Das Manipulieren und insbesondere das Dosieren von kleinsten Flüssigkeitstropfen, die ein Volumen in der Größenordnung von 10-12 10-6 Liter bzw. einen Durch- messer in der Größenordnung von ca. 0,01-1 mm aufweisen, ist auch heute noch ein Problem, weil bei diesem auch als Mikrodosieren bezeichneten Vorgang selbst kleinste Flüssigkeitsverluste bereits zu erheblichen Abweichungen von der ge- wünschten Dosiermenge führen. Solche Flüssigkeitsverluste entstehen z. B., wenn der Flüssigkeitstropfen entlang einer konventionellen Oberfläche verschoben wird, weil selbst bei sehr glatten Flächen ein Teil des Flüssigkeitstropfen an der Oberfläche haftet.

Es stellt sich deshalb die Aufgabe ein Verfahren zum Bewegen und Dosieren von Flüssigkeitstropfen mit einem Volumen von insbesondere kleiner als 10-6 Liter ohne nennenswerten Flüssigkeitsverlust zur Verfügung zu stellen.

Die Aufgabe wird erfindungsgemäß durch die Bereitstellung eines Verfahrens zum Mikrodosieren von Flüssigkeitstropfen gelöst, bei dem die Flüssigkeitstropfen mit einem inhomogenen elektrischen Feld auf einem Träger mit einer ultraphoben Ober- fläche verlustfrei bewegt werden.

Gegenstand der Erfindung ist ein Verfahren zum Bewegen oder Dosieren von Flüssigkeitstropfen im mikroskopischen Maßstab, dadurch gekennzeichnet, dass die Flüssigkeitstropfen auf einem Träger mir einer ultraphoben Oberfläche mit einem

inhomogenen elektrischen Feld, bevorzugt mit einem inhomogenen Feld zwischen dem Träger und einem Manipulator, bewegt werden.

Vorzugsweise wird als Manipulator eine elektrisch geladene Spitze oder ein Draht, insbesondere eine Spitze oder ein Draht mit einer ultraphoben Oberfläche verwendet.

In einer bevorzugten Ausführung wird zur Erzeugung des elektrischen Feldes zwi- schen dem Manipulator und dem Träger eine Spannung von 100 bis 1000 Volt, vor- zugsweise von 400 bis 600 Volt angelegt. Die Spannung kann stark variieren je nach Geometrie der Anordnung.

Gegenstand der Erfindung ist auch eine Vorrichtung zum Mikrodosieren von Flüssigkeitstropfen die wenigstens einen Träger mit einer ultraphoben Oberfläche, gegebenenfalls mindestens ein Flüssigkeitsreservoir, einen elektrisch aufladbaren Manipulator und ein Mittel zur Erzeugung eines inhomogenen elektrischen Feldes aufweisen. Dieser Manipulator kann gegebenenfalls auch eine ultraphobe Spitze/Draht oder dergleichen sein.

Ein Flüssigkeitstropfen im Sinne der Erfindung besteht aus einer beliebigen Flüssig- keit und weist bevorzugt ein Volumen von 10-12 bis 10-6 Liter, insbesondere bevor- zugt von 10-9 bis 10-6 Liter auf. Ein solcher Tropfen wird erfindungsgemäß mit einem verschiebbaren elektrischen Feld auf einer ultraphoben Oberfläche verlustfrei bewegt.

Weiterhin bevorzugt wird ein Flüssigkeitstropfen mittels des elektrischen Feldes aus einem Flüssigkeitsreservoir abgeteilt. Mehrere Flüssigkeitstropfen können mittels des elektrischen Feldes auf einer ultraphoben Oberfläche miteinander vereinigt und dabei vermischt werden. All diese Verfahrensschritte können auch in einer beliebi- gen Kombination miteinander durchgeführt werden.

In einer bevorzugten Ausführungsform besteht das elektrische Feld zwischen einer Spitze, die vorzugsweise einen Durchmesser von 0,01 bis 1 mm hat, eine beliebige

Länge aufweist, eine ultraphobe Oberfläche aufweist, und einem vorzugsweise metallischen Träger. Mit dieser Spitze werden Flüssigkeitstropfen auf der ultrapho- ben Oberfläche verschoben. Dadurch, dass die Spitze eine ultraphobe Oberfläche aufweist, bleiben keine Flüssigkeitsanteile an der Spitze haften.

Da die Flüssigkeitstropfen sowohl an der Spitze als auch auf der ultraphoben Ober- fläche nahezu die Form einer Kugel annehmen, können deren Volumina sehr einfach aus dem, z. B. unter einem Mikroskop ermittelten Durchmesser berechnet werden.

In einer weiteren bevorzugten Ausführungsform weist das Flüssigkeitsreservoir der Vorrichtung eine Anordnung zur elektrostatischen Aufladung auf.

Ultraphobe Oberflächen im Sinne der Erfindung zeichnen sich dadurch aus, dass der Kontaktwinkel eines Wassertropfens, der auf der Oberfläche liegt, mehr als 150° beträgt und der Abrollwinkel 10° nicht überschreitet.

Als Abrollwinkel wird hier der Neigungswinkel einer grundsätzlich planaren aber strukturierten Oberfläche gegen die Horizontale verstanden, bei dem ein stehender Wassertropfen des Volumens 10, u1 aufgrund der Schwerkraft bewegt wird, wenn die Oberfläche geneigt wird.

Solche ultraphoben Oberflächen sind z. B. in den Offenlegungsschriften WO 98/23549, WO 96/04123, WO 96/21523 und WO 96/34697 offenbart, die hiermit als Referenz eingeführt werden und somit als Teil der Offenbarung gelten.

In einer bevorzugten Ausfiihrungsform weist die ultraphobe Oberfläche eine Ober- flächentopographie auf, bei der die Ortsfrequenz f der einzelnen Fourierkomponen- ten und deren Amplituden a (f) ausgedrückt durch das Integral der Funktion S (log f) = a (f)-f errechnet zwischen den Integrationsgrenzen log (fi/llm~l) =-3 und log (fi/pm~l) = 3, mindestens 0.5 beträgt und besteht aus einem hydrophoben oder insbe- sondere oleophoben Material oder aus einem haltbar hydrophobierten oder insbe-

sondere haltbar oleophobierten Material. Eine solche ultraphobe Oberfläche ist in der internationalen Patentanmeldung WO 99/10322 beschrieben.

Ein hydrophobes Material im Sinne der Erfindung ist ein Material, das auf einer ebenen, nicht strukturierten Oberfläche einen Randwinkel, bezogen auf Wasser, von größer als 90° zeigt.

Ein oleophobes Material im Sinne der Erfindung ist ein Material, das auf einer ebenen, nicht strukturierten Oberfläche einen Randwinkel, bezogen auf langkettige n-Alkane, wie n-Decan, von größer als 90° zeigt.

Bevorzugt ist die ultraphobe Oberfläche eine Aluminium-Oberfläche, die mit Mikro- strukturen versehen, eloxiert, gegebenenfalls gesealt, kalziniert, gegebenenfalls mit einer Haftvermittlerschicht beschichtet und anschließend mit einem hydrophoben und/oder oleophoben Überzug versehen wird, so wie es in der internationalen Patentanmeldung WO 99/10323 beschrieben ist.

Die Manipulator und/oder der Träger kann insgesamt aus Aluminium gefertigt sein oder weist vorzugsweise einen Aluminium-Überzug auf, wobei das Aluminium, wie oben angegeben behandelt wird.

Ebenfalls bevorzugt ist die ultraphobe Oberfläche eine Aluminium-Oberfläche, die gegebenenfalls anodisch oxidiert, mit heißem Wasser oder Wasserdampf gesealt, ge- gebenenfalls mit einer Haftvermittlerschicht beschichtet und anschließend mit einem hydrophoben und/oder oleophoben Überzug versehen wird, so wie es in der internationalen Patentanmeldung WO 99/10324 beschrieben ist. Die Dosierspitze kann insgesamt aus Aluminium gefertigt sein oder weist vorzugsweise einen Aluminium-Überzug auf, wobei das Aluminium, wie oben angegeben behandelt wird.

Weiterhin bevorzugt ist die ultraphobe Oberfläche eine Oberfläche, die mit Ni (OH) 2 -Partikeln beschichtet, gegebenenfalls mit einem Haftvermittler überzogen und an-

schließend mit einem hydrophoben und/oder oleophoben Überzug versehen wird, so wie es in der internationalen Patentanmeldung WO 99/10111 beschrieben ist.

Vorzugsweise haben die Ni (OH) 2-Partikel einen Durchmesser dso von 0,5 bis 20 pm.

In einer weiteren vorteilhaften Anwendungsform ist die ultraphobe Oberfläche aus Wolframcarbid, das mit einem Laser strukturiert, gegebenenfalls mit einem Haftver- mittler beschichtet und anschließend mit einem hydrophoben und/oder oleophoben Überzug versehen wird, so wie es in der internationalen Patentanmeldung WO 99/10113 beschrieben ist. Vorzugsweise wird die Dosierspitze nur mit Wolframcarbid beschichtet, das dann wie oben angegeben behandelt wird. Vorzugs- weise hat das Wolframcarbid eine Schichtdicke von 10 bis 500 um.

Außerdem bevorzugt wird die Oberfläche mit einem Strahlmittel gesandstrahlt, gege- benenfalls mit einer Haftvermittlerschicht beschichtet und anschließend mit einem hydrophoben und/oder oleophoben Überzug versehen, wie es in der internationalen Patentanmeldung WO 99/10112 beschrieben ist.

Als hydrophober und/oder oleophober Überzug der genannten Oberflächen eignen sich alle grenzflächenaktiven Phobierungshilfsmittel mit beliebigen Mohnassen. Bei diesen Verbindungen handelt es sich um kationische, anionische, amophotere und/oder nicht-ionische grenzflächenaktive Verbindungen, wie sie z. B. im Verzeich- nis"Surfactants Europa, A Dictionary of Surface Active Agents available in Europe, Edited by Gordon L. Hollis, Royal Socity of Chemistry, Cambridge, 1995 aufgefiihrt werden.

Als anionische Phobierungshilfsmittel sind beispielsweise zu nennen : Alkylsulfate, Ethersulfate, Ethercarboxylate, Phosphatester, Sulfosucinate, Sulfosuccinatamide, Paraffinsulfonate, Olefinsulfonate, Sarcosinate, Isothionate, Taurate und Lingni- nische Verbindungen.

Als kationische Phobierungshilfsmittel sind beispielsweise quartemäre Alkylammo- niumverbindungen und Imidazole zu nennen.

Amphotere Phobierungshilfsmittel sind zum Beispiel Betaine, Glycinate, Propionate und Imidazole.

Nichtionische Phobierungshilfsmittel sind beispielsweise : Alkoxylate, Alkylamide, Ester, Aminoxide und Alkylpolyglykoside. Weiterhin kommen in Frage : Umset- zungsprodukte von Alkylenoxiden mit alkylierbaren Verbindungen, wie z. B. Fett- alkoholen, Fettaminen, Fettsäuren, Phenolen, Alkylphenolen, Arylalkylphenolen, wie Styrol-Phenol-Kondensate, Carbonsäureamiden und Harzsäuren.

Besonders bevorzugt sind Phobierungshilfsmittel bei denen 1 bis 100 %, besonders bevorzugt 60 bis 95 % der Wasserstoffatome durch Fluoratome substituiert sind. Bei- spielhaft seien perfluoriertes Alkylsulfat, perfluorierte Alkylsulfonate, perfluorierte Alkylphosphonate, perfluorierte Alkylphosphinate und perfluorierte Carbonsäuren genannt.

Bevorzugt werden als polymere Phobierungshilfsmittel zur hydrophoben Beschich- tung oder als polymeres hydrophobes Material für die Oberfläche Verbindungen mit einer Molmasse MW>SOO bis 1.000.000, bevorzugt 1.000 bis 500.000 und besonders bevorzugt 1500 bis 20.000 eingesetzt. Diese polymeren Phobierungshilfsmittel kön- nen nichtionische, anionische, kationische oder amphotere Verbindungen sein. Fer- ner können diese polymeren Phobierungshilfsmittel Homo-und Copolymerisate, Pfropf-und Pfropfcopolymerisate sowie statistische Blockpolymere sein.

Besonders bevorzugte polymere Phobierungshilfsmittel sind solche vom Typ AB-, BAB-und ABC-Blockpolymere. In den AB-oder BAB-Blockpolymeren ist das A- Segment ein hydrophiles Homopolymer oder Copolymer, und der B-Block ein hy- drophobes Homopolymer oder Copolymer oder ein Salz davon.

Besonders bevorzugt sind auch anionische, polymere Phobierungshilfsmittel, insbe- sondere Kondensationsprodukte von aromatischen Sulfonsäuren mit Formaldehyd und Alkylnaphthalinsulfonsäuren oder aus Formaldehyd, Naphthalinsulfonsäuren

und/oder Benzolsulfonsäuren, Kondensationsprodukte aus gegebenenfalls substitu- iertem Phenol mit Formaldehyd und Natriumbisulfit.

Weiterhin bevorzugt sind Kondensationsprodukte, die durch Umsetzung von Naphtholen mit Alkanolen, Anlagerungen von Alkylenoxid und mindestens teilwei- ser Überführung der terminalen Hydroxygruppen in Sulfogruppen oder Halbester der Maleinsäure und Phthalsäure oder Bemsteinsäure erhältlich sind.

In einer anderen bevorzugten Ausführung ist das Phobierungshilfsmittel aus der Gruppe der Sulfobernsteinsäureester sowie Alkylbenzolsulfonate. Weiterhin bevor- zugt sind sulfatierte, alkoxylierte Fettsäuren oder deren Salze. Als alkoxylierte Fett- säurealkohole werden insbesondere solche mit 5 bis 120, mit 6 bis 60, ganz beson- ders bevorzugt mit 7 bis 30 Ethylenoxideinheiten versehene C6-C22-Fettsäurealko- hole, die gesättigt oder ungesättigt sind, insbesondere Stearylalkohol, verstanden. Die sulfatierten alkoxylierten Fettsäurealkohole liegen vorzugsweise als Salz, insbeson- dere als Alkali-oder Aminsalze, vorzugsweise als Diethylaminsalz vor.

Bevorzugte Anwendungsgebiete für das erfindungsgemäße Verfahren und die erfin- dungsgemäße Vorrichtung sind biochemische oder chemische Verfahren, bei denen mikroskopische Flüssigkeitsvolumina bewegt, vermischt oder dosiert werden müssen. Als Beispiele seien hier erwähnt : Die Polymerasekettenreaktion PCR (polymerase chain reaction), ELISA (enzyme linked immunosorbent assay) oder die Bestimmung von Enzymaktivitäten.

Das erfindungsgemäße Verfahren ist einfacher durchzuführen als die konventionelle Mikrodosierung mit Hilfe von Drücken. Durch die minimale Adhäsion der Flüssig- keitstropfen an den ultraphoben Oberflächen ist die Manupulation von kleinsten Flüssigkeitsmengen ohne Verluste möglich. Dadurch können Dosierfehler vermieden werden.

Weiterer Gegenstand der Erfindung ist die Verwendung der erfindungsgemäßen Vor- richtung zur Dosierung von Flüssigkeiten im mikroskopischen Maßstab, insbeson- dere im Bereich von 10-6 bis 10-12 Liter.

Nachfolgend wird die erfindungsgemäße Vorrichtung anhand der Figuren 1 bis 4 beispielhaft näher erläutert.

Fig. 1 zeigt eine Kunststoffplatte 2 zum Verschieben von Flüssigkeitstropfen 4,5 mit einer Vielzahl von Elektroden 3 Fig. 2 zeigt eine Aluminiumplatte 7 mit einer elektrisch geladenen Spitze 10 als Manipulator Fig. 3 zeigt eine runde Spitze 12 mit Ringelektrode 13 zur Entnahme kleiner Flüssigkeitsvolumina 15 aus einem Vorrat 14 (Querschnittszeichnung).

Fig. 4 zeigt eine Anordnung von drei Spitzen 16 zur Bildung eines nahezu dreieck- förmigen Spaltes M, der anstelle der Ringelektrode 13 in Fig. 3 zur Entnahme kleiner Flüssigkeitsmengen aus einem Vorrat verwendet werden kann.

Beispiele Beispiel 1 Die Figur 1 zeigt eine erfindungsgemäße Vorrichtung 1 zum rückstandsfreien Bewe- gen von Flüssigkeitstropfen (hier wässrige Lösungen) auf festen Oberflächen.

Die Vorrichtung besteht aus einem Substrat 2 (hier Plexiglas), an dessen Oberfläche runde elektrisch leitfähige Elektroden 3 (Durchmesser 1 mm, Abstand 5 mm) einge- bracht sind, die mit der Oberfläche des Substrates bündig sind. An die einzelnen Elektroden 3 können verschiedene Spannungen gegeneinander angelegt werden.

Die Oberfläche des Substrates 2 wird mit einem ca. 5 um dicken elektrisch isolieren- den ultraphoben Überzug versehen. Dazu wird auf das Substrat eine ca. 5 um dicke Schicht aus Aluminium aufgedampft. Die Al-Schicht wird anodisch oxidiert, mit heißem Wasserdampf behandelt und mit einem hydrophoben Überzug versehen. Zur Herstellung des hydrophoben Überzugs wird das Substrat 5 Stunden bei pH 7 in eine 1 gew.-% ige Lösung aus Fluowet PL80 der Firma Clariant getaucht, mit Wasser gespült und bei 60°C getrocknet.

Herstellung des ultrahydrophoben Überzugs : a. Metallisierung : Auf das Substrat wird eine ca. 5, um dicke Aluminiumschicht thermisch aufgedampft.

Die Oberfläche wurde anschließend in destilliertem Chlorform (CHC13) 3 min. ent- fettet. b. Anodische Oxidation : Die anodische Oxidation der Aluminiumoberfläche wurde in ln Schwefelsäure unter kontinuierlicher Elektrolytbewegung bei laminaren Strömungsbedingungen durchge- führt. Die Elektrolyttemperatur von 20°C wurde durch einen Thermostat geregelt.

Der Abstand des Substratmaterials zur Gegenelektrode aus AlMg3, halbhart betrug

5 cm. Die Stromdichte während der anodischen Oxidation wurde konstant auf 10 mA/cm2 geregelt. Die Oxidation wurde solange fortgeführt bis eine etwa 2-3 gm dicke Oxidschicht entstanden war. c. Wasserbehandlung : Nach der anodischen Oxidation wurde die Probe 5 min. in destilliertem Wasser und anschließend 1 min. in Methanol gespült. Nach dem Trocknen (Luft, Raumtempera- tur) wurde die Probe in einem Becherglas, das zuvor mehrfach mit destilliertem Wasser gekocht wurde, in destilliertem Wasser bei 100°C 15min behandelt. Nach dieser Behandlung. wurde in Methanol gespült (1 min) bei 80°C im Trockenschrank 1 Stunde getrocknet.

Die Al-Schicht ist durch diese Behandlung vollständig in eine Aluminiumoxidschicht umgewandelt worden.

Handhabung der Vorrichtung : Zunächst liegen alle Elektroden 3 auf dem gleichen elektrischen Potential. Ein Tropfen 5 kann auf der Oberfläche in die Richtung einer direkt benachbarten Elek- trode bewegt werden, indem diese Elektrode auf ein Potential von 800 V gegenüber den übrigen Elektroden geschaltet wird. Anschließend liegt der Tropfen über der be- treffenden Elektrode.

Durch mehrfaches ausgeführtes Schalten der Elektroden 3 lässt sich die Bewegung des Tropfens 5 auf der Oberfläche beliebig innerhalb des Elektrodenrasters steuem.

Auf diese Weise können auch verschiedene Tropfen 4,5 an dieselbe Stelle verscho- ben und miteinander vereinigt werden.

Die Bewegung der Tropfen 4, erfolgt auf der ultraphoben Oberfläche rückstands- frei, d. h. ohne Anhaften von Flüssigkeitsresten entlang der Bewegungsspur. Dies er- kennt man wie folgt : Ein Tropfen 4 (Durchmesser ca. 1 mm) einer Lösung von 4- (6-Diethylamino-3-diethylimino-3H-xanthe-9-yl)-1, 3-benzodisulfonsäure (Kiton

Rot, Konzentration 1 x 10-2 mol/1 in Wasser) befindet sich auf der ultraphoben Ober- flache. Der Tropfen 4 wird entlang eines geschlossenen Weges über 8 Elektroden (Länge des Weges 40 mm) verschoben. Dieser Vorgang wird 10 mal wiederholt, so dass der Gesamtweg 400 mm beträgt. Anschließend wird der Tropfen entfernt und ein Tropfen reines Wasser entlang des vorher verwendeten geschlossenen Weges ebenfalls 10 mal verschoben.

Dieser Wassertropfen wird spektralphotometrisch untersucht. Bis zu der Nachweis- grenze von 10-1° mol/1 (bezogen auf das Tropfenvolumen) kann kein Farbstoff nachgewiesen werden. Die Verluste durch das Verschieben des Tropfens betragen somit weniger als 10 ppb.

Das hier gezeigte Beispiel kann in entsprechender Weise auch für Flüssigkeitstropfen verwendet werden, die von allen Seiten mit festen Wänden umgeben sind, z. B. in Spalten oder Röhren. Diese Ausführungen erlauben somit die verlustfreie Förderung von Flüssigkeiten allein durch die Änderung von elektrischen Feldern, d. h. ohne mechanisch bewegte Teile.

Beispiel 2 Die Figur 2 zeigt eine erfindungsgemäße Vorrichtung 6 zum vollständigen Übertra- gen von Flüssigkeitstropfen (hier wässrige Lösungen) mit Hilfe einer beweglichen Spitze 10.

Die Vorrichtung weist eine Trägerplatte 7 aus Aluminium mit einem ultraphoben Überzug und einer Spitze 10 auf. Die Spitze weist ebenfalls eine ultraphobe Ober- fläche auf. Die Herstellung des ultraphoben Überzugs erfolgt gemäß Beispiel 1.

Handhabung der Vorrichtung : Ein Tropfen 8 einer Lösung von 4- (6-Diethylamino-3-diethylimino-2H-xanthe-9-yl)- 1, (Kiton Rot, Konzentration 1 x 10-2 mol/1 in Wasser) befindet

sich auf der ultraphoben Oberfläche. Das Volumen beträgt V = (3.00 + 0,05) x 10-9 Liter. Die Volumenbestimmung wurde anhand des Durchmessers des kugelfönnigen Tropfens mit einem Messmikroskop durchgeführt Mit Hilfe der Spitze 10 kann der Tropfen 8 aufgenommen werden. Dazu nähert man die Spitze bis zu einem Abstand von ca. 5 mm, wobei zwischen Spitze 10 und der Substratplatte 7 eine Spannung von 800 V anliegt. Der Radius der Spitze beträgt ca.

0.5 mm. Der an der Spitze hängende Tropfen wird in eine Gefäß mit 65 u1 Wasser durch Abschalten der Spannung übertragen.

Die Farbstoffkonzentration im Wasser wurde anschließend spektralphotometrisch zu 4.54 x 10'mol/1 bestimmt. Dies entspricht einem durch die Spitze übertragenen Volumen von V= 2.95 nl. Die Übertragung wurde 5 mal in gleicher Weise durchge- führt, wobei sich innerhalb des relativen Dosierfehlers von 1.5 % kein Verlust des übertragenen Volumes ergibt.

Beispiel 3 Ein weiteres Beispiel zeigt das Dosieren und vollständige Übertragen von Flüssig- keitstropfen mit Hilfe der Vorrichtung in Figur 2.

Ein Tropfen 8 einer Lösung von 4- (6-Diethylamino-3-diethylimino-3H-xanthe-9-yl)- 1, (Kiton Rot, Konzentration 1 x 10-2 mol/1 in Wasser) befindet sich auf der ultraphoben Oberfläche. Das Volumen beträgt V3= (3.05) x 10-9 Liter.

Ein weiterer Tropfen 9 einer Lösung von 1, 1'-Diethyl-4, 4'-dicarbocyanin-iodid (Konzentration 1 x 10-2 mol/1 in Wasser) befindet sich auf der ultraphoben Ober- fläche. Das Volumen beträgt V4= (3.05) x 10-9 Liter.

Mit Hilfe der Spitze 10 wird der Tropfen 8 wie im Beispiel 2 aufgenommen. Der an der Spitze hängende Tropfen wird in eine Vertiefung 11 der Vorrichtung durch Ab-

schalten der Spannung abgelegt. Der andere Tropfen 9 wird mit der Spitze aufge- nommen und mit dem Tropfen 8 in der Vertiefung vereint. Anschließend werden beide Tropfen mit der Spitze aufgenommen und in ein Gefäß mit 65 u1 Wasser ge- mäß Beispiel 2 übertragen.

Die Farbstoffkonzentrationen im Wasser wurden anschließend spektralphotometrisch bestimmt. Die Übertragung wurde 5 mal in gleicher Weise durchgeführt, wobei sich innerhalb der relativen Dosierfehler von 1.5 % kein Verlust der übertragenen Volu- mina V3 und V4 ergibt.

Beispiel 4 Fig. 3 zeigt eine Anordnung zur kontrollierten Entnahme kleiner bekannter Flüssig- keitsvolumina aus einem Vorrat (Querschnittszeichnung). Die Anordnung besteht aus einer Elektrode 12 mit runder Spitze (Durchmesser lmm) und einer ringförmigen Elektrode 13 (Innendurchmesser 0.5 mm). Beide Elektroden sind mit einem ultrahy- drophoben Überzug versehen, dessen Herstellung in Beispiel 1 beschrieben ist. Die Anordnung wird in eine wässrige Lösung von 4- (6-Diethylamino-3-diethylimino-3H- xanthe-9-yl)-1, 3-benzodisulfonsäure (Kitonrot, Konzentration 10-2 mol/1 in Wasser) getaucht (wie in Fig. 3 gezeigt). Bei Anlegen einer Spannung von 900 V zwischen dem Ring 13 und der Elektrode 12 wird ein Flüssigkeitstropfen 15 aus dem Vorrat 14 entnommen und bleibt an der Elektrode 12 haften. Durch seitliches Kippen und Ab- legen des elektrischen Feldes kann der Tropfen in ein anderes Gefäß übertragen werden. Durch Messung der Fluoreszenzintensität des Farbstoffs in einem bekannten Volumen Wasser wurde das Volumen des Tropfens 15 bestimmt. Man erhält nach 30maliger Wiederholung der Entnahme ein Volumen von (65.0 0.2) x 10-9 Liter.

Beispiel 5 Anstelle der ringförmigen Elektrode 13 der Vorrichtung in Fig. 3 kann auch eine Anordnung wie in Fig. 4 verwendet werden. Hier werden drei runde Elektroden 16 (Durchmesser 1 mm) mit einem ultrahydrophoben Überzug versehen, dessen Her-

stellung in Beispiel 1 beschrieben ist. Die Elektroden 16 werden wie in Fig. 4 be- schrieben zur Bildung eines nahezu dreieck-förmigen Spates M angeordnet, der die gleiche Funktion der Ringelektrode 13 in Fig 3. hat. Mit dieser Anordnung wird wie in Beispiel 15 ein Flüssigkeitstropfen aus einem Vorrat entnommen. Man erhält bei 30-maliger Wiederholung der Dosierung ein Volumen von (50.0 0.3) x 10-"Liter.

In ähnlicher Weise können andere Strukturen (im Querschnitt bzw. in Draufsicht runde, quadratische oder beliebig geformte Spalte) anstelle des Ringes 13 in Fig. 3 zur Dosierung verwendet werden. Besonders eignen sich hierzu Strukturen, die durch bekannte Mikrostruktur-Techniken (z. B. Licht-, Röntgen-oder Elektronen-lithogra- phische Techniken) erzeugt werden können, da kleine zu dosierende Volumina ent- sprechend kleine Strukturen benötigen.