Die vorliegende Erfindung betrifft ein DNA-Konstrukt, das eine cDNA-Sequenz für menschliche Poly(ADP-Ribose)-Polymerase enthält, Zellinien, die das DNA-Kon¬ strukt enthalten und ein Verfahren zur Identifizierung von DNA-schädigenden Substanzen anhand dieser Zellinien, die Poly(ADP-Ribose)-Polymerase überexpri- mieren.

Bisher wurden DNA-schädigende Substanzen (physikalische und chemische Kanze¬ rogene), die DNA-Strangbrüche herbeiführen, durch die Messung der Strangbrüche entweder in Zellysaten durch alkalische DNA-Denaturierungsverfahren (z.B. "Alkali¬ sche Elution") oder in situ anhand von Einzelzellen (sog. "Kometenassay) identifi¬ ziert. Die Lysat-Tests hatten aber den Nachteil, technisch relativ aufwendig zu sein und eine hohe manuelle Geschicklichkeit des Experimentators zu erfordern. Bei "Kometenassays" kommt hinzu, daß die Ablesung mikroskopisch erfolgt, was einen hohen apparativen Aufwand bedingt.

Die Aufgabe der vorliegenden Erfindung besteht deshalb darin, ein Verfahren zur schnellen, zuverlässigen Identifizierung von chemischen Kanzerogenen bereitzustel¬ len.

Das Prinzip der vorliegenden Erfindung beruht darauf, die zelluläre Poly(ADP- Ribosel-Produktion als Indikator für in lebenden Zellen auftretende DNA-Strang¬ brüche nachzuweisen. Die Poly(ADP-Ribose) wird von der Poly(ADP-Ribose)- Polymerase (PARP) in Anwesenheit von DNA-Strangbrüchen und unter Verbrauch von NAD ⁺ synthetisiert. Dies geschieht unter Einfluß von kanzerogenen Sub¬ stanzen fast in jeder kernhaltigen Zelle. Jedoch wird in einer solchen Zelle durch Manipulation, d.h. durch Einbringung einer PARP-DNA-Sequenz in einer bestimm¬ ten Kombination mit einem Promotor, besonders viel Poly(ADP-Ribose) gebildet und kann durch geeignete Meßmethoden, beispielsweise Immunfluoreszenz,

nachgewiesen werden.

Ein Beispiel für ein Konstrukt, das die PARP-DNA-Sequenz enthält, ist das bei der DSM unter der Nummer DSM 9430 am 13. September 1994 hinterlegte Plasmid PPARP31.

pPARP 31 kann durch folgende Schritte erhalten werden: a) - Ligierung einer cDNA, die den vollständigen offenen Leserahmen der Po- ly(ADP-Ribose)-Polymerase aus menschlichen embryonalen Fibroblasten (HEF-Zellen) enthält, in pBluescript unter Erhalt des Plasmids pPARP 25 (Küpper, Dissertation Universität Heidelberg, 1990). Der vollständige offene Leserahmen einer der bekannten PARP-cDNAs ist z.B. in der GenBank/- EMBL-Datenbank, Zugangsnummer J 03473 (Kurosaki) veröffentlicht. b) - Isolierung des Xho/Xba-Fragments aus pPARP25 c) - Herstellung des eukaryotischen Expressionsvektors pL15TK

Zuerst wird das 650 bp Hincll/Avall-Fragment des Humanen-Cytomegalie- Virus-Promotor/Enhancer (HCMV Prom), das über geglättete Enden verfügt, in die geglättete EcoRI-Schnittstelle von pUC19 ligiert, wodurch der "Zwi- schenvektor" pL15 erhalten wird. In die geglättete Sphl-Schnittstelle und in die Hindlll-Schnittstelle von pL15 wird dann das 629 bp Smal/Hindlll-Frag- ment des Poly-Adenylierungssignals des Herpes-Simplex-Virus-Thymidinki- nase-Gens (TK poly A) ligiert, wodurch der Vektor pL15TK erhalten wird. Der Vektor pL15TK enthält das Resistenzgen für Ampicillin (Amp), einen bakteriellen Replikationsorigin (ori), sowie Teile des Lac-Operons (Z und i). Die Polylinker-Kassette von pUC 19 ist bis auf die EcoRI- und Sphl-Schnitt- stellen intakt. d) - Ligierung des Xho/Xba-Fragments aus pPARP25 in den Vektor pL15TK (wie in Fig. 2 gezeigt) unter Erhalt des Plasmids pPARP31 (s. Fig. 3), wobei die Xhol-Schnittstelle des Inserts und die BamHI-Schnittstelle des Vektors zer¬ stört werden. Die Xbal-Schnittstellen des Vektors und des Inserts bleiben

intakt.

Zur Erzeugung von Zellinien wird die embryonale Hamsterzellinie CO60 (Lavi, PNAS 78, S. 6144 ff (1981 )) mit einem Plasmid, das eine Poly(ADP-Ribose)- Polymerase exprimiert, vorzugsweise pPARP 31 , stabil transfiziert. Die dabei erhaltenen Zeilklone (im Falle der Verwendung von pPARP31 wurden diese Zell- klone COCF1 , -2, -4 genannt) überexprimieren die menschliche PARP. Diese Klone produzieren bei gleicher gentoxischer Behandlung (z.B. »/-Strahlung oder Einwir¬ kung von kanzerogenen Chemikalien) deutlich mehr Poly(ADP-Ribose) als parallel isolierte Kontrollklone (COCFN1 , -2, -4), die keine Explosion der menschlichen PARP aufweisen. Ähnliche PARP-überexprimierende Zellinien können natürlich auch aus anderen bekannten Basis-Zellinien außer der verwendeten Hamsterzellinie erzeugt werden. Desweiteren können PARP-überexprimierende Zellinien auch nach transienter Transfektion mit einem PARP-exprimierenden Plasmid erhalten werden.

Die Hamsterzellklone COCF1 , COCF2 und C0CF4 sowie die Kontrollzellinie COC- FN1 wurden bei der DSM unter den Nummern ACC2186, ACC2187, ACC2188 bzw. ACC2189 am 6. Sept. 1994 hinterlegt.

Durch die Verwendung der COCF-Klone bzw. dazu gleichartiger Klone aus anderen Zellinien als Indikatorzellen wird die Empfindlichkeit eines Nachweisverfahrens für Kanzerogene, die DNA-Strangbrüche erzeugen, deutlich gesteigert. Durch die zelluläre Sythese von Poly(ADP-Ribose) kommt es gleichsam zu einer Signalver¬ stärkung, da ein einzelner DNA-Strangbruch zur Synthese von mehreren oder gar vielen Polymermolekülen führt, die mit bis zu 200 monomeren Bausteinen eine beträchtliche Komplexität erreichen. Durch Transfektion des die PARP-Sequenz enthaltenden Expressionskonstrukts, vorzugsweise pPARP31 , wird die Polymersy- these weiter gesteigert. Darüberhinaus kann die Empfindlichkeit des Nachweisver¬ fahrens dadurch weiter erhöht werden, daß die Zellen kurz vor der Einwirkung der Testsubstanz einem definierten Hitzeschock, z.B. 30 Minuten 45 °C, unterworfen werden, wodurch der Abbau der Poly(ADP-Ribose), der mit der Synthese kon¬ kurrieren kann, gehemmt wird. Der Nachweis der zellulär gebildeten Poly (ADP-

Ribose) erfolgt vorzugsweise immunologisch. Dies hat den Vorteil, daß die Schritte leicht ausführbar sind und die Methode mit einem Zeitaufwand von wenigen Stunden schnell durchführbar ist. Vorzugsweise erfolgt der Test mittels Fluo¬ reszenzmikroskopie oder auf Mikrotiterplatten, wo sich die spezifische Antikörper¬ bindung im Sinne eines ELISAs durch automatisierte Vermessung auswerten läßt. Jedoch eignen sich auch alle anderen gängigen immunologischen Detektionsver- fahren, wie z.B. Immunozytochemie oder Immunodotblot. Bei letzterem Verfahren werden die Zellen nach Behandlung mit der DNA-schädigenden Testsubstanz lysiert, die Lysate werden auf einen Träger, z.B. eine Filtermembran, aufgebracht und die gebildete Poly(ADP-Ribose) wird mit einem Poly(ADP-Ribose)-spezifischen Antikörper nachgewiesen, der Enzym-markiert sein kann. Andererseits kann vorstehender Antikörper unmarkiert sein. Der Nachweis erfolgt dann durch einen zweiten, gegen vorstehenden Antikörper gerichteten Antikörper, der markiert ist, z.B. Enzym-markiert.

Beispielhaft sei der Nachweis von Poly(ADP-Ribose) durch Immunfluoreszenz beschrieben. Zuerst läßt man die das PARP-DNA-Konstrukt enthaltenden Zellen auf z.B. Deckgläschen oder Mikrotiterplatten auf eine übliche Zelldichte anwach¬ sen. Dann erfolgt die Behandlung der Zellen mit einer DNA-schädigenden Testsub¬ stanz. Die Behandlungszeit ist für einzelne Testsubstanzen unterschiedlich. Sie kann vom Fachmann leicht bestimmt werden. Vielfach ist die Behandlungszeit 1 - 15 Minuten. Danach werden die Zellen an den Träger (z.B. Deckgläschen oder Mikrotiterplatte) fixiert. Nach Waschen des Trägers, kurzem Trocknen und Rehy- drieren der Zellen in Puffer erfolgt die Inkubation mit einem Erst-Antikörper gegen Poly(ADP-Ribose). Nach mehrmaligem Waschen mit Puffer erfolgt die Inkubation mit einem markierten, gegen den Erst-Antikörper gerichteten Zweit-Antikörper. Nach wiederholtem Waschen erfolgt die fluoreszenzmikroskopische Auswertung oder die Detektion in einem ELISA-Lesegerät.

Als DNA-schädigende Testsubstanz eignen sich z.B. »/-Strahlung, Medikamente, wie Zytostatika, UV-Licht, Nahrungsmittelzusatzstoffe oder Chemikalien wie Farb¬ stoffe, Lösungsmittel oder Reinigungsmittel.

Das beschriebene Prinzip der PARP-Überexpression läßt sich ohne weiteres auch auf primäre Zellen aus Versuchstieren ausweiten, indem die Expressionskassette für menschliche PARP mit Hilfe eines viralen Vektors transient oder stabil in solche Primärzellkulturen eingeschleust wird. Dadurch stehen Zellen mit der vollen, gewe¬ bespezifischen Fremdstoff-Metabolisierungskapazität zur Verfügung. Einerseits erlaubt dies die Detektion von Agentien, die erst nach der Metabolisierung die DNA schädigen, andereseits läßt sich mit solchen Zellen ein organspezifisches Schädi¬ gungspotential abschätzen.

Die Erfindung wird anhand der Figuren weiter beschrieben, von denen

Fig.1 den eukaryotischen Expressionsvektor pL15TK zeigt,

Fig.2 das Klonierungsschema für pPARP 31 zeigt und

Fig.3 die Genkarte des Plasmids pPARP31 zeigt.

Die Abkürzungen in den Figuren bedeuten:

HCMV Prom: Humaner Cytomegalie-Promotor/Enhancer

AMP: Ampicillin-Resistenzgen

Z: Teil des Lac-Operons

I: Teil des Lac-Operons

(TK) Poly A: Polyadenylierungssignal des Herpes-Simplex-Virus-

Thymidinkinase-Gens ori: bakterieller Replikationsursprung

D: DNA-Bindungsdomäne

A: Automodifikationsdomäne

N: NAD-Bindungsdomäne

ATG: Initiationskodon

Stop: Stopkodon

Für die Restriktionsschnittstellen wurden die üblichen Abkürzungen verwendet.

Beispielhaft sei auf das nachfolgende Beispiel verwiesen, das die Erfindung weiter

erläutert.

BEISPIEL:

C0CF1 -Zellen wurden über Nacht auf Deckgläschen angezüchtet. Die Zellen wurden mit 2,8-20 Gray Gamma-Strahlung behandelt. Fünf Minuten nach Bestrah¬ lungsbeginn erfolgte die Fixierung der Zellen in 10% Trichloressigsäure (10 Min. auf Eis). Die Deckgläschen wurden für jeweils 3 Minuten in 70%, 90% und absolutem Ethanol gewaschen. Nach Lufttrocknen für 1 Minute wurden die Zellen in PBS-Puffer (Phosphat-gepufferte Salzlösung) für 1 Minute rehydriert. Es erfolgte die Zugabe des Erst-Antikörpers (Zellkulturüberstand des Hybridoms 10H [beschrie¬ ben von Kawamitsu et al., Biochemistry 23, 3771 ff., 1984], das einen monoklo- nalen, hochspezifischen Antikörper gegen Poly(ADP-Ribose) sezerniert). Danach wurden die Deckgläschen dreimal 5 Minuten in PBS-Puffer gewaschen und der Zweit-Antikörper (FITC-gekoppelte Ziegen-anti-Maus-lmmunglobuline; Fa. Renner, Dannstadt) wurde zugegeben und 30 Minuten bei 37°C inkubiert. Dann wurde wieder dreimal 5 Minuten mit PBS-Puffer gewaschen und die Deckgläschen wur¬ den in Polyvinylalkohol auf Objektträger eingebettet. Es erfolgte die fluoreszenzmi¬ kroskopische Auswertung.