Technisches Gebiet:

Die Erfindung bezieht sich auf eine Vorrichtung sowie ein Verfahren zur immunologischen und/oder histochemischen Untersuchung von Patientenproben, die in Form von Gewebeschnitten und/oder Zellen vorliegen. Die jeweiligen Patientenproben werden nach ihrer Fixierung auf einem Substratträger und anschließender Anfärbung mit Hilfe eines geeigneten Reaktanten einer mikroskopischen Untersuchung zur Befundung zugeführt.

Stand der Technik:

Auf dem Gebiet der Labordiagnostik sind verschiedene Analyseverfahren bekannt, bei denen jeweils Patientenproben in Form von Gewebeschnitten oder Zellen zunächst angefärbt und dann die angefärbten Strukturen im Rahmen einer Befunderstellung untersucht werden. Insbesondere im Bereich der Histologie bzw. Histopathologie werden mikrometerdünne, gefärbte Gewebsschnitte hergestellt und am Mikroskop beurteilt. Zum Probengut beim histologischen Arbeiten gehören vor allem Operationspräparate, Probeexzisionen sowie mittels Biopsien entnommenes Gewebe, wobei das vorrangige Ziel bei der Untersuchung derart angefärbter Gewebeschnitte in der sicheren Erkennung und Typisierung von Tumoren liegt.

Für die Handhabung der Schnitte für Färbung, Mikroskopie und Archivierung werden üblicherweise Standard-Objektträger aus Glas mit Abmessungen von 26 x 76 x 1 mm verwendet. Auf einen derartigen Objektträger werden auf einer Seite ein einzelner Schnitt oder manchmal eine kleine Gruppe von Schnitten aufgezogen. Darüber hinaus sind schachbrettartige Anordnungen von sehr kleinen Schnitten bekannt, die bei speziellen Analysen eingesetzt werden.

In diesem Zusammenhang ist aus der EP 0 238 190 B1 ein Verfahren zur Herstellung einer Vielzahl von Gewebepräparaten bekannt, bei dem aus einem Gewebestück zunächst eine Gruppe von zylindrischen Gewebestäben mit verhältnismäßig großer Länge, bis zu 10 mm, und kleiner Querschnittsfläche, etwa 1 mm ² , herausgeschnitten bzw. herausgestanzt wird. Diese Gewebestäbe werden parallel zueinander und eng gepackt in einer Umhüllung angeordnet. Die Umhüllung, die bevorzugt aus Teilen des Kaninchendünndarms gewonnen wird, wird eng um die Gewebestäbe gewickelt und mittels eines Drahtes verschnürt. Die Enden des sich ergebenden zylindrischen Bündels von Gewebestäben werden zugeschnitten, so dass die Enden aller Gewebestäbe an den Enden der Umhüllung freiliegen. Der Draht wird entfernt und die gebündelten Gewebestäbe auf herkömmliche Weise in Paraffin eingebettet. Abschließend wird der Paraffinblock senkrecht zur Längsrichtung der Gewebestäbe geschnitten, so dass aus jedem Paraffinblock eine Vielzahl von Gewebeschnitten hergestellt werden kann. Mit dem bekannten Verfahren kann somit zwar in kurzer Zeit eine vergleichsweise große Menge von Gewebeschnitten hergestellt werden, es ist aber nur mit verhältnismäßig großem Aufwand möglich, Gewebeschnitte aus unterschiedlichen Bereichen eines Gewebestücks auf einem Objektträger anzuordnen bzw. gleichzeitig zu untersuchen. Problematisch an der beschriebenen technischen Lösung ist allerdings, dass es nur mit verhältnismäßig großem Aufwand möglich ist, Gewebeschnitte aus unterschiedlichen Bereichen eines Gewebestücks auf einem Objektträger genau so anzuordnen, wie es für eine schnelle und effektive Untersuchung wünschenswert wäre.

Ferner ist aus der EP 0 350 189 B1 ein Mehrfachprobenträger zur Verwendung in immuno- histologischen Untersuchungsverfahren bekannt. Der beschriebene Probenträger zeichnet sich dadurch aus, dass auf einen Objektträger eine Mehrzahl von Proben beabstandet zueinander aufgebracht sind, um so eine verbesserte automatisierte Bildanalyse zu ermöglichen. Es werden bevorzugt mehrere Gewebeprobenfragmente nahezu äquidistant in einem Rechtseckmuster angeordnet, wobei in Abhängigkeit bestimmter Probeneigenschaften zusammengehörige Probenfragmente in einem Abschnitt des Substratträgers zusammengefasst werden. Eine flexible Anordnung von Probenfragmenten, die eine bedarfsgerechte Bestückung von Substratträgern ermöglicht, so dass die Bestückung beispielsweise in Abhängigkeit eines geplanten Arbeitsschrittes im Labor verändert wird, ist mit der beschriebenen technischen Lösung allerdings nicht umsetzbar.

Ausgehend von den aus dem Stand der Technik bekannten technischen Lösungen liegt der Erfindung die Aufgabe zugrunde, eine Vorrichtung sowie ein Verfahren zur Untersuchung von Patientenproben, insbesondere von Gewebeschnitten, derart weiter zu bilden, dass einerseits eine zuverlässige und andererseits eine im Hinblick auf Kosten und den benötigten Zeitaufwand optimierte Untersuchung einer Patientenprobe möglich ist. Mit Hilfe der anzugebenden technischen Lösung, soll der Grad an Flexibilität und Automatisierung in einem Labor erhöht werden können und gleichzeitig eine sichere Bereitstellung, Färbung, Untersuchung und Archivierung unterschiedlicher Patientenproben möglich sein. Hierbei ist es von besonderer Bedeutung, eine Lösung anbieten zu können, die eine flexible und stets den Anforderungen eines Labors angepasste Anordnung der zu untersuchenden Proben gewährleistet. Gleichzeitig sollen eine erhöhte Auslastung der im Labor verwendeten Geräte sowie Einsparungen bei den verwendeten Hilfsstoffen, insbesondere in Bezug auf die verwendeten Reaktanden und Eindeckmedien, erzielbar sein. Auf diese Weise soll der Probendurchsatz in Laboren bei gleichbleibendem oder sogar verringertem Platzbedarf gesteigert werden. Ebenso soll bei Einsatz der erfindungsgemäßen Vorrichtung sowie des entsprechenden Verfahrens gewährleistet werden, dass vergleichsweise kurze Reaktionszeiten und eine hohe Qualität der Färbungen, insbesondere durch eine kontinuierliche Konvektion der flüssigen Phase, sicher gestellt werden können. Zeitintensive und fehlerträchtige manuelle Schritte während der Färbung sollen weitgehend vermieden werden, so dass insgesamt eine effektive Arbeitsweise während der Untersuchung von Patientenproben sichergestellt wird.

Die zuvor geschilderte Aufgabe wird mit einer Vorrichtung gemäß Anspruch 1 sowie einem Verfahren nach Anspruch 19 gelöst. Vorteilhafte Ausführungsformen der Erfindung sind Gegenstand der abhängigen Ansprüche und werden in der folgenden Beschreibung unter teilweiser Bezugnahme auf die Figuren näher erläutert.

Darstellung der Erfindung:

Erfindungsgemäß ist eine Vorrichtung zur immunologischen und/oder histochemischen Untersuchung von Patientenproben, die in Form von Gewebeschnitten und/oder Zellen vorliegen, mit wenigstens einem Substratträger zur Aufbringung wenigstens einer der Patientenproben und mit zumindest einem Halter, der mit wenigstens einem Substratträger bestückbar ist, derart weitergebildet worden, dass Mittel vorgesehen sind, durch die eine Bestückung des Halters mit wenigstens einem Substratträger nach Durchführung wenigstens eines Laborarbeitsschrittes veränderbar ist. Die Erfindung beruht somit auf dem wesentlichen Gedanken, dass die Anordnung der Patientenproben im Zeitraum zwischen der Bereitstellung der Proben bis zur Archivierung nicht starr ist, sondern stets den Anforderungen im Labor, insbesondere den Arbeitsabläufen, anpassbar ist. Die Anordnung bzw. die Zusammenstellung der einzelnen Patientenproben kann somit zwischen den Arbeitsschritten im Labor verändert werden. Wesentlich hierfür ist, dass ein Halter vorgesehen ist, in oder an dem bedarfsgerecht wenigstens ein Substratträger befestigbar ist, wobei auf einem Substratträger eine oder mehrere Proben mit unterschiedlichen Eigenschaften angeordnet sein können. Hierbei ist es wiederum denkbar, dass entweder ein Halter zur Aufnahme wenigstens eines Substratträgers vorgesehen ist oder aber Halter unterschiedlicher Ausführungsform bereitgestellt werden, die beispielsweise speziell für die Anforderungen bei der Inkubation, der mikroskopischen Untersuchung oder der Archivierung der Proben ausgeführt sind. Ebenso ist es grundsätzlich denkbar, dass die einzelnen Proben in unterschiedlicher Form, beispielsweise als ein vergleichsweise großer Gewebeschnitt oder aber in Form unterschiedlicher, miniaturisierter Biochips auf einem Substratträger angeordnet werden.

Unter einem Substratträger im Sinne der Erfindung wird ein Träger, vorzugsweise aus optisch durchlässigem Material, verstanden, der einerseits groß genug ist, eine Gruppe von Proben, insbesondere von Biochips, also von Substraten aus Glas oder Kunststoff mit darauf angeordneten Proben, zu tragen, der aber andererseits wesentlich kleiner als ein Standardobjektträger ist. Auch ist ein Substratträger im Sinne der Erfindung dünner als herkömmliche Objektträger. Diese Miniaturisierung der Substratträger ermöglicht, vorzugsweise zusammen mit der Biochip-Fragmentiertechnik, eine flexible Bildung von Gruppen bei der Zusammenstellung der Proben. Grundsätzlich ist es denkbar, als Trägersubstrat eines Biochips, also Substrat, auf dem sich das zu untersuchende Gewebe oder die Zellen befinden, anstelle von Glas auch Kunststoff, insbesondere eine Kunststofffolie, zu verwenden. Die Proben können hierbei sehr flexibel entsprechend dem Probenaufkommen und den Anforderungen an den analytischen Prozess in sinnvollen Kombinationsgruppen von Proben auf dem Substratträger gruppiert werden. Ebenso können die Substratträger zu sinnvollen Gruppen zusammengestellt werden, die dann gemeinsam zur Prozessierung der Proben, insbesondere zur Inkubation bzw. Färbung, aber auch zur Erzeugung von Abbildern der Proben, zur visuellen Untersuchung mit anschließender Befundung der Proben und/oder zur Archivierung der Proben in einem Halter lösbar befestigt werden. Unter lösbarer Befestigung wird in diesem Zusammenhang verstanden, dass der Halter und wenigstens ein Substratträger zerstörungsfrei von einander getrennt und wieder mit einander verbunden werden können. Ein spezielles Einsatzgebiet für die Erfindung stellt die Tumordiagnostik dar. Hier müssen oft eine Mehrzahl von Schnitten, aus dem „verdächtigen" Bereich des Gewebes auf unterschiedliche Weise angefärbt und später die hierdurch entstehenden Färbemuster verglichen werden. Zur Anfärbung bzw. Inkubation werden hierfür speziell ausgeführte Halter eines ersten Typs mit Substratträgern bestückt. Auf besonders effektive Weise können so Proben verschiedener Patienten, die gleich oder zumindest ähnlich zu färben sind, gleichzeitig prozessiert werden. Für die spätere Auswertung werden die Substratträger dann in einer veränderten Anordnung in einem Halter eines zweiten Typs, insbesondere in einem so genannten Befundungsrahmen, angeordnet. Vorzugsweise werden die Proben nunmehr derart in den Halter angeordnet, dass sich alle unterschiedlich gefärbten Proben eines Patienten in einem gemeinsamen Gestell befinden und vergleichsweise einfach zur Befundung einer Untersuchungseinheit, insbesondere einem Mikroskop, zugeführt werden können.

Gemäß einer speziellen Weiterbildung der Erfindung weist der Halter wenigstens eine Fläche auf, auf der ein Substratträger zumindest bereichsweise auflegbar ist. Ebenso ist es denkbar, dass der Halter und/oder der Substratträger wenigstens ein Befestigungselement aufweist, über das eine lösbare Verbindung zwischen Halter und Substratträger herstellbar ist. Ein derartiges Befestigungselement ist bevorzugt als Rast-, Klemm- oder Schnappelement ausgeführt. In jedem Fall sollte ein wiederholtes Lösen und Verbinden von Substratträger und Halter einfach, und ohne dass es zu einer Beschädigung dieser Komponenten kommt, möglich sein.

In einer weiteren speziellen Ausführungsform der Erfindung ist der zumindest eine Halter als Inkubationshalter ausgeführt. Der Inkubationshalter nimmt hierbei wenigstens einen Substratträger während einer Inkubation auf. Vorzugsweise verfügt der Inkubationshalter über wenigstens eine Flüssigkeitsaufnahme, in die zumindest eine der Patientenproben während einer Inkubation derart eingetaucht wird, dass die Patientenprobe zumindest zeitweise in Kontakt mit einer in der Flüssigkeitsaufnahme befindlichen Flüssigkeit gebracht wird. Der Kontakt zwischen Patientenprobe und der Flüssigkeit, insbesondere einem Reaktanten oder einer Waschflüssigkeit, findet statt, indem die Probe der Flüssigkeitsoberfläche zugewandt, also quasi„kopfüber", in die Flüssigkeit eingetaucht wird. In diesem Zusammenhang ist es denkbar, dass die Flüssigkeitsaufnahme in Form einer Rinne oder einer Wanne ausgeführt ist. Die Form der Flüssigkeitsaufnahme richtet sich danach, wie viele Substratträger in eine Aufnahme eingetaucht werden sollen und/oder nach der Größe und der Form eines Substratträgers. In jedem Fall sind die Rinnen oder Wannen des Inkubationshalters derart ausgeführt, dass sie separate und gegeneinander abgegrenzte Aufnahmen für die jeweils benötigte Flüssigkeit darstellen. In unterschiedlichen Rinnen oder Wannen eines Inkubationshalters können wahlweise gleiche oder verschiedenartige Flüssigkeiten eingefüllt werden.

Auf bevorzugte Weise ist eine Rinne oder Wanne derart ausgeführt, dass ein Austreten einer Flüssigkeit aus der Rinne oder der Wanne zuverlässig verhindert wird. Hierdurch wird insbesondere eine Vermischung von in unterschiedliche Rinnen oder Wannen befindlichen Flüssigkeiten zuverlässig vermieden. Vorzugsweise sind die Flüssigkeitsaufnahmen derart ausgeführt, dass das Volumen der Aufnahmen größer ist als das der jeweils eingefüllten Flüssigkeit. In Ergänzung zu einer geeigneten Gestaltung der Flüssigkeitsaufnahmen ist es ferner denkbar, eine Abdichtung der Rinnen oder Wannen des Inkubationshalters, beispielweise in Form von speziellen Kantenformen und/oder zusätzlichen Begrenzungselementen, vorzusehen.

Eine weitere vorteilhafte Gestaltung der Flüssigkeitsaufnahmen sieht ein Profil in den Aufnahmen vor, das der Führung der Flüssigkeit, insbesondere in Längsrichtung der Flüssigkeitsaufnahmen, dient. Ebenso kann wenigstens ein geeignetes Umlenkelement vorhanden sein, das bei einer Bewegung einer Flüssigkeit in einer Flüssigkeitsaufnahme eine zusätzliche Bewegung, eine Umlenkung und/oder eine Durchmischung der Flüssigkeit bewirkt. Die verwendeten Inkubationshalter werden bevorzugt aus einem Werkstoff, der Makroion oder Aluminium enthält, gefertigt. Eine ganz besondere Weiterbildung der Erfindung sieht vor, dass zumindest ein Bewegungsmittel vorhanden ist, durch das die Flüssigkeit in der Flüssigkeitsaufnahme wenigstens zeitweise relativ zur Patientenprobe bewegbar ist. Eine derartige Relativbewegung kann wahlweise durch eine Bewegung des Substratträgers und/oder eines Inkubationshalters oder aber durch Vorsehen eines Bewegungsmittels, insbesondere eine Pumpe oder eine Ansaugung, das die Flüssigkeit zumindest zeitweise in eine Strömungsbewegung versetzt, verwirklicht werden. Besonders bevorzugt werden der Substratträger und der diesen aufnehmende Inkubationshalter in eine Schwenkbewegung während der Inkubation versetzt, so dass eine Relativbewegung zwischen der Flüssigkeit aufgrund dieser Bewegung erfolgt. Vorzugsweise erfolgt die Bewegung während sich der Halter bzw. der Inkubationshalter und der wenigstens eine Substratträger in einer relativ zu einander fixierten Lage befinden.

In einer weiteren besonderen Gestaltung der Erfindung ist der Halter als Befundungsrahmen ausgeführt. Der Befundungsrahmen weist hierbei Mittel zur Befestigung wenigstens eines Substratträgers während der Befundung auf. Wesentlich ist, dass der Substratträger mit den darauf angeordneten Proben zuverlässig innerhalb des Halters gehalten wird und sicher gemeinsam mit diesem einer Untersuchungseinheit, insbesondere einem Mikroskop, zuführbar ist.

Eine weitere besondere Ausführung der Erfindung sieht vor, dass zumindest zeitweise eine Abdeckung vorgesehen ist, die zwischen einer Optik der Untersuchungseinheit und der Probe angeordnet ist. Auf bevorzugte Weise wird die wenigstens eine auf einem Substratträger angeordnete Probe mit einem Deckglas überdeckt, wobei sich zwischen der Probe und dem Deckglas ein Eindeckmedium befindet. Vorzugsweise verfügt der Substratträger über geeignete Anschlagflächen, auf denen die Abdeckung sicher aufliegt. In diesem Zusammenhang ist es denkbar, dass ein die Probe zumindest abschnittsweise umgebender Begrenzungssteg zumindest teilweise als Anschlagfläche für die aufgelegte Abdeckung dient. Vorteilhafterweise wird die Abdeckung nach abgeschlossener Inkubation der Probe aufgelegt und verbleibt sowohl während der visuellen Untersuchung als auch der anschließenden Archivierung auf dem Substratträger bzw. über der Probe.

In einer speziellen Weiterbildung ist alternativ oder in Ergänzung zu dem zuvor beschriebenen Begrenzungssteg vorgesehen, dass die Probe auf dem Substratträger innerhalb einer Vertiefung angeordnet ist. Die Vertiefung kann hierbei derart ausgeführt sein, dass die Abdeckung umfangsseitig auf einem die Vertiefung umgebenden Rand aufliegt. Eine weitere Ausführungsform der erfindungsgemäßen Vorrichtung sieht vor, dass wenigstens einer der Substratträger eine probenspezifische Kennung mit einem Identifikationscode, der in einer Steuereinheit hinterlegt ist, aufweist. Vorzugsweise handelt es sich bei einer derartigen Kennung um einen ein- oder mehrdimensionalen Barcode oder eine RFID-Markierung, so dass in einer Steuereinheit oder einer Labordatenverwaltung zuverlässig eine Verknüpfung zu Informationen über die auf dem Substratträger befindlichen Proben herstellbar ist. Hierbei ist es denkbar, dass auf einem Substratträger entweder Proben gleichen Ursprungs, insbesondere eines Patienten, oder Proben unterschiedlichen Ursprungs, also von unterschiedlichen Patienten, aufgebracht sind. Vorteilhafterweise werden die Proben auf einem Substratträger in Abhängigkeit eines Optimierungskriteriums zusammengestellt.

Die Kombinations- oder Funktionsgruppen werden hierbei zum Beispiel unter Berücksichtigung der Herkunft der Gewebeproben aus Organen und/ oder Patienten, der durchzuführenden Färbeprotokolle und/oder der nachzuweisenden Antigene bzw. Biomarker zusammengestellt. Soll etwa für mehrere Patienten ein oder mehrere Marker für Brustkrebs nachgewiesen werden, so ist es sinnvoll, jeweils Biochips aus Arealen des Gesamtschnittes eines Patienten auf einem Substratträger anzuordnen, bei denen der gleiche Marker nachzuweisen ist. Auch ist es denkbar, Gewebeproben aus verschiedenen Organen eines Patienten auf einem Objektträger anzuordnen, die die gleichen Färbeprotokolle durchlaufen sollen.

Gemäß eines speziellen Aspekts der Erfindung werden Substratträger gezielt zu einer Funktionsgruppe zusammengestellt, in einem Halter befestigt und einem spezifisch für die ausgewählte Funktionsgruppe konditionierten Inkubationshalter zugeordnet. Sind für die nachzuweisenden Marker ähnliche Färbeprotokolle vorgesehen, so können die Substratträger die Färbeprotokolle in den verschiedenen Rinnen eines Inkubationshalters durchlaufen. Auf weitere Inkubationshalter muss nur zurückgegriffen werden, sobald sich die Färbeprotokolle unterscheiden.

In einer weiteren vorteilhaften Ausführungsform der Erfindung werden die Substratträger auch zur Befundung, Auswertung und Archivierung in speziellen Funktionsgruppen in einem speziellen Halter, insbesondere einem Befundungsrahmen, zusammengestellt. So können z.B. die Proben eines Patienten, die zur Inkubation getrennt worden sind, wieder nebeneinander angeordnet werden und zusammen an oder in einem Halter befestigt, einem Mikroskop zugeführt und visuell untersucht werden. Ein lästiges Wechseln von Objektträgern während des Mikroskopierens zum Auswerten der Anfärbung mehrerer Marker für z.B. nur einen Patienten, entfällt, denn diese Proben befinden sich alle neben- und/ oder übereinander in einem Halter. Neben einer speziellen Analysevorrichtung betrifft die Erfindung auch ein Verfahren zur immunologischen und/oder histochemischen Untersuchung von Patientenproben, bei dem sowohl wenigstens eine Patientenprobe in Form eines Gewebeschnittes und/oder in Form von Zellen bereitgestellt und auf einen Substratträger aufgebracht wird als auch wenigstens ein Substratträger mittelbar oder unmittelbar mit einem Halter verbunden wird, und das sich dadurch auszeichnet, dass eine Bestückung des Halters mit wenigstens einem

Substratträger nach Durchführung wenigstens eines Laborarbeitsschrittes verändert wird. Wesentlich an dem erfindungsgemäßen Verfahren ist, dass durch die Verwendung von Substratträgern, die flexibel in einem Halter zusammengestellt und angeordnet werden können, eine effektive Untersuchung von Proben ermöglicht wird. Auf vorteilhafte Weise ist es so möglich, dass eine erste Zuordnung für die Inkubation bzw. Anfärbung der Proben und eine zweite Zuordnung für die visuelle Untersuchung der Proben generiert wird, so dass stets eine effektive Bearbeitung der Proben erfolgt. Die Proben bzw. die Substratträger werden hierbei bevorzugt derart angeordnet, dass die Zuordnung in Bezug auf die Inkubation unter Berücksichtigung der nachzuweisenden Antikörper, Antigene bzw. der ausgewählten Biomarker erfolgt, während die Zuordnung für die visuelle Untersuchung und Archivierung der Proben den Ursprung der Proben berücksichtigt. Unter Ursprung ist in diesem Zusammenhang insbesondere die Zugehörigkeit einer Probe zu einem Patienten oder einem Gewebetyp zu verstehen.

Gemäß einer speziellen Weiterbildung erfolgt die Inkubation, in dem die auf einem Substratträger angeordnete Probe in eine Flüssigkeit, in der ein spezieller Reaktant vorgesehen ist, eingetaucht wird. Besonders bevorzugt wird hierbei eine Relativbewegung zwischen der Flüssigkeit und der Probe erzeugt. Diese Relativbewegung kann beispielsweise dadurch hervorgerufen werden, dass der Halter mit dem wenigstens einen daran befestigten Substratträger gemeinsam mit einem Inkubationshalter, der eine Mehrzahl von rinnenförmigen Flüssigkeitsaufnahmen aufweist, in die die Proben quasi kopfüber eingetaucht werden, in eine Schwenkbewegung um eine Längsachse des Halters versetzt wird. Durch diese Schwenkbewegung strömt die in den Rinnen befindliche Flüssigkeit mit dem wenigstens einen Reagenz hin und her, so dass es einerseits zu einem innigen Kontakt zwischen den inkubierten Proben und der Flüssigkeit und andererseits zu einer starken Durchmischung der Flüssigkeit kommt. Die Substratträger sind hierbei bevorzugt im Halter quer zu dessen Längsachse angeordnet.

Beschreibung der Erfindung anhand von Ausführungsbeispielen:

Im Folgenden wird die Erfindung unter Bezugnahme auf die Figuren ohne Beschränkungen des allgemeinen Erfindungsgedanken näher erläutert. Es zeigen: Fig. 1 : Substratträger mit darauf angeordneten Proben biologischen Materials;

Fig. 2: Verschiedene Anordnungen von Proben biologischen Materials auf

Substratträgern;

Fig. 3: Halter in Form eines Befundungsrahmens mit bestückten Substratträgern in verschiedenen Ansichten;

Fig. 4: Darstellung unterschiedlicher Arten der Bestückung eines Halters Form eines

Befundungsrahmens ;

Fig. 5: Draufsicht auf ein Tablett mit mehreren Haltern;

Fig. 6: Verschiedene Ansichten eines Halters Typ Inkubationshalters mit rinnenförmigen

Flüssigkeitsaufnahmen;

Fig. 7: Schematische Darstellung der Inkubation von Substratträgern mit Proben biologischen Materials, die in rinnenförmigen Flüssigkeitsaufnahmen eines

Inkubationshalters angeordnet sind;

Fig. 8: Verschiedene Ansichten eines Halters in Form eines Inkubationshalters mit einer wannenförmigen Flüssigkeitsaufnahme;

Fig. 9: Perspektivansicht eines weiteren Typ eines Halters mit mehreren unterschiedlich bestückten Substratträgern sowie

Fig. 10: Detailansicht eines Befestigungselementes zwischen Halter und Substratträger.

Wesentlich für die erfindungsgemäße Vorrichtung sowie das entsprechende Verfahren ist die Verwendung von Substratträgern 1 , die deutlich kleiner als herkömmliche Objektträger sind. Weiterhin werden derartige Substratträger 1 , die im Folgenden auch als Magnumchips bezeichnet werden, bevorzugt mit mehr als einer Probe 2 und/oder mit mehr als einem Biochip, also einem mit biologischem Material beschichteten Fragment 3, das in dem beschriebenen Fall aus Glas hergestellt ist, genauso aber auch aus einem geeigneten Kunststoff gefertigt sein kann, bestückt. Grundsätzlich können die beschriebenen Substratträger 1 allerdings unterschiedliche Größen aufweisen, wobei die Größe stets dem Bedarf angepasst ist.

Figur 1 zeigt den Aufbau eines erfindungsgemäß zur Anwendung kommenden Substratträgers 1 , wobei Figur 1 a eine Draufsicht und eine Schrägansicht des Substratträgers 1 zeigt, während Figur 1 b eine vergrößerte Detailansicht des Ausschnittes „A" enthält. Der in Figur 1 a dargestellte Substratträger 1 bzw. Magnumchip hat eine Größe von 6 x 19 x 0,6 mm. Auf dem Substratträger 1 gemäß Figur 1 a sind vier Proben 2 biologischen Materials angeordnet, bei denen es sich um paraffinierte Gewebeschnitte, die auf Glasfragmente 3 aufgebracht sind, handelt. Die Glasfragmente 3 mit den paraffinierten Gewebeschnitten stellen sogenannte Biochips 2 dar, die eine bevorzugte Bereitstellung, Handhabung und Untersuchung von biologischem Material ermöglichen. Die Biochips 2 weisen eine Oberfläche von 3,3 x 3,3 mm ² auf. Die Glasfragmente 3 der Biochips 2 haben eine Dicke von 0,15 mm, während die Gewebeschnitte über eine Stärke von etwa 0,004 mm verfügen. Jeder auf dem Substratträger befindliche Biochip 2 stellt eine unabhängige Probe dar, die in Abhängigkeit des Untersuchungsbedarfs weggelassen oder durch eine andere Probe und/oder einen anderen Biochip ersetzt werden kann.

In dem gezeigten Ausführungsbeispiel sind vier Biochips 2 zumindest annähernd in Reihe auf dem Substratträger 1 angeordnet, wobei die Gewebeschnitte auf dem jeweiligen Glasfragment 3 angeordnet sind. An einem Ende des Substratträgers 1 ist eine Kennung 4 in Form eines 2D-Barcodes vorgesehen. Diese Kennung 4 enthält zur Identifizierung der Proben 2 alle für die Untersuchung benötigten Informationen über die Probe 2, insbesondere Gewebeart und Ursprung des Gewebes. Um die Proben 2 zu jedem Zeitpunkt einer Probenprozessierung und/oder -Untersuchung eindeutig zuordnen zu können, ist in einer zentralen Steuereinheit für jede Probe 2 ein entsprechender Identifikationscode hinterlegt. Sowohl bei der Bestückung der Substratträger 1 als auch bei der Inkubation, Untersuchung, Befundung und Archivierung der Proben 2 wird dieser Identifikationscode berücksichtigt. Die Steuereinheit ist in diesem Zusammenhang derart ausgeführt, dass zumindest die Inkubation und die Zuführung der Proben zu einer mikroskopischen Untersuchungseinheit automatisiert gesteuert werden.

Figur 1 b zeigt in einer stark vergrößerten Detailansicht den Ausschnitt„A"- Dargestellt ist hierbei ein auf dem Substratträger 1 angeordneter Biochip 2. Auf dem eigentlichen Chip 3, der als Glasfragment ausgeführt ist, ist biologisches Material in Form eines Gewebeschnitts angeordnet. Figur 1 b verdeutlicht das Größenverhältnis der Dicke des Glasfragmentes 3 einerseits zur Stärke des Gewebeschnitts 5 andererseits.

In der folgenden Tabelle sind die Abmessungen eines Standardobjektträgers denen eines gemäß dem zuvor beschriebenen Ausführungsbeispiel verwendeten Substratträgers 1 gegenüber gestellt. Wie deutlich zu erkennen ist, kann durch die erfindungsgemäße Verwendung von speziellen Substratträgern 1 gemeinsam mit geeigneten Haltern 6 die Anzahl der pro Flächeneinheit platzierbaren Proben 2 deutlich erhöht werden. Darüber hinaus ist eine wesentlich flexiblere Anordnung von Proben 2 möglich.

Abmessung Fläche Anzahl Fläche je Probe

[mm ³ ] [mm ² ] Proben [mm ² ]

Standard 76 x 26 x 1 1976 1 bis 3 1976 (für 1 Probe) Objektträger 988 (für 2 Proben)

659 (für 3 Proben)

Magnumchip 19 x 6 x 0,6 1 14 4 28,5 Aufgrund der zuvor dargestellten Größenunterschiede benötigen Vorrichtungen und Geräte, die für die manuelle oder automatische Verarbeitung der auf den Substratträgern 1 gemäß Figur 1 a bzw. auf Magnumchips montierten Proben 2 eingesetzt werden, bei geeignetem Design wesentlich weniger Platz, Energie und Reaktanten, und zwar in Bezug auf sämtliche mit einer Probe durchgeführten Arbeitsschritte, insbesondere Inkubation, Untersuchung, Befundung und Archivierung.

Bei dem mit der vorigen Tabelle erläuterten Ausführungsbeispiel entspricht die theoretisch nutzbare Oberfläche eines Standardobjektträgers in etwa dem Siebzehnfachen der Oberfläche des verwendeten Substratträgers 1 bzw. Magnumchips. In Bezug auf das dargestellte Beispiel ergibt sich für die praktische Anwendung, dass 17 Magnumchips mit je einem Barcode und je 4 Proben (17 X 4 = 68) etwa den gleichen Platz benötigen, wie sonst ein Standardobjektträger.

Die Kapazität von vier Proben 2 auf einem vergleichsweise kleinen, Barcode-tragenden Substratträger 1 ist besonders gut für die typischen Anforderungen eines histopathologisch diagnostischen Labors, z.B. in der Tumordiagnostik, geeignet. Einerseits kann eine große Anzahl von Proben 2 verschiedener Patienten rationell, effektiv und flexibel gefärbt werden, andererseits sind die einzelnen Biochips 2 mit 3,33 x 3,33 mm ² noch groß genug, um bei den meisten Fragestellungen durch die Beurteilung von einem oder einer kleinen Anzahl der Biochips eine optimale Befundung sicher zu stellen.

Eine weitere vorteilhafte Anwendung der gezeigten Substratträger 1 , von denen wenigstens zwei in einer flexiblen Anordnung lösbar an einem Halter 6 befestigbar sind, wird im Zusammenhang mit Figur 2 beschrieben. Hierbei zeigt Figur 2a einen Substratträger 1 mit den Abmessungen gemäß Figur 1 , auf dem nicht eine Mehrzahl von Proben 2 sondern vielmehr eine Probe angeordnet ist. Die Verwendung einer derart großen Probe kann für spezielle Einsatzgebiete der hier beschriebenen Analysevorrichtung bzw. des entsprechenden Verfahrens sinnvoll sein. Ferner sind Figur 2b beispielhaft spezielle Kombinationen unterschiedlich bestückter Substratträger 1 in einem Halter 6 zu entnehmen, wobei vornehmlich die Art einer Probe, die Abmessungen der Biochips und/oder die Größe und Anzahl der Proben pro Substratträger 1 stets bedarfsgerecht angepasst werden kann, um die prinzipiellen Vorzüge der Erfindung optimal zu nutzen. Das hier beschriebene Verfahren und alle Vorrichtungen können vergleichsweise einfach adaptiert werden.

Figur 2a zeigt einen Substratträger 1 , auf dem als Kennung 4 ein 2D Barcode angebracht ist und auf dem sich ein Gewebeschnitt befindet. In diesem Ausführungsbeispiel weist der Substratträger 1 die Maße 48 x 19 x 0,6 mm ³ auf. Die Verwendung von großflächigen Gewebeschnitten zusätzlich zu kleineren Gewebeproben ist für bestimmte Anwendungen auf dem Gebiet der medizinischen Diagnostik, insbesondere im Bereich der Histologie bzw. Histopathologie, durchaus sinnvoll. Der Substratträger 1 verfügt wiederum über geeignete Befestigungsmittel 16, so dass dieser in einem Halter 6 befestigt werden kann.

Ergänzend zeigt Figur 2b eine Anordnung verschiedener Substratträger 1 , wie sie auf bevorzugte Weise zusammengestellt und in einem Halter 6 befestigt werden können. Die Substratträger 1 verfügen entweder über Gewebeschnitte unterschiedlicher Anzahl und Größe oder über eine Anordnung von Biochips 2. Die Zusammenstellung der erforderlichen Substratträger 1 mit den darauf befindlichen Proben 2 biologischen Materials erfolgt bedarfsgerecht und kann stets den Erfordernissen der Untersuchung und/oder dem Arbeitsfortschritt, insbesondere in Abhängigkeit des nächsten erforderlichen Arbeitsschrittes, im Labor angepasst werden. Figur 3a zeigt in einer Draufsicht einen Halter 6, der in Form eines Befundungsrahmens ausgeführt ist, und an dem zehn Substratträger 1 befestigt sind. Ein derartiger Halter wird bevorzugt verwendet, um bereits prozessierte, insbesondere angefärbte Patientenproben einer visuellen Untersuchung und/oder Archivierung zuzuführen. Der Halter 6 ist in Form eines Rahmens ausgeführt, an dem die Substratträger 1 mittels geeigneter Befestigungselemente 16 lösbar befestigt sind. Die Substratträger 1 sind quer zur Längsrichtung des Halters 6 angeordnet und verfügen über eine Kennung 4, die als 2D- Code ausgeführt ist und über jeweils vier Proben 2 biologischen Materials, die auf entsprechenden Adhäsionsflächen des Substratträgers 1 angeordnet sind. Auch auf dem Halter 6 ist eine Kennung 7 in Form eines 2D-Codes vorgesehen, so dass das Halter 6 mit den darin befindlichen Substratträgern 1 und Proben jederzeit eindeutig zu identifizieren ist und so auf zuverlässige Weise dem erforderlichen Arbeitsschritt und/oder der Archivierung zuzuführen ist.

Die Figuren 3b bis 3d zeigen den Halter 6 gemäß Figur 3a mit den daran befestigten Substratträgern 1 in Schnitt- bzw. Detailansichten. In Figur 3b ist eine Ansicht entlang des Schnittes „A - A", der mittig in Längsrichtung eines Substratträgers 1 und quer zur Längsachse des Halters 6 verläuft, dargestellt. Auf dem Substratträger 1 sind in Längsrichtung des Substratträgers 1 vier Proben 2 angeordnet. Zusätzlich ist an einem Ende eine Kennung 4 aufgebracht, die eine eindeutige Identifizierung des Substratträgers 1 und der darauf befindlichen Proben 2 ermöglicht. Bei den Proben biologischen Materials handelt es sich in dem dargestellten Ausführungsbeispiel um Gewebeschnitte, die auf das Vorhandensein spezieller Tumorzellen und/oder Tumormarker untersucht werden sollen. Figur 3c zeigt den Ausschnitt„A" in einer vergrößerten Detailansicht. Hierbei ist deutlich der Substratträger 1 mit dem darauf angeordneten Biochip 2, auf dem sich der für eine Untersuchung vorgesehene Gewebeschnitt befindet, zu erkennen. Der Substratträger 1 einschließlich der darauf angeordneten, jeweils einen Gewebeschnitt tragenden Biochips 2 ist von einer Abdeckung 8 in Form eines in seiner Größe auf die mit Substratträgern 1 bestückte Fläche des Halters 6 angepassten Deckglases überdeckt. Zwischen der Abdeckung 8, die an ihrem äußeren Umfang im Randbereich des Halters 6 aufliegt, und den Proben 2 befindet sich ein Eindeckmedium, das für die visuelle Untersuchung der Proben 2 benötigt wird. Üblicherweise wird hierbei entweder ein wasserlösliches oder ein organischen Eindeckmedium verwendet. Alternativ wird in manchen Fällen ein Klebefilm, der mit einem passenden Medium beschichtet ist, verwendet. Durch den Einsatz eines entsprechenden Mediums zum Aufkleben einer Abdeckung wird einerseits für die visuelle Betrachtung die Klarheit der Probe verbessert und andererseits der Gewebeschnitt vor mechanischer Beschädigung geschützt. Bei Verwendung eines organischen Eindeckmediums können die Proben biologischen Materials in der Regel mehrere Jahrzehnte aufbewahrt werden.

Weiterhin zeigt Figur 3d die Einzelheit„B" ebenfalls in einer vergrößerten Detailansicht. Während der Biochip 2 mit seinem tragenden Glassubstrat 3 auf dem Substratträger 1 aufliegt, befindet sich auf der Oberfläche eine Probe 2 biologischen Materials in Form eines Gewebeschnitts. Der Biochip 2 mit dem Gewebeschnitt ist von einer Abdeckung 8 überdeckt, wobei zwischen Abdeckung 8 und Biochip 2 ein Eindeckmedium vorgesehen ist.

Der erfindungsgemäß vorgesehene Halter 6 bietet den Vorteil, dass zur Befundung die Substratträger 1 nach der Anfärbung mit den darauf befindlichen Proben 2 bzw. Biochips wieder in anderen Funktionsgruppen zusammengestellt werden können. So können in einem Halter 6, der in Form eines Befundungsrahmens ausgeführt ist, die Substratträger 1 mit den Proben eines Patienten zusammengestellt werden, obwohl diese Proben zuvor unterschiedliche Färbeprotokolle durchlaufen haben, und somit während des Färbeprozesses anderen Funktionsgruppen zugeordnet waren.

In dem Halter 6 werden die Substratträger 1 zumindest zeitweise und lösbar befestigt, z.B. durch die Verwendung von Clips. In dem gezeigten Ausführungsbeispiel ist der Halter 6 ein Aluminiumrahmen, auf den eine Abdeckung 8 in Form eines Deckglases aufgebracht ist. Auf dieses Deckglas wurden die Substratträger 1 von der Unterseite her, also quasi kopfüber, aufgeklebt.

Die Größe des gezeigten Halters 6 entspricht der Größe eines herkömmlichen normierten Objektträgers, so dass dieses Halter 6 gemeinsam mit handelsüblichen Mikroskopen, die auf herkömmliche Objektträger ausgerichtet sind, genutzt werden kann. Somit gibt in diesem Fall die Größe des Halters 6 die Größe der Substratträger 1 vor, insbesondere wie viele mit Biochips 2 bestückte Magnumchips 1 und/oder Macrochips mit großflächigen Gewebeschnitten zusammen angeordnet werden können. Bevorzugt werden die Abmessungen derart gewählt, dass zehn mit Biochips 2 bestückte Substratträger 1 bzw. Magnumchips in einem Halter 6 angeordnet werden.

Das Format dieser Halters 6 ermöglicht es, dass Behälter zur Aufbewahrung von herkömmlichen Objektträgern auch zur Aufbewahrung der Halter 6, wahlweise gemeinsam mit oder separat von herkömmlichen Objektträgern, genutzt werden können.

Die Figuren 4a bis 4c zeigen in anschaulicher Form jeweils einen Halter 6 in Form eines Befundungsrahmens mit darin befestigten Substratträgern 1 , wobei die Substratträger 1 in Bezug auf ihre Größe und Bestückung an die jeweiligen Untersuchungserfordernisse angepasst sind. Ein derartiger Halter 6 wird bevorzugt verwendet, um bereits prozessierte Patientenproben einer visuellen Untersuchung und/oder Archivierung zuzuführen. Die Anordnung der Proben 2 auf den Substratträgern sowie der Substratträger 1 innerhalb des Halters 6 wurden hierbei derart vorgenommen, dass eine visuelle Auswertung der Proben 2 besonders effektiv vorgenommen werden kann. Vor allem die erforderlichen Verfahrwege zwischen den einzelnen Proben 2 und der Fokusebene eines für die Untersuchung verwendeten Mikroskops werden hierdurch minimiert. Um eine derart optimierte Auswertung der Proben 2 erreichen zu können, wird in einer Steuerung auf der Grundlage der erforderlichen Untersuchungen sowie eines Analyseplans wenigstens eine Zuordnung generiert, nach der die Bestückung der Substratträger 1 und des Halters 6 erfolgt. Auf vorteilhafte Weise wird eine derartige Zuordnung speziell für jeden Arbeitsschritt während der Bearbeitung und Untersuchung der Proben erstellt und bei der Abarbeitung der einzelnen Untersuchungsschritte berücksichtigt. Diesbezüglich ist es grundsätzlich unerheblich, ob die einzelnen Arbeitsschritte manuell auf der Grundlage entsprechender maschinell erzeugter Handlungsempfehlungen oder aber automatisiert durchgeführt werden.

Während in dem in Figur 4a gezeigten Halter 6 zehn Substratträger 1 mit darauf in Form von Biochips angeordneten Proben 2 befestigt sind, sind in den Haltern 6 gemäß den Figuren 4b und 4c zusätzlich zu Substratträgern 1 mit Biochips 2 auch größere Substratträger 1 vorgesehen, auf die großflächige Gewebeschnitte aufgebracht worden sind. Die Substratträger 1 in dem Halter 6 gemäß Figur 4a verfügen jeweils über eine Kontrolle 9 sowie zwei oder drei Biochips 2 mit Gewebeschnitten. Die Anordnung der Gewebeschnitte auf den Substratträgern 1 und innerhalb des Halters 6 erfolgte in Abhängigkeit ihrer Zugehörigkeit zu den Proben P1 bis P4. Die Zuordnung der einzelnen Gewebeschnitte zu einzelnen diskreten Untersuchungsplätzen auf den Substratträgern 1 sowie innerhalb des Halters 6 wurde mit Hilfe einer Laborsoftware erzeugt.

Figur 5 zeigt ein Tablett 10, in dem wiederum eine Mehrzahl von Haltern 6 mit den darin befestigten Substratträgern 1 zusammengefasst ist. Ein derartiges Tablett 10 kann auf bevorzugte Weise dem Kreuztisch eines Mikroskops für die visuelle Untersuchung der einzelnen Proben 2 zugeführt werden. Genauso eignet es sich für eine vorteilhafte, insbesondere platzsparende Archivierung der Proben 2. Aufgrund der Kennungen 4, 7, 1 1 , die auf den Substratträgern 1 , den Haltern 6 und dem Tablett 10 vorgesehen sind, ist zu jeder Zeit eine eindeutige Identifizierung der einzelnen Proben 2 möglich.

In Figur 6 ist ein Halter 6 in Form eines speziellen Inkubationshalters 12 dargestellt, mit dem die auf den Substratträgern 1 bzw. Magnumchips fixierten Proben 2, hier Gewebeschnitte, effektiv und gut reproduzierbar mit den erforderlichen Reaktanten und/oder Spülflüssigkeiten in Berührung zu bringen sind. Mit derart ausgeführten Haltern 6 kann eine Inkubation der einzelnen auf den Substratträgern angeordneten Patientenproben besonders effektiv erfolgen. In diesem Zusammenhang zeigt Figur 6a einen Inkubationshalter 12 in Schrägansicht, während Figur 6b denselben Inkubationshalter 12 in einer Draufsicht sowie einen Längs- „A - A" und einen Querschnitt „B - B" des Inkubationshalters 12 zeigt.

Wesentlich ist, dass der Inkubationshalter 12 über mehrere, in dem gezeigten Beispiel über fünf, Flüssigkeitsaufnahmen 13 in Form von Rinnen verfügt. Die Rinnen sind hierbei parallel im Korpus des Inkubationshalters 12 angeordnet und jeweils für die Aufnahme eines mit Proben 2 bestückten Substratträgers 1 bzw. eines Magnumchips vorgesehen.

Der Inkubationshalter 12 mit fünf Rinnen 13 ist eine vorteilhafte Ausführungsform, so dass in diesem Fall eine Gruppe von fünf Substratträgern 1 mit den darauf befindlichen Proben 2 eine Vielzahl von Arbeitsschritten im Labor durchläuft. In dem dargestellten Inkubationshalter 12 sind fünf Substratträger 1 mit jeweils vier Biochips 2 vorgesehen, so dass der Inkubationshalter 12 insgesamt 20 unabhängige Proben 2 umfasst. Diese Proben 2 durchlaufen zeitsynchron die gesamten Prozessierungsschritte, insbesondere eine Inkubation mit einem Medium der absteigenden Alkoholreihe, eine immunhistochemische Färbung und eine Inkubation mit einem Medium der aufsteigenden Alkoholreihe. In Ergänzung zu Figur 6 ist in Figur 7 die Inkubation der Proben 2 dargestellt. Der gezeigte Inkubationshalter 12 sowie die Substratträger 1 entsprechen denen, die im Zusammenhang mit Figur 6 erläutert worden sind

Die Inkubation erfolgt vorzugsweise (siehe Fig. 7a bis 7c), indem der Inkubationshalter 12, nachdem die Substratträger 1 in die Rinnen 13 eingelegt worden sind und die benötigte Flüssigkeit 14 in die Rinnen 13 eingefüllt worden ist, in eine Schwenkbewegung um seine Längsachse versetzt wird. Die Flüssigkeit 14 läuft hierbei in den einzelnen Rinnen 13 hin und her, wodurch eine gute Durchmischung der Flüssigkeit 14 gewährleistet ist und ein inniger Kontakt zwischen den Proben 2 und der Flüssigkeit 14 erfolgt. Die Rinnen ragen ferner zu beiden Seiten über das Ende der Substratträger 1 hinaus, so dass sich in diesem Bereich ein Zusatzreservoir 15 befindet, in dem sich überschüssige Flüssigkeit sammelt bevor diese wieder zur anderen Seite strömt. Im Bereich des Zusatzreservoirs 15 ist der Rinnenboden in Längs- sowie in Querrichtung geneigt, so dass eine leichte Wannenform entsteht. Insbesondere die Neigung in Rinnenlängsrichtung ist deutlich der Ansicht des Schnittes„B - B" in Figur 6b zu entnehmen. Ein Zudosieren und/oder eine Entnahme einer Flüssigkeit 14 in bzw. aus den Rinnen 13 erfolgt üblicherweise im Bereich der Zusatzreservoire 15.

Sofern die entsprechenden Analysen mit Standardobjektträgern manuell durchgeführt würden, müssten hierfür zwanzig Objektträger mindestens zwanzigmal in die Hand genommen werden, um die entsprechenden Arbeitsschritte durchzuführen. Dagegen wird gemäß dem erläuterten Ausführungsbeispiel eine gesamte Gruppe, hier bestehend aus 20 Proben 2 und einem Inkubationshalter 12, gehandhabt, und Flüssigkeiten beispielsweise mit einer 5-Kanalpipette abgesaugt bzw. abgegeben. Durch die Verwendung des in Figur 6 gezeigten Inkubationshalters 12 wird der Aufwand für die Prozessierung der einzelnen Proben somit erheblich reduziert.

In Ergänzung zu Figur 6 ist in Figur 7 die Inkubation der Proben 2 im Detail dargestellt. Der dargestellte Inkubationshalter 12 sowie die Substratträger 1 entsprechen denen, die im Zusammenhang mit Figur 6 erläutert worden sind.

Wie den Figuren 7a bis 7c zu entnehmen ist, erfolgt die Inkubation der Proben 2, indem der Inkubationshalter 12 mit den in den Rinnen 13 oder Wannen enthaltenen Substratträgern 12 so bewegt werden, dass sich die Flüssigkeit abwechselnd in die beiden Längsrichtungen der Rinnen 13 oder Wannen bewegt.

Die Reaktionen bei den auf diese Weise inkubierten Gewebeschnitten fallen bemerkenswert einheitlich aus, weil die Reaktanten in der Flüssigkeit ständig gemischt werden.

Demgegenüber gestaltet sich die Inkubation bei den aus dem Stand der Technik bekannten Verfahren oftmals problematisch. Bei der immunhistochemischen Färbung mit „ offenen Tropfen" (Labvision, Dako et.al) liegt dagegen ein mehr oder weniger runder Tropfen über dem Substrat, beispielsweise einem Gewebeschnitt. In der Mitte ist der Tropfen höher als außen, deshalb sieht man oft in der Mitte des Feldes stärkere Reaktionen, da hier mehr Antikörper zur Verfügung steht. Manchmal findet man aber auch das Umgekehrte: Aufgrund der größeren Krümmung der Oberfläche am Rand des Tropfens verdunstet dort die Flüssigkeit schneller als in der Mitte, und es entsteht ein Konzentrationsgradient der Reaktanden mit einem Maximum außen. Dann reagiert der Rand des Gewebeschnittes stärker als die Mitte. Deshalb fällt es bei der mikroskopischen Beurteilung oft schwer, starke von schwachen oder sogar negative von positiven Reaktionen zu unterscheiden, weil man nicht eindeutig weiß, welche Zone des Gewebeschnittes man beurteilen soll. Das Verschwenken der Inkubationshalter gemeinsam mit den Objektträgern während der Inkubation im Rahmen dieser Erfindung behebt diesen Missstand vollständig. Figur 8 zeigt eine alternative Ausführungsform eines Inkubationshalters 12. Dieser verfügt nicht über einzelne Rinnen als Flüssigkeitsaufnahmen 14, sondern über eine vergleichsweise große Wanne. Mit einem derart ausgeführten Inkubationshalter 12 werden bevorzugt Substratträger 1 inkubiert, auf denen sich im Vergleich zu den Biochips 2 großflächige Gewebeschnitte befinden. Im Übrigen erfolgt auch hier die Inkubation durch Schwenken des Inkubationshalters 12.

Im Folgenden wird die vorteilhafte Verwendung eines Halters 6, in dem flexibel unterschiedliche Substratträger 1 angeordnet und befestigt werden können, näher erläutert. In diesem Beispiel werden für acht Patientenproben mit Verdacht auf Brustkrebs Färbungen mit je drei verschieden Antikörpern angefordert, die für die Charakterisierung von Brustkrebs üblich sind: Progesteron Rezeptor, Östrogen Rezeptor, Her2. Des Weiteren sollen für vier Patientenproben durch die Färbung mit vier verschiedenen Antikörpern (EGF, HGF, HGF-Met, RAS) der Verdacht auf Lungenkrebs bestätigt oder entkräftet werden.

Bei der Nutzung von Standardobjektträgern müsste von jeder der Patientenproben für jeden der angeforderten Antikörper mindestens ein Schnitt auf je einen Objektträger aufgezogen werden:

8 x 3 Antikörper für Brustkrebs = 24

4 x 4 Antikörper für Lungenkrebs = 16

40 Standard Objekträger

Mit einem erfindungsgemäß ausgeführten System ist der Aufwand deutlich geringer: 3 Substratträger mit je einem Biochip der Brustkrebs Proben„1 bis 4"

3 Substratträger mit je einem Biochip der Brustkrebs Proben„5 bis 8"

4 Substratträger mit je einem Biochip der 4 Lungenkrebs Proben 10 Substratträger Für die Bestückung der Substratträgers 1 könnte es, wenn das Bioptat des potentiellen Tumors genügend groß (größer als 7 x 7 mm) und das Bioptat in der HE-Übersichtsfärbung hinreichend homogen ist, durchaus ausreichen, nur einen Schnitt zu verwenden, um hieraus einen Biochip 2 zu produzieren

Die Vorteile des beschriebenen Systems werden im Folgenden weiter verdeutlicht. Hierbei wird das erfindungsgemäße System mit dem Einsatz herkömmlicher Objektträger, wie sie beispielsweise von der Firma Dako angeboten werden, verglichen:

Mit dem erfindungsgemäßen System können Untersuchungen von Patientenproben besonders schnell, platzsparend und effektiv durchgeführt werden. Hervorzuheben ist hierbei insbesondere, dass der Bedarf an benötigten Reaktanten deutlich verringert wird. Figur 9 zeigt einen Halter 6, der an einer Aufnahme befestigt oder auf ein Tablett gelegt wird und mit Hilfe der Aufnahme oder dem Tablett um seine Längsachse 17 schwenkbar ist. Die Längsachse 17, um die der Halter 6 während einer Inkubation wenigstens zeitweise in Pfeilrichtung geschwenkt wird, ist in Figur 9 strichpunktiert dargestellt. An dem rahmenformig ausgebildeten Halter 6 sind wiederum Befestigungselemente 16 vorgesehen, über die mehrere Substratträger 1 mit den darauf angeordneten Proben 2, hier Gewebeschnitte, zerstörungsfrei lösbar an dem Halter 6 zu befestigen sind. Hierbei ist es möglich, nur einen oder mehrere, in dem dargestellten Ausführungsbeispiel bis zu acht, Substratträger 1 nebeneinander anzuordnen und an dem Halter 6 zu befestigen. Die Substratträger 1 werden quer zur Schwenkachse 17 angeordnet, so dass nach Inkontaktbringen der Proben 2 mit einer Flüssigkeit 14, die Flüssigkeit 14 aufgrund der Schwenkbewegung parallel zur Längsachse der Substratträger 1 die Proben 2 überströmt, es somit zu einer erzwungenen Relativbewegung zwischen dem Flüssigkeit 14 und der jeweiligen Probe 2 kommt.

Auf bevorzugte Weise erfolgt die Inkubation, wie es beispielsweise in Figur 7 gezeigt ist, indem die auf den Substratträgern 1 angeordneten Proben 2 quasi kopfüber in die Flüssigkeit 14 eingetaucht werden. Hierbei befindet sich die für die Inkubation oder das Waschen vorgesehene Flüssigkeit 14 innerhalb einer als Wanne oder Rinne ausgeführten Flüssigkeitsaufnahme 13 eines Inkubationshalters 12, der schließlich gemeinsam mit dem Halter 6 und den daran befestigten Substratträgern 1 in eine Schwenkbewegung versetzt wird. Ein entsprechend geeigneter Inkubationshalter 12 mit Rinnen ist in Figur 6 und mit einer Wanne in Figur 8 dargestellt. In diesem Zusammenhang ist es denkbar, dass der Halter 6 entsprechend auf den Inkubationshalter 12 aufgelegt oder lösbar an diesem befestigt wird.

Die Flüssigkeit 14 strömt aufgrund der Schwenkbewegung innerhalb der Wanne oder den Rinnen des Inkubationshalters 12 hin und her, so dass einerseits die Flüssigkeit 14 stets gut durchmischt wird und es andererseits zu einem innigen Kontakt zwischen den auf dem Substratträger 1 haftenden Proben 2 und der Flüssigkeit 14, insbesondere einem Reaktanten oder einer Waschflüssigkeit, kommt.

Die Substratträger 1 können hinsichtlich der Anzahl sowie der Ausführung der Proben 2 sehr flexibel bestückt werden. Im dargestellten Ausführungsbeispiel befinden sich entweder bis zu fünf auf Glasfragmente 3 gezogene Gewebeschnitte, die eine quadratische Grundfläche belegen, oder aber größere Gewebeschnitte auf einem Substratträger 1 . Es wird deutlich, dass die dargestellte Anordnung von flexibel bestückbaren Substratträgern 1 in einem Halter 6 eine Vielzahl von unterschiedlichen Bestückungsvarianten des Halters 6 erlaubt. Je nach Bedarf in Bezug auf die geplante Untersuchung werden die einzelnen Proben 2 derart angeordnet, dass insbesondere der Bedarf an den für die Inkubation benötigten Reaktanten minimiert wird. In diesem Zusammenhang stellt die während der Inkubation durchgeführte Schwenkbewegung sicher, dass es einerseits stets zu einem innigen Kontakt zwischen den Reaktanten und den Proben 2 kommt und anderseits die verwendeten Reaktanten gut durchmischt werden.

Die Verwendung einer in Art des in Figur 9 dargestellten Halters 6 ausgeführten Vorrichtung zur flexiblen Befestigung von Substratträgern 1 bietet des Weiteren den Vorteil, dass eine bedarfsgerecht wählbare Zusammenstellung von Substratträgern 1 in ihrer Gesamtheit verhältnismäßig einfach bewegt, bereitgestellt, inkubiert, in Bezug auf eine Untersuchungseinheit positioniert und/oder archiviert werden kann. Trotzdem zeichnet sich das System durch eine besondere Flexibilität aus, da die Zusammenstellung von Substratträgern 1 in einem Halter 6 einfach sowie zu jeder Zeit verändert und so veränderten Bedürfnissen angepasst werden kann.

Um zu jedem Zeitpunkt während der Bereitstellung, der Prozessierung, der Untersuchung und der Archivierung eine exakte Identifikation der einzelnen Proben 2 zu gewährleisten, verfügen sowohl die einzelnen Substratträger 1 , die so genannten Magnumchips, als auch das Halter 6 über eine Kennzeichnung 4, 7 in Form eines Barcodes, bevorzugt eines Data- Matrix-Codes. Mit Hilfe einer derartigen Kennzeichnung 4, 7 können die Proben 2 mit Hilfe einer Laborsoftware und den in einer Laborsteuerung hinterlegten Informationen zu jeder Zeit eindeutig identifiziert, lokalisiert und dem gewünschten Verfahrensschritt zugeführt werden. Im Weiteren ist der in Figur 9 gekennzeichnete Ausschnitt „A" in Figur 10 im Detail dargestellt. Deutlich zu erkennen ist, dass wenigstens ein Befestigungselement 16 vorgesehen ist, über das ein Substratträger 1 einfach und zuverlässig mit dem Halter 6 verbindbar ist. Das Befestigungselement 16 verfügt über eine Kopplungsstelle, an der, beispielsweise mittels eines Rast- oder Clips-Elementes, eine sichere und trotzdem wieder lösbare Verbindung zwischen dem Halter 6 und einem mit Proben 2 bestückten Substratträger 1 herstellbar ist. Das Verbinden des Substratträgers 1 mit einem Halter 6 erfolgt hierbei auf vorteilhafte Weise, ohne dass hierfür ein Werkzeug benötigt wird. Selbstverständlich ist das Befestigungselement 16 derart ausgeführt, dass ein ungewolltes Lösen der Verbindung, insbesondere während des Schwenkvorgangs und auch nach längerer Zeit, zuverlässig ausgeschlossen ist. Ein derartiges Befestigungselement 16 stellt somit sicher, dass eine unterschiedliche Anzahl von Substratträgern 1 auf einfache Weise, schnell, sicher und trotzdem mit sehr hoher Flexibilität als Gesamtheit in einem Halter 6 anzuordnen sind.

Bezugszeichenliste

1 Substratträger

2 Probe

3 Trägerfragment

4 Kennung des Substratträgers

5 Gewebeschnitt

6 Halter in Form eines Befundungsrahmens

7 Kennung des Halters

8 Abdeckung

9 Kontrolle

10 Tablett

1 1 Kennung des Tabletts

12 Halter in Form eines Inkubationshalters

13 Flüssigkeitsaufnahme

14 Flüssigkeit

15 Zusatzreservoir

16 Befestigungselement

17 Längsachse des Halters