Depuis leur découverte au début des années 1990 par Iijima (Nature 354,56 (1991)), les nanotubes et notamment les nanotubes de carbone, ont suscité un intért croissant en raison de leurs propriétés physiques, électroniques ou thermiques. La majorité des applications nécessitent un très haut niveau de pureté des nanotubes, et de nombreuses méthodes de purifications ont été décrites, que ce soit par oxydation, par filtration ou encore par chromatographie. Très souvent, après ces processus, les nanotubes sont endommagés (oxydation, rognures aux extrémités,...) ou voient leur structure graphitique modifiée (fonctionnalisation covalente sur les bouts ou les parois latérales des tubes), ce qui entraîne une altération parfois très importante de leurs propriétés.

On mesure donc l'intért d'une méthode de purification efficace et non destructive.

Les travaux des inventeurs dans ce domaine montrent que certains composés peuvent s'auto-organiser autour de nanotubes en formant des anneaux et les protéger ainsi contre toute détérioration au cours de leur manipulation. Avantageusement, ces composés peuvent tre détachés des nanotubes et récupérés pour des applications d'intérts, les nanotubes étant alors obtenus avec un niveau de pureté très élevé.

L'invention a donc pour but de fournir de nouveaux composés utilisables pour la protection des nanotubes.

Elle vise également une méthode de purification de nanotubes mettant en oeuvre ces composés.

Selon encore un autre aspect, l'invention vise les nouvelles structures avec auto-assemblage desdits composés autour des nanotubes et leurs applications, notamment pour la protection et la purification de nanotubes, ou encore la vectorisation de produits actifs.

Les nouvelles structures avec auto-organisation de macromolécules autour des nanotubes sont caractérisées en ce qu'elles sont essentiellement formées d'anneaux de composés lipidiques polymérisés entourant des nanotubes, ces composés polymérisés étant obtenus à partir de composés lipidiques, -comportant une ou deux chaînes A liées à un groupe Z : - A représentant une chaîne, CH3- (CH2) m-C=C-C---C- (CH2) n- - n et m, identiques ou différents, étant des entiers de 1 à 16, et - Z représentant une tte polaire constituée par un groupe -COOH,-CO-NH-Y,-NH2 ou N+ (R) 3 R étant un alkyle de Cl à C4, et Y un radical-(CH2) 4-C (R1)-N (CH2-COOH) 2, avec Rl représentant H ou un radical COOH dans le cas ou A représente une seule chaîne lipidique, ou un groupe de structure : avec R2 représentant un groupe-COOH,-CO-NH-Y1, Y1 étant un radical- (CH2) q-C (R3)-N (CH-COOH) , avec R3 représentant H ou un radical COOH, ou Z ou R2 peuvent tre également des ttes polaires hydrophiles, neutres, de type sucre ou polysaccharide.

Des composés lipidiques préférés polymérisables sont des lipides amine de formule CH3- (CH2) m-C9C-C9C- (CH2) n-NH2 ou des ammoniums quaternaires de formule CH3- (CH2) m-C9C-C9C- (CH2) n~N (R) 3

D'autres composés lipidiques préférés polymérisables sont des lipides acides bi-brins, c'est-à-dire avec deux chaînes A fixées à Z.

D'autres composés encore sont des lipides fonctionnalisés par un groupe chélatant, comme l'acide nitrilotriacétique (NTA) ou l'acide iminodiacétique (IDA).

L'invention vise également un procédé d'obtention des structures définies ci-dessus, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes consistant à mettre en contact des nanotubes bruts avec une solution de lipides de manière à former une suspension stable ; polymériser les lipides qui se sont auto-arrangés autour des nanotubes ; récupérer les nanotubes enrobés par des anneaux constitués par les lipides polymérisés.

Avantageusement, les nanotubes bruts sont soniqués dans la solution de lipides.

Dans le procédé de l'invention, ces lipides sont en solution dans un milieu aqueux tamponné contenant avantageusement un détergent. On citera comme détergent, le sodium dodécyl sulfate (SDS).

Après la sonication, le détergent est éliminé par dialyse.

La suspension de nanotubes dans le tampon aqueux est soumise à un traitement pour polymériser les lipides.

On a recours à une irradiation sous ultra-violet.

Dans un mode de mise en oeuvre de l'invention, les structures obtenues sont soumises à un traitement afin de séparer les nanotubes entourés d'anneaux lipidiques polymérisés de toutes les impuretés contenues dans le brut de synthèse des nanotubes.

Cette étape est réalisée, par exemple, par chromatographie par exclusion de taille.

Des phases stationnaires constituées par de la silice à porosité contrôlée, tel que le produit commercialisé sous la dénomination CPG (pour"controlled pore glass") par Millipore Corp., se sont révélées satisfaisantes. Une ou plusieurs étapes de purifications peuvent tre réalisées et la porosité avantageusement modifiée selon l'étape de purification. On obtient ainsi des nanotubes de grande pureté.

Il est également possible de retirer les anneaux en appliquant un champ électrique, par exemple dans un dispositif d'électrophorèse.

Les nanotubes entourés de macromolécules polymérisées ainsi obtenus présentent des propriétés avantageuses dans de nombreuses applications.

Les nanotubes entourés des hémi-micelles photopolymérisées permettent d'effectuer, notamment, un raccourcissement contrôlé des tubes par sonication.

On sait que les nanotubes monofeuillets sont sensibles à la sonication forte et qu'une exposition prolongée à des ultrasons provoque une forte dégradation des tubes, essentiellement par un phénomène de rognure des nanotubes par leurs extrémités.

De mme, on a pu noter que les parois latérales des nanotubes sont fortement endommagées après une sonication intense, ce qui perturbe la structure graphitique des nanotubes et altère leurs propriétés électroniques.

Il s'avère que les nanotubes mono parois de l'invention, qui sont entourés de macromolécules polymérisées, permettent de contrôler leur raccourcissement.

Les inventeurs ont en effet constaté qu'en soumettant des échantillons de nanotubes mono-parois, recouverts de lipides polymérisés, tel que décrit ci-dessus, à un traitement de sonication, il est possible de couper les nanotubes et d'atteindre, par exemple, des tailles moyennes de l'ordre de 400 nm après 2 heures de sonication.

Comme illustré dans les exemples, on peut ainsi obtenir des nanotubes mono parois coupés à des tailles voisines sous forme de tubes isolés ou en petits fagots, ce qui montre que la coupure ne s'est pas faite par une rognure aux extrémités, mais plutôt par cassure des nanotubes en deux.

Le lipide polymérisé à la surface des nanotubes sert donc de protection pour les nanotubes.

Les espèces polymériques de l'invention en forme d'anneaux qui ont été détachés des nanotubes de carbone par électrophorèse constituent de nouveaux vecteurs de molécules hydrophobes ou de protéines membranaires, car l'intérieur de ces anneaux est de structure bicouche membranaire.

Comme indiqué ci-dessus, les macromolécules formées de lipides polymérisés à la surface des nanotubes sont hydrophobes dans leur partie interne et hydrophiles dans leur partie externe.

Ils constituent donc des vecteurs d'intért pour des molécules hydrophobes dans des milieux aqueux.

L'invention vise donc l'application des anneaux polymériques détachés des nanotubes comme vecteurs de produits hydrophobes.

Les produits hydrophobes auront tendance, lorsqu'on les met en contact avec lesdites macromolécules polymérisées, à se placer à l'intérieur de la poche hydrophobe présentée par les lipides polymérisés. Ces derniers sont solubles en milieu aqueux en raison de leur partie hydrophile extérieure et l'ensemble lipide/produit hydrophobe sera alors également soluble.

Cette application utilise les nanotubes pour la fabrication de transporteurs de molécules non hydrosolubles en particulier des médicaments et des protéines hydrophobes.

En utilisant des lipides de taille appropriée, il est possible de disposer de recouvrements mimant la membrane cellulaire, les macromolécules polymérisées autour des

nanotubes pouvant tre apparentées à des bi-couches lipidiques.

Avec des lipides dont la taille est de l'ordre de grandeur de celle des lipides d'une membrane cellulaire, et des nanotubes de diamètre approprié, l'invention fournit des structures dont les anneaux de recouvrement permettent de solubiliser des protéines membranaires. En mettant en contact, en milieu aqueux, des protéines membranaires avec des anneaux lipidiques polymérisés selon l'invention, la partie hydrophobe des protéines membranaires entre en contact avec l'intérieur des anneaux. Le complexe macromolécule/protéine est alors soluble en phase aqueuse, ce qui permet de solubiliser des protéines membranaires sans avoir recours à des détergents qui risquent de les endommager ou de les dénaturer.

Selon un autre aspect de grand intért, l'invention vise l'application des nanotubes mono et multi feuillets comme moteurs moléculaires.

Les nanotubes mis en oeuvre comportent au plus quelques anneaux de lipide polymérisé, de préférence un seul anneau, et sont soumis à un champ électrique alternatif ou non de manière à déplacer le ou les anneaux le long du nanotube.

Les nouvelles structures de l'invention avec auto- organisation de macromolécules autour des nanotubes sont également utilisables pour la vectorisation de produits en général, permettant leur délivrance spécifique ou non spécifique. Elles. présentent ainsi un grand intért dans divers domaines, notamment en pharmacie pour l'encapsulation de principes actifs de médicaments, ou en cosmétique et parfumerie, pour la vectorisation de fragrances, huiles essentielles et autres, ou pour l'encapsulation de divers produits actifs comme les phéronomes. Ces structures sont donc avantageusement utilisables dans les applications habituelles des liposomes.

D'autres caractéristiques et avantages de l'invention seront donnés dans les exemples qui suivent et en se référant aux figures 1 à 3, qui représentent respectivement des photos au microscope électronique à transmission de structures et de nanotubes selon l'invention, - les figures la et lb, correspondant respectivement à un échantillon brut de nanotubes mono parois et à un échantillon après une 2étape de purification ; - les figures 2a et 2b, correspondant respectivement à un échantillon brut de nanotubes multi feuillets et à un échantillon après une 2ème étape de purification ; et - la figure 3 a des nanotubes mono parois coupés après sonication forte d'une heure.

Exemple 1 procédé d'obtention de structures selon l'invention Un échantillon de nanotubes bruts mono ou multi feuillets, quel que soit le procédé de synthèse, est soniqué pendant 5 min dans une solution de lipide (11, 8) NTA (lipide à fonctionnalité nitrilotriacétique), à une concentration de lmg/mL de tampon Tris (pH8) contenant 1% de SDS. Après sonication, les nanotubes sont sous forme de suspension stable dans le tampon aqueux. Le détergent est éliminé par dialyse contre du Tris sans SDS, pendant 48 h, en changeant le Tris toutes les 12 h. Une fois la dialyse terminée, on polymérise le lipide qui s'est auto-arrangé autour des nanotubes en irradiant l'échantillon sous UV (lambda = 254 nm) pendant 1 h, et on récupère les structures formées.

Exemple 2 : procédé de purification de nanotubes On utilise la technique de chromatographie par exclusion de taille avec comme phase stationnaire du CPG, commercialisé par Millipore Corp. (Lincoln Park, NJ, EUA).

Une première étape de purification est réalisée avec du CPG 3 000 A ayant une taille de pores moyenne de 300nm. Cette phase stationnaire est placée dans une colonne de 14 cm x 0,7

cm, et conditionnée avec une solution aqueuse de SDS à une concentration de 0, 25%.

0,5mL de suspension de nanotubes irradiés (lmg/mL) monoparois ou multifeuillets, et déposé sur la colonne et est élué avec du SDS aqueux à une concentration de 0, 25%. Le flux de l'éluant est réglé à environ lOmL/h. Après un volume mort de 4mL, on collecte 6 fractions de 2mL que l'on observe par microscopie électronique à transmission (TEM).

Pour les nanotubes multifeuillets, on observe un maximum de tubes dans la première fraction avec quelques impuretés (Fig. l). Les fractions suivantes contiennent essentiellement du carbone amorphe et d'autres impuretés, et quelques rares nanotubes. La première fraction est alors engagée dans une deuxième étape de purification en déposant 0,5mL sur une colonne de 14 cm x 0,7cm contenant du CPG 1400 A (taille moyenne des cavités : 140 nm). Le mme éluant est utilisé, et après un volume mort de 6mL, on récupère 6 fractions de 0,5mL, le flux d'éluant étant réglé à environ lOmL/h. Des observations TEM ont montrés que la deuxième fraction contenait des nanotubes multifeuillets purs, pratiquement dépourvus d'impuretés.

Le mme procédé est utilisé pour la purification des nanotubes monoparois. Après la première étape de purification sur la colonne CPG 3000 A, on collecte des fractions de 2mL après un volume mort de 4mL.

L'observation au microscope montre que la première des 6 fractions contient les nanotubes les plus purs (Fig. 2).

Les fractions suivantes contiennent très peu de nanotubes et une grande majorités d'impuretés. La première fraction est réengagée dans un nouveau cycle de purification, en utilisant une nouvelle colonne CPG 3000 A (volume mort : 2 mL ; fractions de 0,5 mL). On récupère 6 fractions. L'observation au microscope montre que les fractions 4 et 5 contiennent des nanotubes monoparois avec une pureté supérieure à 95% (Fig. 3).

Les échantillons de nanotubes purifiés sont assemblées et centrifugés jusqu'à l'obtention d'un dépôt noir et d'un surnageant translucide. On enlève le surnageant et on lave les nanotubes déposés avec de l'eau pure afin d'enlever le reste de détergent.

Après 3 min de sonication, on centrifuge à nouveau l'échantillon, on enlève le surnageant, et on recommence les étapes de lavage, sonication et centrifugation à 3 reprises.

Le solide déposé après la dernière centrifugation est lyophilisé pour donner un échantillon sec de nanotubes propres recouverts de lipides polymérisé.

Exemple 3 : Procédé d'obtention des nanotubes dépourvus de polymère lipidique Les nanotubes obtenus dans l'exemple 2 sont portés à une température supérieure à 90°C pendant environ 14 h dans du tampon Tris, ce qui conduit à la destruction des lipides polymérisés. Un lavage avec un solvant organique, comme par exemple le méthanol ou l'éthanol, permet d'enlever le reste de polymère.

Exemple 4 Procédé d'obtention d'anneaux lipidiques polymérisées utilisables en tant que vecteurs de molécules ou de protéines hydrophobes Les nanotubes entourés de macromolécules polymériques sont soumis à une électrophorèse sur gel d'agarose en utilisant un électrolyte contenant un tampon Tris + glycine avec 0, 1% de SDS. Ainsi, les anneaux moléculaires peuvent tre détachés des nanotubes de carbone et récupérés afin d'tre utilisés dans d'autres applications.

Exemple 5 : Préparation d'un nanotube avec anneaux de macromolécules polymérisées utilisables comme moteurs moléculaires On mélange une faible proportion de lipide photopolymérisable avec un autre lipide non photopolymérisable choisi parmi des lipides ne formant pas de micelles mixtes, en

solution aqueuse, avec le lipide photopolymérisable. Un lipide non photopolymérisable approprié contient une extrémité faiblement perfluorée, qui ne formera des micelles qu'avec des lipides du mme type et ne formera pas de micelles mixtes avec des lipides entièrement hydrogénés.

On procède comme indiqué ci-dessus. On obtient des nanotubes avec deux types de micelles et donc deux types d'anneaux, un seul étant photopolymérisable. Etant donné que les lipides photopolymérisables sont pris en large défaut par rapport à l'autre type de lipides, il ne se forme que très peu d'arrangements polymérisables sur les nanotubes. Après irradiation par UV, les produits sont lavés avec un solvant organique, comme le méthanol ou l'éthanol, afin de retirer tout élément nonpolymérisé autour des nanotubes.

Il ne reste alors que quelques anneaux, de préférence un seul anneau, sur le nanotubes qui sont utilisables dans l'application comme nanomoteurs.

Exemple 6 : Synthèse des composés lipidiques utilisés pour la fabrication des structures de l'invention Synthèse voie générale de synthèse des acides : voie 1 : 0 zozo -n-BuLi, 1, Hex, 0°C I"-' NH, OH, HCI, CuCI-n OH EtNH= , KOH m (4 m, nez voie 2 : OH n-BuLi, I, _ OH m Hex, 0°C m i v OH NH20H, HCI, CuCI m EtNH2 Dq, KOH n CrO3, H2504 acétone 0 OH 'n synthèse des lipides amine : 0 OH LiAlH, - OH im Et, O, 0-C MsCI, NEt3 THF, 0°C CN NACN - f-JJ'CN CH3CN reflux m n m LiA) H LíAIH4 Et20, 0°C 9 NH2 m n m n synthèse des ammoniums quaternaires : voie 1 : voie 2 : o voie 2 : LiAlH, ? -- OH--a-OH N R R TfOTf, <4, R = H ou Me THY, oc Nme3, Toluène Ouf m OTf synthèse des lipides acides bibrins : 1°/NaH, HMPT, THF/s _ j} 2°/épibromhybrine, THF m-- OH ri OH n--p m 1°/NaH, HMPT, THF 2°l Br2CH2CO2tBu, THF , R TFA, CE2C [m-Yctsu p s'°n O ''m p /O R= H3C zur n synthèse des lipides NTA : CO, H 0 0 N C02H 1-/EDC, NHS, CH2cl,-- -- oh m n 2° HaNNTA m--H CO H lipide C02H DMF, NEt3, H. O synthèse des lipides NTA bibrins : synthèse du lipide fluoré : HCOH NaH, TBDMSCI OTBDMS HO HO THF, reflux 76% (COCI) 2, DMSO CH2CI2 68% O t r Ph3PCH2, THF OTBDMS o OTBD S 4 7 7 F3C (CF2) 2I Pd (PPh3) 4, Et20 48% I (CF2) 2 OTi3DMS H2, Pd/C io% OTB F3C >s t/ » F3C < zDMS 7 NaHCO3j MeOH \ 8 38°fo 7 38% 8 TBAF, THF 94% Cr03, HZS04 (C OH etone. (C 2) 2 0 H sao 3 s 0 0 0 1°/EDC, NHS CH, C12 qtitatif 2°/H2N\/NTA NEt3, DMF/H20 64% H (CF2) a N C02H FC U 7 CO2H COSH