer Verschlussabschnitt

18a, b Wand

20 Einlass

22 Auslass

24 Obere Öffnung

26 Untere Öffnung

28a, b, c Probenzentrierer

30 Führungskante

32 Beobachtungsort

34 Erste Aussparung

35 Zweite Aussparung

36 Anordnung zur Aufnahme, zur Positionierung und zur Untersuchung einer mikroskopischen Probe

38 Verschiebetisch

40 Kammer

42 Kammerwand

44 Erstes Fenster

46 Zweites Fenster

48 Beleuchtungslinse

50 Linsenschieber

52 Detektionslinse