Die Transplantation solider Organe stellt in der Regel die ultiiiia-i-atio in der Therapie von Erkrankungen dar, bei denen das zu ersetzende Organ im Empfängerorganismus schwer geschä- digt ist bzw. seine Funktion nicht mehr in ausreichender Weise erfüllen kann. Dies ist beispiels- weise im Terminalstadium der Herzinsuffizienz der Fall, aber auch beim akuten oder chroni- schen Nieren-oder Leberversagen. Routinemäßig aber weniger häufig transplantiert werden neben den genannten Organen auch Pankreas, Lunge und Dünndarm. Auch eine kombinierte Transplantation mehrerer Organe ist möglich. Zusätzlich zu den soliden Organen werden auch die Hornhaut der Augen sowie hämapoietische Stammzellen aus dem Knochenmark transplan- tiert.

In Deutschland wurden im Jahr 2000 insgesamt 3130 Transplantationen solider Organe durchge- führt (Eurotransplant), wobei das nach wie vor größte Problem die akute Abstoßung des Spenderorgans durch den Empfängerorganismus darstellt. Diese Abstoßungsreaktion (host- versgls-graft reaction) ist umso ausgeprägter, je weniger die immunologischen Merkmale des Spenders mit denen des Empfängers übereinstimmen (mangelnde Histokompatibilität). Zwar gelingt es in der Regel bei ausreichender Histokompatibilität die Abstoßungsreaktion durch ent- sprechende Medikamente (Immunsuppressiva) zu unterdrücken, die Dauerbehandlung mit diesen Medikamenten kann aber schwere Nebenwirkungen hervorrufen. So entwickeln die transplan- tierten Patienten infolge ihrer eingeschränkten Immunabwehr häufig Tumoren und Infektionen ; zudem wird die chronische Abstoßung der transplantierten Organe verstärkt. Bei dieser auch als Vaskulopathie bezeichneten Degeneration der das transplantierte Organ versorgenden Arterien und Arteriolen handelt es sich um eine beschleunigte Sonderform der Atherosklerose (Transplantat-Atherosklerose), die über eine fortschreitende Funktionseinschränkung sukzessive zum Versagen des transplantierten Organs führt. Falls eine Retransplantation (z. B. mangels Organverfügbarkeit) nicht möglich ist, hat die chronische Transplantatabstoßung insofern un- weigerlich den Tod des betroffenen Patienten zur Folge.

Immunologisch betrachtet stellt die akute Abstoßung transplantierter Organe (nicht zu verwech- seln mit der wesentlich selteneren, hyperakuten Abstoßungsreaktion, die Antikörper-vermittelt ist) eine Überempfindlichkeitsreaktion vom Typ IV (verzögerter Reaktionstyp oder clelayed type hypersercsitivity) dar. Das Antigen (in der Regel Histokompatibilitätsantigene auf den die Blutge- fäße des Spenderorgans auskleidenden Endothelzellen) wird von (Gewebe) Makrophagen phago- zytiert, prozessiert und naiven T-Helferzellen (CD4-positiv) präsentiert ; die Sensibilisierung der T-Helferzellen dauert mehrere Tage. Beim Zweitkontakt wandeln sich die so sensibilisierten T- Helferzellen in Thl-Zellen um ; dabei spielt die CD154-Ligand-vermittelte Kostimulation der Antigen-präsentierenden Zelle (diese exprimiert den entsprechenden CD40-Rezeptor) eine wich- tige Rolle, da es über diesen Signalweg zur Freisetzung von Interleukin-12 aus den Makropha- gen kommt. Interleukin-12 leitet die Differenzierung und Proliferation der T-Helferzellen ein.

Die Thl-Zellen ihrerseits regen über bestimmte Wachstumsfaktoren (z. B. granulocyte- macrophage colony-stimulating factor) die Monozytenbildung im Knochenmark an, rekrutieren diese mit Hilfe bestimmter Chemokine (z. B. macrophage migration inhibitoryfactor [MIF] ) und aktivieren sie über die Freisetzung von Interferon-y. Die daraus resultierende sehr starke Entzündungsreaktion kann das transplantierte Gewebe in großem Umfang zerstören. Bei der Transplantatabstoßung sind darüber hinaus CD8-positive zytotoxische T-Zellen beteiligt, die ihre Zielzellen durch Zytolyse und/oder Induktion des programmierten Zelltods zerstören. Wie die CD4-positiven Thl-Zellen sind zytotoxischen T-Zellen erst durch vorherige Antigenpräsentation in der Lage sind, ihr Ziel (die fremde Zelloberfläche) zu erkennen und sich entsprechend zu "bewaffnen". Hierbei ist die CD154-CD40-vermittelte Kostimulation ebenfalls bedeutsam. Neuesten Erkenntnissen zufolge haben die Endothelzellen des Spenderorgans möglicherweise selbst Antigenpräsentierende und kostimulatorische Eigenschaften.

Mit der Transplantatabstoßung vergleichbar, allerdings im umgekehrten Sinne, ist die graft- verstis-host disease (GvHD), die im Zuge von allogenen Knochenmarkstransplantationen (zwischen genetisch nicht identischen Individuen) bei circa 40% der Empfänger auftritt. In der bis zu dreimonatigen Akutphase greifen die mit den Stammzellen übertragenen T-Zellen des Spenders den Wirtsorganismus an, die resultierende unter Umständen schwere Entzündungs- reaktion manifestiert sich bevorzugt in der Haut, seltener im Gastrointestinaltrakt und in der Leber. Insofern ist bei diesen Patienten ebenfalls eine Immunsuppression indiziert mit den bereits beschriebenen potenziell ernsten Nebenwirkungen. Bei der Initiierung dieser Entzün- dungsreaktion sind wiederum Endothelzellen, diesmal die des Empfängerorganismus beteiligt.

Neben der akuten GvHD gibt es auch die chronische Verlaufsform, die einer längeren Immun- suppression bedarf.

Die zur Verhinderung der akuten Transplantatabstoßung eingesetzten Immunsuppressiva variie- ren in der Regel in Abhängigkeit vom Organtyp bzw. sind nur für die Immunsuppression nach der Transplantation bestimmter Organe zugelassen. Eine typische Therapie für Empfänger eines Herztransplantats stellt die Kombination von Cyclosporin A mit Azathioprin und Kortison dar, wobei in letzter Zeit Cyclosporin A zunehmend durch Tacrolimus und Azathioprin durch Mycophenolatmofetil ersetzt wird. Cyclosporin A, Rapamycin und-Tacrolimus hemmen die T- Zellaktivierung, Azathioprin und Mycophenolatmofetil sind Antimetabolite und Corticosteroide wirken antientzündlich durch Hemmung der Genexpression. Trotz ihrer unumstrittenen thera- peutischen Wirkung verläuft die lebenslange systemische Therapie mit diesen Medikamenten nicht ohne z. T. gravierende Nebenwirkungen. Hierzu zählen insbesondere Myelotoxizität, Neurotoxizität, Nephrotoxizität, Stoffwechselstömngen bis hin zur Induktion eines Diabetes mellitus, arterieller Hypertonus, Infektionen und Malignome. Auch die GvHD wird in der Regel mit den vorgenannten Medikamenten, häufig in Kombination, behandelt.

Antigenpräsentierende Zellen und T-Zellen kommunizieren u. a. über CD40-Rezeptor und CD154-Ligand und diese Kostimulation spielt eine wichtige Rolle bei der Thl-Zell-vermittelten Entzündungsreaktion bzw. der Aktivierung zytotoxischer T-Zellen im Rahmen der Transplantat- abstoßung ebenso wie der GvHD. Wie Antigenpräsentierende Zellen exprimieren auch Endo- thelzellen konstitutiv den CD40-Rezeptor. Die Interaktion der Endothelzellen mit CD 154- exprirnierenden T-Helferzellen (naive T-Helferzellen und/oder aktivierte Thl-Zellen) resultiert in einer gesteigerten Chemokin-und Adhäsionsmolekülexpression dieser Zellen. Infolgedessen kommt es zu einer vermehrten Rekrutierung und Aktivierung zirkulierender Monozyten, diese emigrieren in die Gefäßwand und differenzieren sich zu Makrophagen. Darüber hinaus setzen die Endothelzellen, im Gegensatz zu anderen Antigen-präsentierenden Zellen, ausschließlich nach CD40-Aktivierung biologisch aktives Interleukin-12 frei. Interleukin-12 ist der wichtigste Faktor für die Differenzierung von naiven T-Helferzellen in Thl-Zellen und fördert die anschließende klonale Expansion (Proliferation) der Thl-Zellen. Die verstärkte Bildung von Interferon-y durch die ausdifferenzierten Thl-Zellen stimuliert nicht nur die Aktivität der infiltrierten Makrophagen, sondern verstärkt auch die Expression von CD40 in den Endothelzellen. In der Folge kann sich ein Teufelskreis entwickeln, bei dem sich Endothelzellen, T-Helferzellen und Makrophagen gegenseitig stimulieren und so die das Transplantat (akute

Transplantatabstoßung) bzw. den Empfängerorganismus (GvHD) schädigende Entzündungsreaktion aufrecht halten.

Insofern stellt die Blockade der CD154/CD40-vermittelten Kostimulation ein viel versprechen- des Ziel für die Abschwächung bzw. Hemmung der akuten Transplantatsabstoßung dar. So gibt es tierexperimentelle Hinweise dahingehend, dass die Antikörper-gestützte Neutralisation von CD 154 unmittelbar im Anschluss an die Transplantation sogar eine Immuntoleranz erzeugen kann. Zudem wird die chronische Transplantatsabstoßung (Transplantat-Atherosklerose) durch diese Intervention therapeutisch günstig beeinflusst.. Ein Nachteil dieser Antikörpertherapie besteht u. a. in der Gefahr von Überempfindlichkeitsreaktionen (gegen den Antikörper), vor allem bei wiederholter Applikation, sowie die zumindest für gewebeständige Antigene (z. B. in die Wand der Blutgefäße des Spenderorgans emigrierte T-Zellen) schlechte Zugänglichkeit, da die Antikörper in der Regel von der Blutseite appliziert werden müssen und dann an der Endothelzellbarriere scheitern.

Der vorliegenden Erfindung liegt daher die Aufgabe zugrunde Mittel für eine Prävention und/oder Therapie der akuten und chronischen Transplantatabstoßung einschließlich der GvHD und den hiermit assoziierten Folgen für Morbidität und Mortalität der betroffenen Patienten zur Verfügung zu stellen. Die Aufgabe wird durch den in den Patentansprüchen definierten Gegenstand gelöst.

Die Erfindung wird durch die nachfolgenden Figuren näher erläutert : Figur 1 zeigt in einem Balkendiagramm die Auswirkungen eines AP-1 Cis-Element Decoys (SEQ ID NO : 3) und eines mutierten Kontroll-Oligonukleotids (mut) auf die basale CD40- Proteinexpression in ruhenden humanen Endothelzellen, die für 8 Stunden mit dem entsprechenden Oligonukleotid (10 M) inkubiert wurden (n=7-10, statistische Zusammenfassung, bezogen in % auf die basale Expression, *P < 0,05 versus basal ; tP < 0,05 versus Cis-Element-Decoy). Die repräsentative Western Blot-Analyse zeigt die Auswirkungen (4 bzw. 8 Stunden Inkubation) der verwendeten Nukleinsäuren auf den basalen CD40-Proteingehalt in ruhenden Zellen. ß-Aktin (interner Standard) dient zum Nachweis, dass gleiche Proteinmengen analysiert wurden.

Figur 2 zeigt in einer repräsentativen Western Blot-Analyse die Effekte ausgewählter AP-1 Cis-

Element Decoys (SEQ ID NO : 3,5, 11,13 und 35) und eines mutierten Kontroll-Oligonukleotids (mut) auf die basale CD40-Proteinexpression in ruhenden humanen Endothelzellen, die für 8 Stunden mit den entsprechenden Cis-Element Decoys (10 uM) inkubiert wurden. Die relativen Intensitäten (%), bestimmt durch densitometrische Auswertung (One-Dscan-Gel Analysis Software, Scanalytics, Billerica, MA, USA), sind bezogen auf den Maximalwert des CD40- Proteingehalts in Endothelzellen, die nicht mit einem AP-1 Cis-Element Decoy inkubiert wurden, angegeben.

Figur 3 zeigt in einem Balkendiagramm und einer repräsentativen Western Blot-Analyse mit ß- Aktin als internem Standard den Effekt des AP-1 Cis-Element Decoy SEQ ID NO : 3 im Vergleich zu der fehlenden Wirkung eines NFAT (7çuclear factor of activated T-cells) Cis- Element Decoys auf die basale CD40-Proteinexpression in ruhenden humanen Endothelzellen, die für 8 Stunden mit den entsprechenden Oligonukleotid (10 1M) inkubiert wurden. Statistische Zusammenfassung (n=4, bezogen in % auf die basale Expression ; *P < 0,05 versus basal ; tp < 0.05 versus AP-1 Cis-Element Decoy).

Figur 4 zeigt in einem Liniendiagramm den Effekt einer Dauerexposition (offene Kreise) bzw. einer zweistündigen Vorinkubation (gefüllte Kreise) mit dem AP-1 Cis-Element Decoy SEQ ID NO : 3 (10 I1M) auf die basale CD40-Proteinexpression in ruhenden humanen Endothelzellen über einen Zeitraum von 24 Stunden (n=3-7).

Figur 5 zeigt in einem Balkendiagramm und einer RT-PCR-Analyse die Auswirkungen einer Vorinkübation (4 Stunden, 10 p. M) mit dem AP-1 Cis-Element Decoy SEQ ID NO : 3 bzw. eines mutierten Kontroll-Oligonukleotids (mut) auf die nachfolgende CD40 Ligand- (Exposition gegenüber CD40-Ligand-exprimierenden Jurkat T-Zellen ; CD154) induzierte IL-12p40 mRNA Expression in humanen Endothelzellen (n=3). Repräsentative RT-PCR-Analyse und statistische Zusammenfassung (bezogen in % auf den Maximalwert der IL-12-p40 Expression bei CD154- Stimulation, *P < 0,05 versus CD154 ; tP < 0,05 versus AP-1 Cis-Element Decoy).

Figur 6 zeigt in einem Balkendiagramm die Wirkung des AP-1 Cis-Element Decoy SEQ ID NO : 3 im Vergleich zu dem Kontroll-Oligonukleotid (mut) auf die Adhäsion von humanen THP-1 Monozyten an humanen Endothelzellen, die 8 Stunden mit dem entsprechenden Oligonukleotid (10 1M) vorinkubiert und anschließend für 12 Stunden mit humanem CD154-transfizierten Maus-Myelomzellen (P3xTB. A7, CD154) ko-kultiviert wurden (statistische Zusammenfassung,

n=10-13, *P < 0,05 versus CD154 ; T < 0.05 versus AP-1 Cis-Element Decoy). Nicht transfizierte P3xTB. A7-Zellen (-CD154) wurden als Negativkontrolle mitgeführt. Vor Beginn der THP-1-Zell-Perfusion wurden die Myelomzellen von den Endothelzellen durch einen Waschschritt mit Medium nahezu vollständig entfernt.

Figur 7 zeigt in einer repräsentativen elektrophoretischen Mobilitäts-Shift-Analyse (EMSA) die Wirkung eines 50-fachen Überschusses von ausgewählten AP-1 Cis-Element Decoys (SEQ ID NO : 3,5, 11 13 und 35) im Vergleich zu einem mutierten Kontroll-Oligonukleotid (mut) auf die Bildung von DNA-Protein-Komplexen zwischen einem 32P-markierten Oligonukleotid (11 fmol), das spezifisch den Transkriptionsfaktor AP-1 bindet, und einer Kernproteinpräparation aus humanen THP-1 Monozyten in einen 15 ul Reaktionsansatz.

Figur 8 zeigt in einer repräsentativen EMSA den Effekt ausgewählter AP-1 Cis-Element Decoys (SEQ ID NO : 3,5 und 13) und eines mutierten Kontroll-Oligonukleotids (mut) auf die Translokation von AP-1 in den Kern humaner Endothelzellen, die 4 Stunden mit den entsprechenden Cis-Element Decoy (10 J. M) inkubiert wurden. Repräsentative EMSA, welche die zelluläre Aufnahme (und Wirkumg) der verschiedenen Cis-Element Decoys in humanen Endothelzellen bestätigt. Vergleichbare Ergebnisse wurden in mindestens zwei weiteren unabhängigen Experimenten erhalten.

Figur 9 zeigt in einer repräsentativen RT-PCR die Auswirkungen einer Vorinkubation (4 Stunden, 10 uM) mit ausgewählten AP-1 Cis-Element Decoys (SEQ ID NO : 3,5 und 11) auf die MCP--) (monocyte chemoczttractant proteirz-1) Expression in humanen Endothelzellen, die für 6 Stunden mit 60 U/ml Interleukin-1ß (IL-lß) inkubiert wurden. Repräsentative RT-PCR (die relativen Intensitäten (%), bestimmt durch densitometrische Auswertung, sind bezogen auf den Maximalwert bei IL-lß-Stimulation angegeben).

Abbildung 10 zeigt in einem Balkendiagramm und einer repräsentativen Western Blot-Analyse den Effekt eines AP-1 Cis-Element Decoys (SEQ ID NO : 3) und eines mutierten Kontroll- Oligonukleotids (mut) auf die basale CD40-Proteinexpression in isolierten endothelintakten Segmenten der Aorta der Ratte, die in Waymouth-Medium inkubiert wurden. Nach 1 Stunde Vorinkubation wurden die Cis-Element Decoys (10 u. M) dem Inkubationsmedium zugesetzt und für 11 Stunden mit den Gefäßsegmenten inkubiert (6-8 Segmente von 5 verschiedenen Tieren, statistische Zusammenfassung, bezogen in % auf die basale Expression, *P < 0,05 versus basal ;

tP < 0., 05 versus Cis-Element-Decoy). Die repräsentative Western Blot-Analyse zeigt exemplarisch, dass das CD40-Protein in den untersuchten Gefäßsegmenten primär in den Endothelzellen lokalisiert ist und dessen Expression durch die Zugabe der Zytokine Tumornekrosefaktor-a (TNFa, 1000 U/ml) und Interferon-y (IFNy, 100 U/ml) zum Inkubationsmedium für 12 Stunden deutlich gesteigert werden kann. Die Detektion von ß-Aktin (interner Standard) dient zum Nachweis, dass gleiche Proteinmengen analysiert wurden.

Der hier verwendete Ausdruck"Decoy-Oligonukleotid"oder"Cis-Element Decoy"bezeichnet ein doppelsträngiges DNA-Molekül, das eine Sequenz aufweist, an die der Transkriptionsfaktor AP-1 in der Zelle bindet, und die der natürlichen AP-1 Kernbindungssequenz im Genom entspricht oder ähnelt (Derivat). Das Cis-Element Decoy wirkt somit als Molekül zur kompetitiven Inhibierung (Neutralisierung) von AP-1.

Transkriptionsfaktoren sind DNA-bindende Proteine, die sich im Zellkern an die Promotorregion eines oder mehrerer Gene anlagern und dadurch deren Expression, d. h. die Neubildung der Proteine für welche diese Gene kodieren, steuern. Neben der physiologisch wichtigen Kontrolle von Entwicklungs-und Differenzierungsprozessen im menschlichen Körper haben Transkrip- tionsfaktoren, vor allem wenn sie die Genexpression zum falschen Zeitpunkt aktivieren, ein hohes Krankheitspotenzial. Zusätzlich können (unter Umständen dieselben) Transkriptionsfak- toren Gene mit schützender Funktion blockieren und prädisponierend für die Ausbildung einer Erkrankung wirken.

Die vorliegende Erfindung besteht daher in der Bereitstellung eines Decoy-Oligonukleotids, das in der Lage ist, sequenzspezifisch an den Transkriptionsfaktor activator oder activatizlg protei7ç-1 (AP-1) zu binden und eine der folgenden Sequenzen hat, wobei hier nur jeweils ein Strang des Decoy-Oligonukleotids wiedergegeben ist und der komplementäre Strang ebenfalls umfasst ist : 5'-VTGAGTCAS-3' (SEQ ID NO : 1), wobei V = A, C oder G und S = C oder G bedeutet 5'-STGACTCAB-3' (SEQ ID NO : 2), wobei S = C oder G und B= G, C oder T bedeutet 5'-CGCTTGATGACTCAGCCGGAA-3' (SEQ ID NO : 3), 5'-GTGCTGACTCAGCAC-3' (SEQ ID NO : 5), 5'-GTGGTGACTCACCAC-3' (SEQ ID NO : 7), 5'-AGTGGTGACTCACCACT-3' (SEQ ID NO : 9), 5'-TGTGCTGACTCAGCACA-3' (SEQ ID NO : 11),

5'-TTGTGCTGACTCAGCACAA-3' (SEQ ID NO : 13), 5'-TGGTGAGTCACCA-3' (SEQ ID NO : 15), 5'-ATGGTGAGTCACCAT-3' (SEQ ID NO : 17), 5'-TATGGTGAGTCACCATA-3' (SEQ ID NO : 19), 5'-CTATGGTGAGTCACCATAG-3' (SEQ ID NO : 21), 5'-CCTATGGTGAGTCACCATAGG-3' (SEQ ID NO : 23), 5'-TGTTGAGTCACCA-3' (SEQ ID NO : 25), 5'-GTGTTGAGTCACCAC-3' (SEQ ID NO : 27), 5'-TGTGTTGAGTCACCACA-3' (SEQ ID NO : 29), 5'-CTGTGTTGAGTCACCACAG-3' (SEQ ID NO : 31), 5'-ACTGTGTTGAGTCACCACAGT-3' (SEQ ID NO : 33), 5'-GTCGCTTAGTGACTAAGCGAC-3' (SEQ ID NO : 35), Die Erfinder haben überraschenderweise beobachtet, dass Neutralisation des Transkriptions- faktors AP-1 mit Hilfe entsprechender Decoy-Oligonukleotide innerhalb weniger Stunden zu einem Abfall der CD40-Expression in humanen kultivierten Endothelzellen (Figur 1-4) ebenso wie in nativen Endothelzellen der Ratte (Figur 10) führt. Dieser Effekt trat nach circa 4 Stunden auf und hielt für mindestens 10 Stunden an (Figur 1 und 4). Unerwartet und überraschend war zudem, dass dieser Effekt nahezu gleichzeitig und in weitgehend identischem Ausmaß auf der mRNA-und Proteinebene sichtbar wurde. Decoy-Oligonukleotide, die gegen andere Transkriptionsfaktoren gerichtet sind (z. B. nuclear factor of activated T-cells, NFAT), beeinflussten die konstitutive CD40-Expression dagegen nicht (Figur 3). Auch Kontroll- Oligonukleotide, die bis auf eine oder zwei Basen eine mit der AP-1 Konsensus- Kernbindungssequenz (SEQ ID NO : 1 und 2) identische Sequenz aufweisen, zeigten diesen Effekt nicht (Figur 1 und 2). Weiterhin reichte für die Suppression der CD40-Expression eine zweistündige Exposition der Endothelzellen gegenüber dem AP-1-Decoy-Oligonukleotid aus (Figur 4).

Eine Konsequenz der AP-1-Decoy-Oligonukleotid-vermittelten Reduktion des CD40- Proteingehaltes in den Endothelzellen war eine ausgeprägte Hemmung der CD154-induzierten Neubildung von Interleukin-12 p40 (Figur 5), dem Geschwindigkeits-bestimmenden Schritt in der Synthese von biologisch aktivem Interleukin-12 (Lienenlüke et al. (2000) Eur. J. Immunol.

30,2864). Auch die CD154-induzierte Expression des vascular cell adhesion molecule-1 (VCAM-1) war in einem vergleichbaren Umfang reduziert (58% Hemmung), und im Einklang

damit die CD154-induzierte verstärkte (und primär VCAM-1 vermittelte) Adhäsion von THP-1 Monozyten an die Endothelzellen (Figur 6).

AP-1 (http : //www. cbil. upenn. edu/cgi-bin/tess/tess33 ? request=FCT-DBRTRV-Accno&key=T00029) gehört zu der circa 46 Mitglieder umfassenden Gruppe der sogenannten basic regiolz lezccine zipper oder bZIP Transkriptionsfaktoren. In der Regel besteht der aktive Transkriptionsfaktor aus einem Jun/Jun-Homodimer oder einem Jun/Fos-Heterodimer. Sowohl Fos (GenBank Accession Number V01512) wie auch Jun (GenBank Accession Number J04111) müssen dazu im Rahmen der Zellaktivierung über entsprechende Proteinkinasen phosphoryliert werden, wobei die Aktivierung dieser Fos-bzw. Jun-Kinase wiederum von der Aktivität anderer, in dem Signaltransduktionsweg weiter oberhalb gelegener Proteinkinasen abhängt (z. B. Proteinkinase C oder stress-activated proteira kifzase, SEK-1). AP-1 spielt, in der Regel zusammen mit anderen Transkriptionsfaktoren, eine wichtige Rolle bei der Expression einer Vielzahl von immun- relevanten Genen wie z. B. Interleukin-2, Interleukin-4, Interleukin-8, Interferon-y, MCP-1, MIF und Tumornekrosefaktor-a. Eine Blockade der Aktivität von AP-1 kann demnach beispielsweise mit der Interleukin-2-abhängigen autokrinen Stimulation von T-Zellen und deren klonaler Expansion interferieren.

Um keine generelle Schwächung der spezifischen (zellulären bzw. humoralen) Immunabwehr zu erzeugen, wird das erfindungsgemäße Decoy-Oligonukleotid daher vorzugsweise nicht systemisch sondern lokal appliziert. Die ex vivo-Behandlung eines Spenderorgans oder einer Knochenmarkspende vor der Transplantation stellen bevorzugte Indikationen dar.

Hierbei ist von besonderer Wichtigkeit, dass die erfindungsgemäßen Decoy-Oligonukleotide unmittelbar nach Aufnahme in die Zielzellen wirksam werden, wohingegen die Wirksamkeit von Antisense-oder RNA-Interferenz-Oligonukleotiden in erster Linie vom Umsatz des Proteins in der Zelle und damit von dessen Resynthese abhängig ist.

Wird ein erfindungsgemäßes Decoy-Oligonukleotid gegen AP-1 in humanen Endothelzellen verwendet, so wird die Expression von CD40, im Gegensatz zur Verwendung eines entsprechenden Kontroll-Decoy-Oligonukleotids, deutlich um mehr als 50% reduziert. Darüber hinaus hat ein Ausschalten der AP-1-Aktivität eine hochsignifikante Inhibierung der CD154- stimulierten Expression von Interleukin-12 p40 bzw. VCAM-1 zur Folge. Dies führt zu einer deutlichen Abschwächung der Endothelzell-T-Zell-bzw. Endothelzell-Monozyten-

Wechselwirkung aber auch der T-Zell-Interaktion mit anderen Antigen-präsentierenden Zellen (z. B. Makrophagen, dendritische Zellen und B-Lymphozyten) im Rahmen der Transplantatabstoßung bzw. GvHD.

Diese Wirkungen eines Decoy-Oligonukleotids gegen AP-1 (SEQ ID NO : 3) konnten in einem Modell der akuten Transplantatabstoßung (heterotope Herztransplantation bei Ratten) eindeutig belegt werden. Das entsprechende mutierte Kontroll-Oligonukleotid (SEQ ID NO : 47) zeigte dagegen keine therapeutische Wirkung und damit die Spezifität dieses therapeutischen Ansatzes.

Noch eindrucksvoller und in diesem Ausmaß unerwartet war die über 60% ige Hemmung der chronischen Transplantatabstoßung in demselben tierexperimentellen Modell durch kurzzeitige Exposition der Koronararterien des Transplantats gegenüber dem AP-1 Cis-Element Decoy vor der Implantation.

Insofern stellt die Verwendung der erfindungsgemäßen doppelsträngigen DNA-Oligonukleotide, auch Decoy-Oligonukleotid oder Cis-Element Decoy genannt, die eine Konsensus- Kernbindungsstelle für AP-1 enthalten, das bevorzugte Verfahren zur spezifischen Inhibierung der AP-1-Aktivität dar. Die exogene Zufuhr einer großen Zahl von Transkriptionsfaktor- Bindungsstellen zu einer Zelle, insbesondere in viel höherer Zahl als im Genom vorhanden, erzeugt eine Situation, in der die Mehrzahl eines bestimmten Transkriptionsfalçtors spezifisch an das jeweilige Cis-Element Decoy und nicht an seine endogenen Ziel-Bindungsstellen bindet.

Dieser Ansatz zur Inhibition der Bindung von Transkriptionsfaktoren an ihre endogene Bindungsstelle wird auch als Squelching bezeichnet. Squelching (oder auch Neutralisation) von Transkriptionsfäktoren unter Verwendung von Cis-Element Decoys wurde erfolgreich eingesetzt, um das Wachstum von Zellen zu inhibieren. Dabei wurden DNA-Fragmente verwendet, die spezifische Bindungsstellen für den Transkriptionsfaktor E2F enthielten (Morishita et al., PNAS, (1995) 92, 5855).

Die Sequenz einer Nukleinsäure, die zur Verhinderung der Bindung des Transkriptionsfaktors AP-1 verwendet wird, ist beispielsweise die Sequenz, an die AP-1 natürlicherweise in der Zelle bindet. AP-1 bindet spezifisch an das Motiv mit der Sequenz 5'-VTGAGTCAS-3' (SEQ ID NO : 1), wobei V = A, C oder G und S = C oder G bedeutet. Für eine effektive Bindung von AP-1 kommt es auf die exakte Übereinstimmung mit dieser Sequenz an, wobei der komplementäre Strang 5'-STGACTCAB-3' (SEQ ID NO : 2) mit S = C oder G und B= G, C oder T den Transkriptionsfaktor ebenso effizient binden kann. Das Cis-Element Decoy kann ferner größer

als die 9-mer Kernbindungssequenz sein und am 5'-Ende und/oder am 3'-Ende verlängert werden. Entsprechende Mutationen im Bereich der Kernbindungssequenz (z. B. 5'- VTGACTCAA-3'oder 5'-VTTACTTAG-3') führen zu einem teilweisen oder kompletten Verlust der Bindung von AP-1 an das Decoy-Oligonukleotid (Figur 7).

Darüber hinaus begünstigt eine weitgehend palindromische Sequenz der beiden DNA-Stränge den Transport in die Zielzellen ohne Hilfsmittel. Abgesehen von der grundsätzlichen Voraussetzung, dass die erfindungsgemäßen Decoy-Oligonukleotide den Transkriptionsfaktor AP-1 in vitro effektiv neutralisieren, ist es für die therapeutische Wirksamkeit entscheidend, dass das DNA-Molekül schnell und in einem ausreichenden Umfang in die Zielzelle aufgenommen wird. Dies wird veranschaulicht durch die unterschiedlich effektive Neutralisierung von AP-1 durch dieselben Decoy-Oligonukleotide in einem zellfreie System (Figur 7) im Vergleich zu intakten Zellen (Figur 8) bzw. deren Wirkung auf die Genexpression in diesen Zellen (Hemmung der IL-lß stimulierten Expression von MCP-1 ; Figur 9). Darüber hinaus sollte das erfindungsgemäße Cis-Element Decoy eine bestimmte Länge nicht überschreiten, da dies für den Transport in die Zielzelle limitierend ist. Geeignet ist jedes Decoy-Oligonukleotid mit einer Länge von mindestens 9 bp (Konsensus-Kernbindungssequenz) bis zu einer Länge von etwa 45 bp, vorzugsweise bis zu einer Länge von etwa 27 Basenpaaren, besonders bevorzugt bis zu einer Länge von etwa 23, insbesondere bevorzugt mit einer Länge von 9, 10,11, 12,13, 14,15, 16,17, 18,19, 20,21, 22 oder 23 Basenpaaren.

Da das Cis-Element Decoy eine doppelsträngige Nukleinsäure ist, umfasst das erfindungs- gemäße DNA-Oligonukleotid jeweils nicht nur die Sense-oder Forward-Sequenz sondern auch die komplementäre Antisense-oder Reverse-Sequenz. Bevorzugte erfindungsgemäße DNA- Oligonukleotide weisen eine 9-mer-Kernbindungssequenz für AP-1 auf, wie sie in SEQ ID NO : 1 enthalten ist. Das Cis-Element Decoy kann jedoch auch eine zur vorstehenden Sequenz ab- weichende Sequenz aufweisen und länger als ein 9-mer sein. Besonders bevorzugt sind die Sequenzen wie sie in SEQ ID NO : 3 bis SEQ ID NO : 36 enthalten sind. Diese Aufzählung der bevorzugten Sequenzen ist nicht abschließend. Dem Fachmann ist ersichtlich, dass eine Vielzahl von Sequenzen als Inhibitor für AP-1 verwendet werden können, solange sie die vorstehend auf- geführten Bedingungen der 9-mer Konsensus-Kernbindungssequenz und eine Affinität zu AP-1 aufweisen.

Die Affinität der Bindung einer Nukleinsäuresequenz an AP-1 kann durch die Verwendung des

Electrophoretic Mobility Shift Assay (EMSA) (Sambrook et al. (1989) Molecular Cloning. Cold Spring Harbor Laboratory Press ; Krzesz et al. (1999) FEBS Lett. 453,191) bestimmt werden.

Dieses Testsystem ist für die Qualitätskontrolle von Nukleinsäuren, die für die Verwendung in dem Verfahren der gegenwärtigen Erfindung gedacht sind, oder die Bestimmungen der optimalen Länge einer Bindungsstelle geeignet. Sie ist auch für die Identifizierung von anderen Sequenzen, die durch AP-1 gebunden werden, geeignet.

Das Verfahren der vorliegenden Erfindung moduliert die Transkription eines Gens oder von Genen in einer solchen Weise, dass das Gen oder die Gene, z. B. CD40, nicht oder vermindert exprimiert werden. Verminderte oder unterdrückte Expression im Rahmen der gegenwärtigen Erfindung bedeutet, dass die Transkriptionsrate verringert ist im Vergleich zu Zellen, die nicht mit einem erfindungsgemäßen Decoy-Oligonukleotid behandelt werden. Solch eine Verminderung kann beispielsweise durch Northern Blot (Sambrook et al., 1989) oder RT-PCR (Sambrook et al., 1989) bestimmt werden. Typischerweise ist eine solche Verringerung zumindest eine 2-fache, besonders zumindest eine 5-fache, insbesondere zumindest eine 10- fache Verringerung.

Der Verlust von Aktivierung kann beispielsweise erreicht werden, wenn AP-1 bei einem bestimmten Gen als Transkriptionsaktivator wirkt und deshalb Squelching des Aktivators zum Verlust der Expression des Zielgens führt. Ebenso möglich ist aber auch eine indirekte Hemmung durch Modulation der mRNA- (posttranskriptionelle Wirkung) bzw. Proteinstabilität (posttranslationelle Wirkung) des Zielgens. In diesem Fall hätte die Neutralisierung von AP-1 z. B. » eine verminderte Expression von Proteinen zur Folge, die den Abbau der mRNA des Zielgens durch RNasen und/oder die proteolytische Degradation des Zielproteins verhindern.

Eine derartige Wirkung scheint bei dem beschriebenen Effekt der AP-1 Cis-Element Decoys auf die CD40-Expression in den humanen Endothelzellen beteiligt zu sein.

Oligonukleotide werden in der Regel schnell durch Endo-und Exonukleasen, im besonderen DNasen und RNasen in der Zelle abgebaut. Deshalb können die DNA-Oligonukleotide modi- fiziert werden, um sie gegen den Abbau zu stabilisieren, so dass über einen längeren Zeitraum eine hohe Konzentration der Oligonukeotide in der Zelle beibehalten wird. Typischerweise kann eine solche Stabilisierung durch die Einführung von einer oder mehrerer modifizierter Inter- nukleotidbindimgen erhalten werden.

Ein erfolgreich stabilisiertes DNA-Oligonukleotid enthält nicht notwendigerweise eine Modi- fikation an jeder Internukleotidbindung. Vorzugsweise sind die Internukleotidbindungen an den jeweiligen Enden beider Oligonukleotide des Cis-Element Decoys modifiziert. Dabei können die letzten sechs, fünf, vier, drei, zwei oder die letzte oder eine oder mehrere Internukleotidbindun- gen innerhalb der letzten sechs Internukleotidbindungen modifiziert sein. Ferner können ver- schiedene Modifikationen der Internukleotidbindungen in die Nukleinsäure eingeführt werden und die daraus entstehenden Decoy-Oligonukleotide auf sequenzspezifische Bindung an AP-1, unter Verwendung des Routine EMSA-Testsystems, getestet werden. Dieses Testsystem erlaubt die Bestimmung der Bindungskonstante des Cis-Element Decoys und so die Bestimmung, ob die Affinität durch die Modifikation verändert wurde. Modifizierte Cis-Element Decoys, die noch eine ausreichende Bindung zeigen, können ausgewählt werden, wobei eine ausreichende Bindung zumindest etwa 50% oder zumindest etwa 75%, und besonders bevorzugt etwa 100% der Bindung der unmodifizierten Nukleinsäure bedeutet.

Cis-Element Decoys mit modifizierter Intemukleotidbindung, die immer noch ausreichende Bindung zeigen, können überprüft werden, ob sie stabiler in der Zelle sind als unmodifizierte Cis-Element Decoys. Die mit den erfindungsgemäßen Cis-Element Decoys"transfizierten" Zellen werden zu verschiedenen Zeitpunkten auf die Menge der dann noch vorhandenen Cis- Element Decoys untersucht. Dabei wird vorzugsweise ein mit einem Fluoreszenzfarbstoff (z. B.

Texas-Rot) markiertes Cis-Element Decoy oder ein radioaktiv markiertes (z. B. 32p oder 35S) Cis- Element Decoy eingesetzt mit anschließender digitaler Fluoreszenzmikroskopie bzw.

Autoradiographie oder Szintigraphie. Ein erfolgreich modifiziertes Cis-Element Decoy hat eine Halbwertzeit in der Zelle, die höher ist als die eines unmodifizierten Cis-Element Decoys, vorzugsweise von zumindest etwa 48 Stunden, mehr bevorzugt von zumindest etwa 4 Tagen, am meisten bevorzugt von mindestens etwa 7 Tagen.

Geeignete modifizierte Intemukleotidbindungen sind in Uhlmann und Peyman ( (1990) Chem.

Rev. 90,544) zusammengefasst. Modifizierte Internukleotid-Phosphat-Reste und/oder Nicht- Phosphor-Brücken in einer Nukleinsäure, die in einem Verfahren der gegenwärtigen Erfindung eingesetzt werden können, enthalten zum Beispiel Methylphosphonat, Phosphorothioat, Phosphorodithioat, Phosphoramidat, Phosphatester, während Nicht-Phosphor-Internukleotid- Analoge, beispielsweise Siloxan-Brücken, Carbonat-Brücken, Carboxymethylester-Brücken, Acetamidat-Brücken und/oder Thioether-Brücken enthalten. Bei der Verwendung Phosphorothioat-modifizierter Internukleotidbindungen sollten diese vorzugsweise nicht

zwischen den Basen Cytosin und Guanin liegen, da dies zu einer Aktivierung der Zielzellen des Cis-Element Decoys fuhren kann.

Eine weitere Ausführungsform der Erfindung ist die Stabilisierung von Nukleinsäuren durch die Einführung struktureller Merkmale in die Nukleinsäure, welche die Halbwertzeit der Nuklein- säure erhöhen. Solche Strukturen, die Haarnadel-und Glocken-DNA enthalten, sind in US 5,683, 985 offenbart. Gleichzeitig können modifizierte Internukleotid-Phosphat-Reste und/oder Nicht-Phosphor-Brücken, zusammen mit den genannten Strukturen, eingeführt werden. Die sich daraus ergebenden Nukleinsäuren können im oben beschriebenen Testsystem auf Bindung und Stabilität geprüft werden.

Ein Cis-Element Decoy der vorliegenden Erfindung wird schnell in die Zelle aufgenommen.

Eine ausreichende Aufnahme ist durch die Modulation der Expression von einem oder mehreren Genen, die einer Kontrolle durch AP-1 unterliegen, charakterisiert (z. B. CD40). Das Cis- Element Decoy der vorliegenden Erfindung moduliert in bevorzugter Weise die Transkription von einem Gen oder Genen nach etwa 4 Stunden der Berührung mit der Zelle, mehr bevorzugt nach etwa 2 Stunden, nach etwa 1 Stunde, nach etwa 30 Minuten und am meisten bevorzugt nach etwa 10 Minuten. Eine typische Mischung, die in so einem Versuch eingesetzt wird, enthält 10 umol/1 Cis-Element Decoy.

Die vorliegende Erfindung betrifft ferner die Verwendung der erfindungsgemäßen Decoy- Oligonukleotide zur Herstellung eines Arzneimittels, insbesondere zur Prävention und/oder Therapie der akuten und chronischen Transplantatabstoßung, der akuten und chronischen graft- versus-host disease (GvHD) sowie dem Ischämie/Reperfusionsschaden von Organen im Anschluss an einen chirurgischen Eingriff.

Die vorliegende Erfindung betrifft ferner ein Verfahren zur Modulation der Transkription von mindestens einem Gen in Zellen, insbesondere in Endothelzellen und Antigen-präsentierenden Zellen (Monozyten, Makrophagen, dendritische Zellen, B-Zellen), wobei das Verfahren den Schritt der Kontaktierung der genannten Zellen mit einer Mischung, enthaltend eine oder mehrere erfindungsgemäße doppelsträngige Nukleinsäure (n), die in der Lage sind, sequenz- spezifisch an den Transkriptionsfaktor AP-1 zu binden, umfasst. Ein bevorzugtes Verfahren ist z. B. die ex vivo Behandlung eines Spenderorgans vor Einbringen in den Körper des Empfängers, indem die Nukleinsäure-haltige Mischung in die Blutgefäße des Spenderorgans (orthograd oder

retrograd) appliziert wird.

Die Mischung enthaltend die erfindungsgemäßen Cis-Element Decoys wird mit den Zielzellen (z. B. Endothelzellen, Epithelzellen, Leukozyten, glatte Muskelzellen, Keratinozyten oder Fibroblasten) in Berührung gebracht. Das Ziel dieses In-Berührung-Bringens ist die Übertragung der Cis-Element Decoys, die AP-1 binden, in die Zielzelle (d. h. zum Beispiel die AP-1-abhängig CD40-exprimierende Zelle). Deshalb können Nukleinsäure-Modifikation und/oder Zusatzstoffe oder Hilfsstoffe, von denen bekannt ist, dass sie die Durchdringung von Membranen erhöhen, im Rahmen der gegenwärtigen Erfindung benutzt werden (Uhlmann und Peyman (1990) Chem.

Rev. 90,544).

Eine Mischung gemäß der Erfindung enthält in einer bevorzugten Ausfiihrungsform im wesent- lichen nur Nukleinsäure und Puffer. Eine geeignete Konzentration der Cis-Element Decoys liegt im Bereich von zumindest 0,1 bis 100 uM, vorzugsweise bei 10 uM, wobei ein oder mehrere geeignete Puffer zugesetzt werden. Ein Beispiel eines solchen Puffers ist eine modifizierte Ringer-Lösung enthaltend 145 mmol/1 Na, 5 mmol/1 K, 50 mmol/1 Cl-, 2 mmol/1 Ca2+, 1 mmol/1 Mg2+, 10 mmol/1 Hepes, 106 mmol/1 Isethionat, 10 mmol/1 D-Glucose, pH 7,4.

In einer weiteren Ausführungsform der Erfindung enthält die Mischung zusätzlich mindestens einen Zusatzstoff und/oder Hilfsstoff. Zusatzstoffe und/oder Hilfsstoffe wie Lipide, kationische Lipide, Polymere, Liposomen, Nanopartikel, Nukleinsäure-Aptamere, Peptide und Proteine, die an DNA gebunden sind, oder synthetische Peptid-DNA-Moleküle sind beabsichtigt, um beispielsweise die Einbringung von Nukleinsäuren in die Zelle zu erhöhen, um die Mischung auf nur eine Untergruppe von Zellen zu richten, um den Abbau der Nukleinsäure in der Zelle zu ver- hindern, um die Lagerung der Nukleinsäuremischung vor der Verwendung zu erleichtern.

Beispiele für Peptide und Proteine oder synthetische Peptid-DNA-Moleküle sind z. B. Antikör- per, Antikörperfragmente, Liganden, Adhäsionsmoleküle, die alle modifiziert oder unmodifiziert sein können.

Zusatzstoffe, die die Cis-Element Decoys in der Zelle stabilisieren, sind beispielsweise Nuklein- säure-kondensierende Substanzen wie kationische Polymere, Poly-L-Lysin oder Poly- ethylenimin.

Die Mischung, die in dem Verfahren der gegenwärtigen Erfindung eingesetzt wird, wird bevor-

zugt lokal angewendet durch Injektion, Infusion, Katheter, pluronische Gele, Polymere, die anhaltend Medikamente freisetzen, oder jede andere Vorrichtung, die lokalen Zugang ermög- licht. Auch die ex vivo Anwendung der Mischung (Infusion bzw. Inkubation), verwendet im Verfahren der gegenwärtigen Erfindung, erlaubt einen lokalen Zugang.

Die folgenden Figuren und Beispiele dienen nur der Erläuterung und beschränken in keiner Weise den Umfang der Erfindung.

1. Zellkultur Humane Endothelzellen wurden durch Behandlung mit 1,6 U/ml Dispase in Hepes-modifizierter Tyrodelösung für 30 Min. bei 37°C aus Nabelschnurvenen isoliert und auf Gelatine-beschichte- ten 6-Loch-Gewebekulturschalen (2 mg/ml Gelatine in 0,1 M HC1 für 30 Min. bei Umgebungs- temperatur) in 1,5 ml M199 Medium (Gibco Life Technologies, Karlsruhe, Deutschland), ent- haltend 20% fötales Kälberserum, 50 U/ml Penicillin, 50 u. g/ml Streptomycin, 10 U/ml Nystatin, 5 mM HEPES und 5 mM TES, 1 ug/ml Heparin und 40 pLg/ml endothelialer Wachstumsfaktor, kultiviert. Sie wurden durch ihre typische Pflasterstein-Morphologie, positive Immunfärbung für von Willebrandt-Faktor (vWF) und fluorimetrischen Nachweis (FACS) von PECAM-1 (CD31) sowie negative Immunfärbung für glattmuskuläres u-Actin (Krzesz et al. (1999) FEBS Lett. 453, 191) identifiziert.

Die humane Monozyten-Zelllinie THP-1 (ATCC TIB 202), die humane Jurkat-Zelllinie D1. 1 (ATCC CRL-10915) sowie die Maus-Myelomzelllinie P3xTB. A7 wurden in RPMI 1640 Medium (Life Technologies), enthaltend 10% fötales Kälberserum, 50 U/ml Penicillin, SO u. g/ml Streptomycin und 10 U/ml Nystatin, kultiviert.

2. RT-PCR-Analyse Die endotheliale Gesamt-RNA wurde mit dem Qiagen RNeasy Kit (Qiagen, Hilden, Deutsch- land) isoliert, daran anschließend wurde eine cDNA-Synthese mit einem Maximum von 3 ig RNA und 200 U Superscript II Reversetranskriptase (Life Technologies) in einem Gesamt- volumen von 20 gl entsprechend der Herstelleranleitung durchgeführt. Für den Abgleich der cDNA-Beladung wurden 5 u. l (ungefähr 75 ng cDNA) der resultierenden cDNA-Lösung und dem Primerpaar (Gibco) für die Elongationsfaktor-1 (EF-1)-PCR mit 1 U Taq DNA-Polymerase (Gibco) in einem Gesamtvolumen von 50 ul benutzt. EF-1 diente als interner Standard für die PCR. Die PCR-Produkte wurden auf 1,5% Agarose-Gelen enthaltend 0, 1% Ethidiumbromid separiert und die Intensität der Banden wurde densitometrisch mit einem CCD-Kamerasystem

und der One-Dscan Gelanalyse-Software von Scanalytics (Billerica, MA, USA) bestimmt, um in nachfolgenden PCR-Analysen das Volumen der cDNA anzupassen.

Alle PCR-Reaktionen wurden einzeln für jedes Primer-Paar in einem Hybaid OmnE Thermo- cycler (AWG, Heidelberg, Deutschland) durchgeführt. Die einzelnen PCR-Bedingungen für die cDNA von humanen Endothelzellen waren wie folgt : CD40 (Produktgröße 381 bp, 25 Zyklen, Anlagerungstemperatur 60°C, (Vorwärtsprimer) 5'-CAGAGTTCACTGAAACGGAATGCC-3' (SEQ ID NO : 37), (umgekehrter Primer) 5'-TGCCTGCCTGTTGCACAACC-3' (SEQ ID NO : 38) ; EF-1 (Produktgröße 220 bp, 22 Zyklen, Anlagerungstemperatur 55°C, (Vorwärtsprimer) 5'-TCTTAATCAGTGGTGGAAG-3' (SEQ ID NO : 39), (umgekehrter Primer) 5'-TTTGGTCAAGTTGTTTCC-3' (SEQ ID NO : 40) ; IL-12p40 (Produktgröße 281 bp, 30 Zyklen, Anlagerungstemperatur 62°C, (Vorwärtsprimer) 5'-GTACTCCACATTCCTACTTCTC- 3' (SEQ ID NO : 41), (umgekehrter Primer) 5'-TTTGGGTCTATTCCGTTGTGTC-3'(SEQ ID NO : 42) ; MCP-1 (Produktgröße 330 bp, 22 Zyklen, Anlagerungstemperatur 63°C, (Vorwärtsprimer) 5-GCGGATCCCCTCCAGCATGAAAGTCTCT-3 (SEQ ID NO : 43), (umgekehrter Plimer) 5-ACGAATTCTTCTTGGGTTGTGGAGTGAG-3 (SEQ ID NO : 44) ; VCAM-1 (Produktgröße 523 bp, 26 Zyklen, Anlagerungstemperatur 63°C), (Vorwärtsprimer) 5'-CATGACCTGTTCCAGCGAGG-3' (SEQ ID NO : 45), (umgekehrter Primer) 5'-CATTCA- CGAGGCCACCACTC-3' (SEQ ID NO : 46).

3. Electrophoretic Mobility Shift Assay (EMSA) Die nukleären Extrakte und [32P]-markierten doppelsträngigen Konsensus-Oligonukleotide (Santa~Cruz Bioteclmologie, Heidelberg, Deutschland), nicht-denaturierende Polyacrylamid- Gelelektrophorese, Autoradiographie und Supershift-Analyse wurden wie bei Krzesz et al.

(1999) FEBS Lett. 453,191 beschrieben durchgeführt. Dabei wurde ein doppelsträngiges DNA- Oligonukleotid mit der folgenden einzelsträngigen Sequenz verwendet (Kernbindungssequenz ist unterstrichen) : AP-1,5'-CGCTTGATGACTCAGCCGGAA-3' (SEQ ID NO : 3). Für die Analyse der Verdrängung von endogenem AP-1 in Kernextrakten der Endothelzellen durch die verschiedenen Cis-Element Decoys wurde im EMSA-Bindungsansatz ein Verhältnis von 50 : 1 AP-1 Cis-Element Decoy : [32-P]-markiertes AP-1 Oligonukleotid (11 fmol)) gewählt.

4. Decoy-Oligonukleotid-Technik Doppelsträngige Decoy-Oligonukleotide wurden von den komplementären einzelsträngigen

Phosphorothioat-verbundenen Oligonukleotiden (Eurogentec, Köln, Deutschland) wie bei Krzesz et al. (1999) FEBS Lett. 453,191 beschrieben hergestellt. Die kultivierten humanen Endothel- zellen wurden für mindestens 2 Stunden mit dem jeweiligen Decoy-Oligonukleotid in einer Konzentration von 10 uM inkubiert. Im Anschluss daran wurde das Decoy-Oligonukleotid- haltige Medium in der Regel durch frisches Medium ersetzt. Die einzelsträngigen Sequenzen der Oligonukleotide waren wie folgt (unterstrichene Buchstaben kennzeichnen Phosphorothioat- verbundene Basen) : 5. Western Blot-Analyse Die humanen Nabelschnurvenen-Endothelzellen wurden durch fünfmaliges aufein- anderfolgendes Einfrieren in flüssigem Stickstoff und Auftauen bei 37°C aufgeschlossen.

Protein-Extrakte wurden wie bei Hecker et al. (1994) Biochem J. 299,247 beschrieben hergestellt. 20-30 llg Protein wurden mit Hilfe einer 10% igen Polyacrylamid-Gelelektrophorese unter denaturierenden Bedingungen in der Gegenwart von SDS nach Standardprotokoll aufgetrennt und auf eine BioTrace Polyvinylidene Fluoride Transfermembran (Pall Corporation, Roßdorf, Deutschland) transferiert. Zum immulologischen Nachweis des CD40- Proteins wurde ein polyklonaler primärer Anti-Human-CD40-Antikörper von Research Diagnostics Inc., Flanders NJ, USA verwendet. Die Proteinbanden wurden nach Hinzufügen eines Peroxidase-gekoppelten-Anti-Kaninchen-IgG (1 : 3000, Sigma, Deisenhofen, Deutschland) mit Hilfe der Chemilumineszenz-Methode (SuperSignal Chemiluminescent Substrate ; Pierce Chemical, Rockford, IL, USA) und nachfolgender Autoradiographie (Hyperfilm MP, Amersham Pharmacia Biotech, Buckinghamshire, England) nachgewiesen. Der Auftrag und Transfer gleicher Proteinmengen wurde nach"Strippen"der Transfermembran (5 Minuten 0.2 N NaOH, nachfolgend 3 x 10 Minuten Waschen mit H20) durch Nachweis gleicher Proteinbanden von ß-Actin mit einem monoklonalen primären Antikörper und einem Peroxidase-gekopplelten Anti-Maus IgG (beide von Sigma-Aldrich, 1 : 3000 Verdünnung) gezeigt.

6. Endothelzellen-Leukozyten-Wechselwirkung Primär kultivierte humane Endothelzellen, auf Deckgläsern bis zu einer Zelldichte von 100% gewachsen, wurden mit Hepes-Tyrode-Puffer (Angaben in mmol/L : NaC1 137, KCl 2.7, CaCl2 1.4, MgCl2 0.25, NaH2P04 0.4, Na-Hepes 10, D-Glucose 5), der 1. 5% Polyvinylpyrrolidon (PVP ; Sigma-Aldrich) enthielt, gewaschen und auf dem Boden einer Perfusionskammer (2.5 mm Höhe und 260 ul Volumen, Warner Instrument, Hamden, CT, USA) aufgebracht. Die Kammer wurde auf einem Axiovert S 100 TV Mikroskop (Zeiss, Goettingen, Germany) auf einer beheizbaren Plattform (Warner Instruments) befestigt und mit dem beschriebenen, auf 37°C erwärmten Puffer (i7l-line solzition heater, Wamer Instruments) perfundiert. Die mit Hilfe einer Pumpe (Ismatec, Zürich, Schweiz) erzeugte Schubspannung betrug 5 dyn/cm2 bei einer Scherrate von 10 s-l. Die Endothelzellen wurden zu Beginn 10 min mit Hepes-Tyrode/PVP perftmdiert, gefolgt von einer 10-minütigen Superfusion mit 1. 5x106 THP-1 Zellen (5x105 THP-1 Zellen/ml) in Hepes-Tyrode/PVP. Anschließend wurde die Perfusionskammer mit Hepes-Tyrode/PVP gespült. Die Dokumentation der Zell-Zell-Wechselwirkungen erfolgte bei 20facher Vergrößerung mit einer SPOT RT Farb-CCD Kamera (Diagnostic Instruments, Burroughs St.

Sterling Heights, Michigan, USA). Pro Testansatz wurden drei Aufnahmen verschiedener Gesichtsfelder mit dem Programm MetaMorph V3. 0 (Universal Imaging, West Chester, PA, USA) ausgewertet.

7. Statistische Analyse Wenn nicht anders angezeigt, sind alle Daten in den Figuren als Mittelwert SEM von n Experimenten angegeben. Die statistische Auswertung wurde mittels einseitiger Varianzanalyse (ANOVA) gefolgt von einem Dunnett Post-Test durchgeführt. Ein P-Wert <0,05 wurde als statistisch signifikanter Unterschied angesehen.

8. Tierexperimenteller Nachweis der Decoy-Oligonukleotid-Wirkung Zum Nachweis der Wirksamkeit des in der vorliegenden Anmeldung entwickelten Decoy-Oligo- nukleotid-basierten Therapieansatzes wurde für die Indikation akute Transplantatabstoßung eine tierexperimentelle Proof-of-corzcept-Studie mit Ratten durchgeführt (Stammkombination Wistar Furth auf Lewis ; experimentelle Details siehe Hölschermann et al. (1999) Am. J. Pathol. 154, 211). Einmalige Applikation von 10 llmol/l des AP-1-Decoy-Oligonukleotids (SEQ ID NO : 3), nicht aber des mutierten Kontroll-Oligonukleotides (AP-1 mut (SEQ ID NO : 47), kein

Unterschied im Vergleich zu den Kontrolltieren), in die Koronargefäße des heterotopen Herztransplantates (30 Minuten Inkubation vor der Implantation) verlängerte dessen Überleben ohne Gabe eines Immunsuppressivums von 6,2 0,2 auf 7,6 0,4 Tage (n=5, P<0,05). Dieser Effekt war assoziiert mit einer signifikanten Abschwächung der Adhäsionsmolekülexpression (z. B. VCAM-1) im Endothel der Koronargefäße der Spenderherzen sowie der Infilatration von Monozyten und T-Zellen am postoperativen Tag 1 und 3.

Auch im Modell der Transplantatvaskulopathie (chronische Abstoßung) erwies sich die einma- lige Applikation des AP-1 Decoy-Oligonukleotids als äußerst wirksam. In Abwandlung des vorab beschriebenen, akuten Abstoßungsmodells wurden die Empfängertiere mit dem Immun- suppressivum Cyclosporin A (5 mg pro kg Körpergewicht und Tag) intraperitoneal behandelt und die Spenderherzen nach 100 Tagen explantiert. Der Grad der Vaskulopathie in den Koronar- arterien wurde gemäß den Adams-Kriterien morphometrisch bestimmt und ergab folgendes Bild : Isotyp-Kontrolle (n=7), Score 0,97 0, 11 ; Cyclosporin A-Kontrolle (n=6), Score 2,08 0, 16 (P>0,001 versus Isotyp-Kontrolle) ; AP-1 Decoy-Oligonukleotid (n=6), Score 1,39 0, 16 (P<0, 01 versus Cyclosporin A-Kontrolle).