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| Patentansprüche 1. Injizierbare oder implantierbare Trägersysteme auf Basis modifizierter aliphatischer Polyester zur Anwendung am Menschen oder am Tier mit dem Ziel der kontrollierten Freisetzung einer bioaktiven Substanz zu therapeutischen und / oder diagnostischen Zwecken bestehend aus Polymeren, deren Grundstruktur durch einen kammartigen Aufbau aus den Strukturelementen( A),( B) und (C) gekennzeichnet ist, wobei den Polymerrückgrad die Strukturelemente (A) und (B) bilden, welche aus aliphatischen Dikarbonsäuren (A) und aus Polyolen (B ) bestehen, wobei zwei Hydroxylgruppen des Polyols (B) mit den Dikarbonsäuren des Strukturelements (A) zu einem linearen Polymerrückgrat verestert sind, nach Ausbildung des aus den Strukturelementen (A) und (B) bestehenden und durch Esterbindungen verknüpften Polymerrückgrates bei Verwendung von Triolen und höherwertigen Polyolen im Strukturelement (B) noch eine (bei Triolen) oder mehrere (Anzahl der Hydroxylgruppen im Polyol > 3) freie Hydroxylgruppen vorhanden sind, die vollständig oder teilweise mit aliphatischen Fettsäuren und / oder bioaktiven Substanzen kovalent oder nicht kovalent verknüpft sein können (Strukturelement (C)). 2. Trägersysteme nach Anspruch 1 gekennzeichnet dadurch, dass die aliphatischen Dikarbonsäuren des Strukturelements (A) der folgenden allgemeinen Struktur zwischen den beiden Karboxylgruppen einen Molekülteil i aufweisen, der eine Alkylstruktur besitzt und gesättigt oder ungesättigt, verzweigt oder unverzweigt mit Ri = 0 (null) und < 40 (vierzig) Kohlenstoffatome sein kann. 3. Trägersysteme nach Anspruch 1 und 2 gekennzeichnet dadurch, dass der Molekülteil Ri vorzugsweise 1 (eins) bis 14 (vierzehn) Kohlenstoffatome, bevorzugt 4 (vier) bis 10 (zehn) Kohlenstoffatome enthält. 4. Trägersysteme nach Anspruch 1 gekennzeichnet dadurch, dass das Polyolstrukturelement (B) aus einem Gemisch von Diolen, Triolen und höherwertigen Polyolen bzw. Mischungen derselben bestehen kann. 5. Trägersysteme nach Anspruch 1 und 4 gekennzeichnet dadurch, dass Diole mit einer Kettenlänge von 2 (zwei) bis 20 (zwanzig) Kohlenstoffatomen, insbesondere Ethylenglykol, Propylenglykol, Butandiol, Hexandiol, Oktandiol und/oder Dodekandiol eingesetzt werden können. Trägersysteme nach Anspruch 1 und 4 gekennzeichnet dadurch, dass der Anteil der höherwertigen Polyole mit mindestens 3 (drei) OH-Gruppen, vorzugsweise zwischen 3 (d und 40 (vierzig), bevorzugt zwischen 3 (drei) und 10 (zehn) zwischen 1 (eins) und 100 (einhundert) Prozent beträgt. 7. Trägersysteme nach Anspruch 1 und 4 bis 6 gekennzeichnet dadurch, dass als Polyole vorzugsweise Glycerol, Erythritol, Xylitol, Mannitol, Sorbitol, Laktose, Sukrose (Saccharose), Trehalose, Glukose, Maltose, Isomalt und/oder Maltitol zur Anwendung kommen. 8. Trägersysteme nach den Ansprüchen 1 und 4 bis 7 gekennzeichnet dadurch, dass das Polyol (B) mit weiteren Substanzen mittels des Strukturelementes (C) kovalent verknüpft sein kann, so dass eine kammartige Polymerstruktur entsteht, wobei der Verknüpfungsgrad zwischen 0,1 und 100 % der nach Bildung des Polymerrückgrates noch vorhandenen freien Hydroxylgruppen betragen kann. 9. Trägersysteme nach den Ansprüchen 1 bis 8 gekennzeichnet dadurch, dass das Strukturelement (C) eine Karbonsäure oder eine oder mehrere bioaktive Substanz/en ist, welche durch eine Esterbindung mit der Polyolstruktur (B) verknüpft ist, wobei die Fettsäure gesättigt oder ungesättigt sein kann und der Veresterungsgrad zwischen 0 (null) und 99,9 % der freien Hydroxylgruppen betragen kann. 10. Trägersysteme nach den Ansprüchen 1 bis 9 gekennzeichnet dadurch, dass die Anzahl der Kohlenstoffe der Karbonsäure zwischen 2 (zwei) und 22 (zweiundzwanzig) betragen kann, insbesondere zwischen 8 (acht) und 22 (zweiundzwanzig) Kohlenstoffatomen, wie Caprylsäure (Oktansäure), Caprinsäure (Dekansäure), Laurinsäure (Dodekansäure), Myristinsäure (Tetradekansäure), Palmitinäure (Hexadekansäure), Stearinsäure (Oktadekansäure), Ölsäure ((9Z)- Octadeca- 9- ensäure), Linolsäure ((9Z,12Z)- Octadeca- 9,12- diensäure), Linolensäure ((9Z,12Z,15Z)- Octadeca- 9,12,15- triensäure). 11. Wirkstoffhaltige Trägersysteme gemäß der Ansprüche 1 bis 10, in denen die bioaktive Substanz/en eingearbeitet (nicht kovalent gebunden) oder kovalent gebunden enthalten sein kann, wobei im Fall einer Einarbeitung (nichtkovalente Bindung) die bioaktive Substanz/en gelöst, emulgiert oder suspendiert vorliegen und im Fall einer kovalenten Bindung die bioaktive Substanz/en durch eine chemische Reaktion einer in geeigneten funktionellen Gruppen der bioaktiven Substanz/en, z.B. einer Säuregruppierung, mit der im Strukturelement (B) vorhandenen freien Hydroxylgruppen kovalent durch eine Esterbindung an das polymere Trägermaterial gebunden sein kann. 12. Wirkstoffhaltige Trägersysteme nach Anspruch 11 gekennzeichnet dadurch, dass die enthaltenen bioaktiven Substanzen mit einem niederen, mittleren oder hohen Molekulargewicht hydrophiler, amphiphiler oder hydrophober Natur sein und gelöst, emulgiert oder suspendiert vorliegen können. 13. Wirkstoffhaltige Trägersysteme nach Anspruch 11 und 12 gekennzeichnet dadurch, dass als bioaktive Substanzen Stoffe aus der Gruppe der Antibiotika, Antiinfektiva, Zytostatika oder andere antineoplastische Mittel und Protektiva, Lokalanästhetika, Analgetika, Neuropharmaka, Hormone, Immunmodulatoren, Immunsuppressiva, Antimykotika, Antiinflammatoria, Analgetika, Antihämorrhagika, Antifibrinolytika, Vitamine, Hämostatika, Antiphlogistika, Betarezeptoren- und Calciumkanalblocker, Corticoide, Entwöhnungsmittel/Mittel zur Behandlung von Suchterkrankungen, Fibrinolytika, Antihypoxämika, Herz-Kreislauf-Mittel, Antikoagulantia, Antiparasitäre Mittel, Antikariesmittel, Antiparodontosemittel, Ophthalmika, Otologika, Sexualhormone und ihre Hemmstoffe, Parkinsonmittel und andere Mittel gegen extrapyramidale Störungen, Psychopharmaka, Sera, Immunglobuline, Impfstoffe, Mineralstoffe, Thrombozytenaggregationshemmer, Tuberkulosemittel, Diuretika, Magen-Darm-Mittel, Antiadiposita, Analeptika, Antirheumatika, Antiallergika, Antianämika, Antiarrhythmika, Antidementiva, Antidiabetika, Antidote, Antiemetika, Antivertiginosa, Antiepileptika, Antihypertonika, Antihypoglykämika, Antihypotonika, Antitussiva, Expektorantia, Arteriosklerosemittel, Hemmstoffe des Renin-Angiotensin-Aldosteron-Systems, Broncholytika, Antiasthmatika und andere Mittel für den Respirationstrakt, Cholinergika, Antiseptika, Diagnostika und Mittel zur Diagnosevorbereitung, Diuretika, Enzyminhibitoren, Präparate bei Enzymmangel und Transportproteine, Geriatrika, Gichtmittel, Gynäkologika, Hepatika, Hypnotika, Sedativa, Hypophysen-, Hypothalamushormone, regulatorische Peptide und Analoga sowie ihre Hemmstoffe, Immunmodulatoren, Kardiaka, Koronarmittel, Lipidsenker, Lokalanästhetika, Magen-Darm-Mittel, Migränemittel, Muskelrelaxanzien und - Reversoren, Narkosemittel, Neuropathiepräparate und andere neurotrope Mittel, Osteoporosemittel/Calcium-/Knochenstoffwechselregulatoren, Schilddrüsentherapeutika, Spasmolytika und Anticholinergika, Umstimmungsmittel, Urologika und Mittel zur Behandlung der Hyperkalämie und Hyperphosphatämie, Venentherapeutika, Wund- und Narbenbehandlungsmittel zur Anwendung gelangen können. 14. Wirkstoffhaltige Trägersysteme nach den Ansprüchen 1 bis 13 gekennzeichnet dadurch, dass die Applikation durch eine Injektion oder Implantation erfolgen kann, wie z. B. subkutan, intraperitoneal und/oder intramuskulär sowie im oder am Auge, subarachinoidal, spinal, intracochlear, intravestibular (Ohr), intratympanisch (extracochlear) bzw. intravenös zur gezielten Embolie tumorversorgender Blutgefäße. 15. Trägersysteme nach den Ansprüchen 1 bis 14 gekennzeichnet dadurch, dass weitere Hilfsstoffe enthalten sein können wie: a. Wasser (im Konzentrationsbereich von 0 bis 90 Prozent (m/m); b. Hilfsstoffe zur Stabilisierung von Wirkstoffsuspensionen oder Emulsionen (Polyoxyethylenglycol-polyhydroxystearat, Sorbitanfettsäureester, Polyoxyethylensorbitanfettsäureester, Polyoxyethylenfettsäureester, Zuckerester, Pluronic, Lecithin, Fettsäuren, Fettalkohole, Sterole, Polyglycerylfettsäureester, Triglyceride, Partialglyceride; c. Antioxidantien (BHT, Vitamin E, VIT E-acetat); d. Viskositätsbeeinflussende Stoffe; e. Bioverträgliche organische Lösungsmittelwie zum Beispiel Ethanol, Dimethylsulfoxid, Benzylalkohol, Benzylbenzoat, Triacetin, N-Methyl-2-Pyrrolidon, Polyethylenglycol, Ethylacetat, Glycofurol, 2-Pyrrolidon, Glycerol, n-Propanol, Triethylcitrat, Propylenglycol, Dimethylacetatamid oder Mischungen aus diesen. Aceton, Butanol, Ethylformat, Essigsäure, Pentanol, Isopropanol, Tetra hydrofu ran, Methylacetat , Ethyllactat, Propylencarbonat , Ölsäure 16. Trägersysteme nach den Ansprüchen 1 bis 15 gekennzeichnet dadurch, dass die Konzentration von modifizierten Poly(dikarbonsäure-multiol estern) 0,1% bis 99,9999 % (m/m) beträgt. |
Wirkstofffreisetzung Trägersysteme, welche Wirkstoffe im Körper von Tieren oder Menschen kontrolliert freisetzen, sind von großer Bedeutung. Viele hoch wirksame Wirkstoffe zeichnen sich durch eine geringe
Bioverfügbarkeit nach oraler Gabe und eine kurze Halbwertszeit aus, welche durch eine schnelle Ausscheidung (Elimination) oder Umwandlung (Metabolismus) des Wirkstoffes bedingt sind. Eine therapeutische Nutzung solcher Wirkstoffe ist nur durch geeignete Wirkstoffträgersysteme möglich, welche parenteral injiziert werden und die Wirkstoffe zeitlich kontrolliert freisetzen. Die Zeitspanne der Wirkstofffreisetzung ist von der Indikation abhängig. So kann eine Freisetzung von wenigen Stunden, Tagen, Wochen oder mehreren Monaten angestrebt werden. Typische Applikationsarten sind die subkutane, intraperitoneale oder intramuskuläre Applikation. Weiterhin werden solche Freigabesysteme zum Beispiel auch zur lokalen Therapie im Hirn, Auge, Ohr, Knochenmark und anderen Organen eingesetzt. Je nach Indikation können unterschiedliche Freisetzungsprofile, z. B. kontinuierlich, pulsatil angestrebt werden. Dabei soll das Wirkstoffträgersystem eine
reproduzierbare, kontrollierte Freisetzung des Wirkstoffes gewährleisten und sich gegenüber dem Körper inert verhalten.
Gegenwärtig werden klinisch sowohl bioabbaubare als auch nicht abbaubare Trägermaterialien verwendet. Nichtbioabbaubare Materialien haben den Nachteil, dass sie aus dem Körper wieder entfernt werden müssen. Beispiele sind die Präparate Implanon® (Firma Organon) und Vantas® (Orion Pharma), welche nach 3 Jahren bzw. 12 Monaten aus dem Körper entfernt werden müssen und somit einen chirurgischen Eingriff erfordern. Als abbaubare Materialien werden hauptsächlich Polymilchsäure und Kopolymere aus Milch- und Glykolsäure genutzt. Die Monomere dieser Polymere sind alpha-Hydroxysäuren. Ein Nachteil dieser Polymere ist die Komplexität des Polymerabbaus. Dieser beruht auf einer autokatalytisch verlaufenden Hydrolyse, welche zu schwer steuerbaren Freisetzungskinetiken und sehr sauren pH-Werten (pH Wert 2) führen kann /l, 2, 3/. Nachteilig ist dabei, dass durch das saure Mikromilieu Wirkstoffe bereits vor ihrer Freisetzung zersetzt oder inaktiviert werden können /4,5/. Die meisten Marktpräparate sind entweder Mikropartikel oder vorgeformte Implantate (Rote Liste 2014, Rote Liste" Service GmbH).
Mikropartikel, auch Mikrokapseln oder Mikrospherulen genannt, sind feste, meist sphärische Partikel mit einer typischen Größe im unteren Mikrometerbereich. Beispiele für bioabbaubare Mikropartikel sind Enantone ® (Takeda), Sixantone ® (Takeda), Decapeptyl ® (Ferring), Sandostatin ® LAR ® - (Sandoz), Pamorelin ® LA 3,75mg (Ipsen Pharma), Uropeptyl ® Depot (Uropharm), Risperdal ® Consta ® (Janssen-Cilag). Die Herstellung von Mikropartikeln mit einer engen und reproduzierbaren Größenverteilung ist sehr anspruchsvoll und aufwendig. Hierbei werden hauptsächlich die
Koazervation, Sprühtrocknung oder Emulsionsverfahren mit Lösungsmittelentfernung angewandt /6/. Weiterhin müssen die Mikropartikel vor der Applikation mit dem Dispersionsmedium vermischt werden, was aufgrund der schlechten Benetzbarkeit der Partikel zeitaufwendig und oft
problematisch ist. Unvollständiges Entleeren der Spritze und ein Verstopfen der Kanüle stellen weitere Probleme bei der Applikation von Mikropartikeln dar. Auch die Rückstandsproblematik organischer, zumeist chlorierter Lösungsmittel aus dem Herstellungsprozess, sowie die aufwändige Herstellung unter aseptischen Bedingungen und eine schwierige Herstellung im großtechnischen Maßstab setzen dieser Arzneiform Grenzen.
Beispiele für vorgeformte feste Implantate sind die Marktprodukte Zoladex ® (AstraZeneca), Profact ® Depot (Sanofi), Leuprone ® HEXAL ® (Hexal), Leupro-Sandoz ® (Sandoz), Ozurdex ® (Allergan
Pharmaceuticals). Bei den vorgeformten festen Implantaten besteht oft das Problem, dass eine relativ große Kanüle verwendet werden muss, um das Implantat, welches zudem oft als Fremdkörper empfunden wird und Schmerzen verursachen kann, in den Körper einzubringen.
Neuere Entwicklungen beschreiben sogenannte„in situ Implantate". Hierbei wird eine niedrigviskose Flüssigkeit in den Körper gespritzt, welche sich im Körper durch einen Stimulus (Trigger) in ein Depot (zum Beispiel in ein Gel oder einen Festkörper) umwandelt. Als Stimulus kann zum Beispiel ein Lösungsmittelaustausch, eine Thermogelierung oder eine chemische Reaktion (Quervernetzung) dienen /7/. Eine Quervernetzungsreaktion ist in vivo schwer zu kontrollieren und es treten häufig Toxizitätsprobleme mit den quervernetzenden Substanzen auf. Als wichtigste Vertreter für thermogelierende Systeme sind poloxamerbasierende Systeme, chitosanhaltige Zubereitungen und niedermolekulare pegylierte Polylaktide bzw. pegylierte Poly(laktid-co-glykolide) zu nennen.
Nachteile der genannten thermogelierenden Systeme sind eine potentielle Gelierung vor der Applikation, Stabilitätsprobleme der Hilfsstoffe, eine zu schnelle Freisetzung und mangelnde
Reproduzierbarkeit der Freisetzung. Im Fall der Systeme, welche auf Lösungsmittelaustausch basieren, gibt es im Gegensatz zu den anderen in situ Systemen kommerzielle Produkte. Ein typisches Beispiel ist Eligard ® , welches in Deutschland von der Firma Astellas vertrieben wird. Als Lösungsmittel wird N-Methylpyrrollidon (NMP) verwendet, in welchem das matrixbildende Polymer gelöst ist. Im Körper führt die gegenseitige Mischung von körpereigenem Wasser und NMP zur verminderten Löslichkeit und zum Präzipitieren des Polymers. Nachteile dieses Systems sind die den Polylaktiden und Poly(laktid-co-glycoliden) inherenten Probleme des autokatalytischen Polymerabbaus, welches oft schwer steuerbare und schwankende Freisetzungsraten bedingen. Die Verwendung injizierbarer Polymere auf Basis von Hydroxyestern wird in WO 2007/012979 beschrieben. Nachteilig ist jedoch, dass eine kovalente Bindung des Wirkstoffes nur sehr eingeschränkt oder nicht ausreichend möglich ist, da nur die Endgruppen des Polymers modifiziert werden können. Weiterhin sind die im Patent WO 2007/012979 beschriebenen Polymere hinsichtlich ihrer Lipophilie nur sehr eingeschränkt steuerbar. Der Einsatz von bioabbaubaren Trägermaterialien, deren Lipophilie auf den Wirkstoff abgestimmt werden kann, wäre daher eine anzustrebende Zielsetzung.
Als Alternative zu polymerbasierten Systemen sind in der Literatur ebenfalls lipidbasierte Ansätze als parenterale Depotformen beschrieben. Hierbei werden durch Verpressen oder Extrusion von festen Lipiden wirkstoffhaltige Formkörper hergestellt. Nachteile von Lipidsystemen auf Basis von
Glycerolfettsäureestern (Mono-, Di oder Triglyceride) oder Wachsen sind die eingeschränkte Steuerung der Lipophilie sowie das Auftreten von mehreren polymorphen Formen. Das komplexe polymorphe Verhalten beeinflusst sowohl die Reproduzierbarkeit der Wirkstoffbeladung und Wirkstofffreisetzung sowie die Abbaubarkeit der Wirkstoffträger. Das Patent DE 000003780862 beschreibt feste Lipidkomprimate, die durch Implantation verabreicht werden. Das Patent WO 2009/080275 beschreibt feste Lipidimplantate, welche durch Extrusion hergestellt werden.
Weiterhin wird die Herstellung von Lipidkomprimaten und Lipidextrudaten im Patent WO
2005/102284 beschrieben.
Aufgabe der Erfindung war es, eine Alternative zu den bisher klinisch genutzten bioabbaubaren Polymeren auf Basis von Monomeren mit Hydroxykarbonsäurestruktur aufzuzeigen. Das Problem wurde erfindungsgemäß durch lineare Polyester gelöst, welche durch Veresterung von
Dikarbonsäuren und mehrwertigen Alkoholen (Diole, Triole oder höherwertige Alkohole) entstehen (Figur 1).
Werden als Alkoholkomponente Substanzen mit drei oder einer größeren Anzahl von
Hydroxylgruppen genutzt, so sind bei geeigneter Synthesestrategie nach der Polymerisation im
Polymerrückgrat freie Hydroxylgruppen verfügbar. Hierbei werden enzymatische Umsetzungen unter Verwendung divinylaktvierter Dikarbonsäuren bevorzugt, da durch diese definierte lineare Polymere mit definierten freien Hydroxylgruppen erhalten werden und eine Quervernetzung vermieden wird /8/. Die freien Hydroxylgruppen können entweder mit Wirkstoffen oder mit weiteren Hilfsstoffen kovalent chemisch umgesetzt werden (Figur 1).
Zur kovalenten Verknüpfung mit Wirkstoffen ist bisher wenig bekannt. Shafioul et al. publizierten die chemische Verknüpfung des Wirkstoffes Xanthorrhizol an Poly(dikarbonsäure-multiol ester) und seine enzymatische Freisetzung /9/. Hingegen wird eine Veresterung von Poly(dikarbonsäure-multiol estern) mit Fettsäuren mehrfach beschrieben /10-16/, wobei die Verwendung von
fettsäuremodifzierten Poly(dikarbonsäure-multiol estern) zur Herstellung von Wirkstoff haltigen Mikro- und Nanopartikeln in vitro dargestellt wird. Die Herstellung von Mikro- und Nanopartikeln ist jedoch aufwendig und die Partikelgröße oft schwer kontrollierbar.
Erfindungsgemäß wurde erstens gefunden, dass modifizierte Poly(dikarbonsäure-multiol ester) ohne weitere Zusätze als injizierbare Implantate geeignet sind. Hierbei können die Polymere ohne Verwendung eines organischen Lösungsmittels direkt injiziert werden.
Des Weiteren wurde zweitens gefunden, dass modifizierte Poly(dikarbonsäure-multiol ester) mit geeigneten biokompatiblen organischen Lösungsmitteln versetzt und injiziert werden können.
Erfindungsgemäß können drittens modifizierte Poly(dikarbonsäure-multiol ester) als Implantat vorgeformt sein.
Ausführungsbeispiele:
Beispiel 1:
Fettsäuremodifizierte Poly(glycerol-adipate) können durch folgendes oder ähnliche Verfahren synthetisiert werden /10-16/ '.
Als Strukturelement (A) (Dikarbonsäure) wird Adipinsäure verwendet, als Polyol (Strukturelement (B)) dient Glycerol, welches drei Hydroxylgruppen besitzt (Figur 1). Das Polymerrückgrad
Polyglyceroladipat wird zum Beispiel durch eine enzymatische Reaktion von Divinyladipat oder Dimethyladipat mit Glycerol in Tetrahydrofuran oder einem anders geeigneten Lösungsmittel durchgeführt /10/. Beispielhaft verwendete Fettsäuren sind Laurin-, Stearin-, Behen- oder Ölsäure. Der Substitutionsgrad der Fettsäuren beträgt zwischen 1% und 100 % (bezogen auf die nach Hydroxylgruppen des Poly(glycerol-adipats) (Figur 2).
Die öl- und laurylsäuremodifizierten Polymere besitzen bei einer Temperatur von 20°C
(Raumtemperatur) eine flüssige Konsistenz. Die Stearin- und behensäuremodifizierten Polymere besitzen bei 20°C eine feste Konsistenz. Sie schmelzen im Bereich von 30-45 °C (stearylmodifiziertes Poly(glyceroladipat)) bzw. zwischen 50°C und 65°C (behenylmodifiziertes Poly(glyceroladipat)).
Bei den behenyl- und stearylmoldifizierten Poylmeren kann durch Schmelz- oder Extrusionsprozesse sehr einfach ein implantierbarer Formling gewonnen werden.
Beispiel 2:
Laurylsäuremodifiziertes Poly(glyceroladipat) (Veresterungsgrad 25 % bezogen auf freie
Hydroxylgruppen des Polyglycerinadipats) wird durch eine 25 Gauge Nadel in phosphatgepufferter Kochsalzlösung (PBS, 1:10 verdünnt) injiziert. Es bildet sich ein kugelförmiges Depot (Figur 3).
Beispiel 3:
Laurylsäuremodifiziertes Poly(glyceroladipat) (Veresterungsgrad 95 % bezogen auf freie
Hydroxylgruppen des Polyglycerinadipats) wird durch eine 25 Gauge Nadel in phosphatgepufferter Kochsalzlösung (PBS, 1:10 verdünnt) injiziert. Es bildet sich ein kugelförmiges Depot. Beispiel 4:
Olsäuremodifiziertes Poly(glyceroladipat) (Veresterungsgrad 15 % bezogen auf freie Hydroxylgruppen des Polyglycerinadipats) wird durch eine 25 Gauge Nadel in phosphatgepufferter Kochsalzlösung (PBS, 1:10 verdünnt) injiziert. Es bildet sich ein kugelförmiges Depot.
Beispiel 5:
Olsäuremodifiziertes Poly(glyceroladipat) (Veresterungsgrad 92 % bezogen auf freie Hydroxylgruppen des Poly(glycerinadipats)) wird durch eine 25 Gauge Nadel in phosphatgepufferter Kochsalzlösung (PBS, 1:10 verdünnt) injiziert. Es bildet sich ein kugelförmiges Depot.
Beispiel 6:
Fettsäuremodifizierte Poly(glycerol-sebacat) Polymere werden analog den in /10/ publizierten Synthesewegen hergestellt. Als Strukturelement (A) (Dikarbonsäure) wird Sebacinsäure verwendet, als Polyol (Strukturelement (B)) dient Glycerol, welches drei Hydroxylgruppen besitzt (Figur 1). Das Polymerrückgrad Poly(glycerol-sebacat) wird zum Beispiel durch eine enzymatische Reaktion von Divinylsebacat mit Glycerol in Tetra hydrofu ran oder einem anders geeigneten Lösungsmittel durchgeführt /10/. Beispielhaft verwendete Fettsäuren sind Laurin-, Stearin-, Behen- oder Ölsäure. Der Substitutionsgrad der Fettsäuren beträgt zwischen 1% und 100 % (bezogen auf die nach
Hydroxylgruppen des Poly(glycerol-sebacat)
Beispiel 7
Stearylmodifiziertes Poly(sorbitol-adipat)
Das Polymerrückgrad wird aus dem Polyol Sorbitol und der Dikarbonsäure Adipinsäure analog den für Poly-(Glycerol-adipat) publizierten Vorschriften hergestellt und mit Stearinsäure modifiziert. Bei einem Veresterungsgrad von 30 % (Veresterungsgrad 30 % bezogen auf freie Hydroxylgruppen des Poly(sorbitol-adipats) entsteht ein bei Raumtemperatur festes Polymer, welches bei 43°C schmilzt.
Durch Schmelz- oder Extrusionsprozesse kann sehr einfach ein implantierbarer Formling gewonnen werden. Beispiel 8:
In vitro Freisetzung des Fluoreszenzfarbstoffes l,l'-Dioctadecyl-3,3,3',3'- tetramethylindocarbocyanine Perchlorate (DU): Laurylsubstituierte Poly(glycerol-adipat) Polymere wurden mit dem Fluoreszenzfarbstoff DM beladen (1% m/m) und 60 Mikroliter bei 37°C in vitro in PBS inkubiert.
Die folgenden Kurven in Figur 4 zeigen eine kontrollierte Freisetzung des Modellstoffes in vitro. Die Zahl hinter dem L symbolisiert den Substitutionsgrad der Laurinsäure bezogen auf freie
Hydroxylgruppen des Poly(glycerin-adipats).
Beispiel 9:
In vivo Freisetzung des Fluoreszenzfarbstoffes DM aus laurylsubstituierten Poly(glycerol-adipat)
Die Polymere wurden mit dem Fluoreszenzfarbstoff l,l'-Dioctadecyl-3,3,3',3'- tetramethylindocarbocyanine Perchlorate (DU) (0,5-1 % m/m) beladen und 50 Mikroliter subkutan in SKHl-Mäuse injiziert .
In vivo Fluoreszenzbilder von den DM beladenen laurylmodifizierten Poly(glycerol-adipat) Polymeren nach subkutaner Injektion (50 Mikroliter) in SKHl Nacktmäusen belegten durch sichtbare Signale die in vivo Freisetzung. Der Substitutionsgrad der Laurinsäure betrug 95 % bzw. 25%.
Die Ergebnisse zeigen eine kontrollierte in vivo Freisetzung über mehrere Wochen bis Monate. Hierbei wurde überraschenderweise gefunden, dass das lipophilere Implantat (Substitutionsgrad 95 % bezogen auf freie Hydroxylgruppen) rascher freisetzt als das niedrig substituierte Implantat (25 % bezogen auf freie Hydroxylgruppen). Die Ergebnisse belegen, dass die Freisetzung von Stoffen in vivo durch den Substitutionsgrad mit der Fettsäure gesteuert werden kann.
Beispiel 10:
Herstellung flüssiger Dexamethason-haltiger Implantate. Dexamethason wird in
fettsäuremodifiziertes Poly(glycerol-adipat) in einer Konzentration von 10 % m/m eingearbeitet. Bei den flüssigen Polymeren (lauryl- und oleylmodifiziertes Poly(glycerol-adipat) kann die Einarbeitung bei Raumtemperatur erfolgen. Die dexamethasonbeladenen (lauryl- und oleylmodifiziertes
Poly(glycerol-adipat) Polymere können aufgrund ihrer flüssigen Konsistenz injiziert werden. Beispiel 11: Herstellung fester Dexamethason-haltiger Implantate. Dexamethason wird in fettsäuremodifiziertes Poly(glycerol-adipat) in einer Konzenraton von 20 % m/m eingearbeitet. Die bei Raumtemperatur festen Polymere (z.B. stearylmodifiziertes und behenylmodifiziertes Poly(glycerol-adipat)) werden geschmolzen und der Wirkstoff wird homogen eingearbeitet. Durch Schmelzen und Erstarren, Verpressen oder Extrudieren kann bei den festen Polymeren ein geeigneter Formling (z.B. Blättchen oder Stäbchen) erhalten werden, welcher implantiert werden kann.
Beispiel 12:
Nifidipin wird in stearylmodifiziertes Poly(sorbitol-adipat) eingearbeitet in einer Konzentration von 10 % m/m eingearbeitet. Hierzu wird das Polymer bei 50 °C geschmolzen und der Wirkstoff unter Lichtschutz homogen verteilt. Das geschmolzene Wirkstoff haltige Polymer wird durch Erstarren in einer geeigneten Form in die gewünschte Größe und Form gebracht.
Beispiel 13:
Wirkstoff haltiges in situ Implantat. Stearylmodifiziertes Poly(glycerol-adipat) wird mit N- Methylpyrrollidon (NMP) in einem Verhälntis von 1:1 (m/m) gemischt. Leuprolinacetat wird in einer Konzentration von 5 % (m/m) homogen eingearbeitet. Die Zubereitung kann durch eine 25 Gauge Kanüle verabreicht werden und bildet nach Kontakt mit Wasser oder im Körperinneren in situ ein Implantat aus.
Beispiel 14:
Implantat mit kovalent gebundener Betulinsäure. Das Polymerrückgrat aus Poly(glycerol-adipat) wird nach den in der Literatur beschriebenen Vorschriften synthetisiert /10/. Anstelle der in der Literatur /10/ beschriebenen Fettsäuren wird in einer analogen Reaktion die bioaktive Substanz Betulinsäure kovalent an das Polymerrückgrat geknüpft. Das entstandene Betulinsäure-Poly(glycerol-adipat) kann entweder durch Schmelzen in eine gewünschte Implantatform überführt werden oder mit Hilfe eines bioverträglichen organischen Lösungsmittels (z.B. NMP) als in situ Implantat appliziert werden.
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Erläuterungen zu den Figuren
Figur 1:
Vereinfachte (links) und detailliertere (rechts) Grundstruktur von modifizierten Poly(dikarbonsäure- multiol estern).
Strukturelement (A): Dikarbonsäure
Strukturelement (B): Polyol (Diol, Triol oder höherwertiges Polyol)
Strukturelement ©: kovalent gebundener Wirkstoff oder Hilfsstoff
Der bioabbaubare Polymerrückgrad entsteht aus der Veresterung von Dikarbonsäuren
(Strukturelement (A)) und Polyolen (Strukturelement (B)). Hierbei werden zwei Hydroxylgruppen des Polyols verestert. Bei höherwertigen Polyolen (Anzahl der Hydroxylgruppen größer / gleich drei) können die nach Bildung des Polymerrückgrates noch freien Hydroxylgruppen kovalent mit bioaktiven Substanzen oder Hilfsstoffen (z. B. Fettsäuren) teilweise oder vollständig kovalent verbunden werden (Strukturelement (C)).
Figur 2:
Strukturbeispiele von fettsäuremodifizierten Poly(glycerol-adipat). Das Polymerrückgrat ist aus Poly(glyceroladipat) aufgebaut. Ein Teil der nach Bildung des Polymerrückgrates noch freien
Hydroxylgruppen ist mit Fettsäuren (Laurinsäure, Stearinsäure, Behensäure, Ölsäure) verestert.
Figur 3:
Schematische Abbildung des Verhaltens von laurylsubstituierten Poly(gylceroladipat) Polymeren nach einer in vitro Injektion mit einer 25 Gauge Nadel in phosphatgepufferte Kochsalzlösung (PBS Puffer, pH 7,4 1:10 verdünnt mit bidestillierten Wasser), (a); nach einer Minute (b) und 6 Stunden (c) nach Injektion. Das Implantat sinkt nach Injektion zu Boden und bildet eine kugelähnliche Form aus.
Figur 4:
In vitro Zeitabhängigkeit der Fluoreszenzintensität von l,l'-Dioctadecyl-3,3,3',3'- tetramethylindocarbocyanine Perchlorate (DM) beladenen laurylsubstitutierten
Poly(glyceroladipinsäure) Polymeren. Der Modellstoff wird in vitro kontrolliert über mehrere Wochen freigesetzt.
Next Patent: AFTER-CLEANING METHOD FOR METALLIC CONTACT ELEMENTS