La présente invention concerne une méthode d'identification d'un microbe dans un prélèvement clinique par comparaison de spectres de masse réalisés par spectrométrie de masse de type MALDI-TOF et une banque de spectres de référence d'une pluralité d'extraits protéiques d'échantillons contenant chacun un microbe parmi respectivement une pluralité de microbes de référence. Pl us particulièrement, la présente invention concerne la réalisation d'une banque de données spécifiques de spectres de masse de type MALDI-TOF réalisés sur des extraits de prélèvements humains, tels que les urines infectées par des microbes, afin de pouvoir réaliser directement le diagnostic spécifique de l'infection sans étape d'isolement du microbe. Actuel lement, en routine, la détection et l'identification de microorganismes à partir de prélèvements de patients sont réalisées en 2 étapes:

- une étape initiale d'isolement des microorganismes après ensemencement du prélèvement du patient en milieu de culture solide (gélose) ou liquide et une incubation minimale 24 heures. Ce délai peut être allongé lorsque la culture est fastidieuse. L'objectif étant d'obtenir des colonies isolées des microorganismes présents dans les prélèvements de patients sur milieu de cu lture solide.

- une étape d'identification des colonies isolées en quelques minutes par spectrométrie de masse de type MALDI-TOF à partir de banques de données comportant les spectres des microorganismes obtenus à partir de colonies isolées sur milieu de culture solide.

La détection des microorganismes à partir des prélèvements des patients peut être réalisée par l'examen au microscope de lames où les prélèvements ont été étalés et colorés par la coloration de Gram . Cette approche manque à la fois de sensibilité et de spécificité. Ce n'est qu'une technique de débrouillage permettant de différencier les bactéries à Gram positif de celles à Gram négatif, mais ne permettant pas de réaliser une identification précise. De plus, la coloration de Gram est opérateur dépendant avec une grande variabilité des résultats observés selon la personne réalisant cet examen .

La détection de microorganismes à partir des prélèvements des patients peut aussi être réalisée par biologie moléculaire. L'utilisation de la biologie moléculaire permet une identification bactérienne rapide et précise dans bien des cas par amplification de l'ADN par PCR. Les avantages de la biologie moléculaire sont nombreux. Cependant, les techniques de biologie moléculaire ne sont pas disponibles dans la plupart des laboratoires de biologie et sont de plus très onéreuses. Elles nécessitent de connaître à l'avance le microorganisme recherché si l'on veut pouvoir l'identifier par PCR spécifique en temps réel en 2-3 heures à partir du prélèvement de patient. Sinon, il faut avoir recours à la PCR couplée au séquençage avec des délais de rendu de résultats beaucoup plus long . De plus, les informations obtenues par le séquençage ne sont pas toujours suffisamment discriminantes pour permettre l'identification au niveau de l'espèce et l'étude d'autres séquences ou gènes cibles est requise, ce qui augmente les délais de réponse. Cette méthodologie nécessite une grande expertise et doit être réservée aux identifications difficiles ou aux microorganismes dont la culture est fastidieuse.

De façon connue, la spectrométrie de masse est une technique physique d'analyse permettant de détecter et d'identifier des molécules d'intérêt par mesure de leur masse. Son principe réside dans la séparation en phase gazeuse de molécules chargées (ions) en fonction de leur rapport masse/charge (m/z). Les applications de la spectrométrie de masse sont très vastes et concernent principalement l'identification de peptides ou de protéines, l'analyse de leur séquence en acides aminés ou encore la mise en évidence de modifications post- traductionnelles. La spectrométrie de masse sous sa variante MALDI-TOF (matrix- assisted laser desorption ionization-time-of-flight) permet d'identifier et de classifier différents types bactériens en utilisant des bactéries intactes. En effet, parmi les divers composants identifiés dans un spectre de spectrométrie de masse MALDI-TOF, certains semblent spécifiques d'une espèce bactérienne précise. Ainsi, il est possible d'identifier un grand nombre d'espèces bactériennes à partir de colonies isolées en culture de prélèvements de patients en utilisant des banques de données fabriquées grâce à l'analyse des colonies de chacune de ces espèces. La spectrométrie de masse de type MALDI-TOF s'est imposée ces dernières années dans les laboratoires de microbiologie clinique pour l'identification des colonies de bactéries ou de levures isolées sur milieu de culture solide à partir de prélèvements humains. En effet, ses atouts sont nombreux : (1) rapidité de l'identification (en quelques minutes) ; (2) précision de l'identification (sans nécessité préalable de connaître le type de microorganisme recherché) ; et (3) faible coût par échantillon (moins de 50 centimes d'euros par échantillon) .

Parmi les fabricants de spectromètre de masse, deux systèmes MALDI-TOF complets sont disponibles à la vente, commercialisés par les sociétés Bruker Daltonics (Allemagne) et Biomérieux (France) . Chaque instrument est accompagné d'un logiciel de pilotage, d'une banque de données obtenue à partir de colonies isolées en milieu solide et d'un système expert permettant l'identification du microorganisme reposant sur l'analyse du spectre généré par le spectromètre de masse. Une application de cette technologie à l'identification des bactéries implique actuellement l'isolement de colonies (obtenues après 24h - 48h de culture) et l'analyse de bactéries entières ou d'extraits protéiques de bactéries isolées, les dites bactéries étant isolées directement à partir des prélèvements de patients. Le gain de temps est important pour la mise en route d'une antibiothérapie. Le but de la présente invention est de fournir une méthode d'identification des microorganismes directement à partir de prélèvements de patients, sans étape de culture, afin de pouvoir obtenir dans des délais très rapides l'identification de microorganismes pathogènes dans les prélèvements de patients. Ceci permettrait de pouvoir adapter le traitement antibiotique le plus rapidement possible afin de réduire la morbidité, mortalité et le coût de la prise en cha rge du patient.

Plus particulièrement, un but de la présente invention est de tester des prélèvements d'urines de patients présentant des infections urinaires. En effet, les infections urinaires sont les infections bactériennes les plus fréquentes quel que soit l'âge. Les prélèvements urinaires correspondent à plus de 40% des prélèvements reçus au laboratoire de microbiologie clinique d'un hôpital (la proportion de prélèvements urinaires reçus dans un laboratoire de ville étant encore plus élevée). Les principales bactéries retrouvées comme responsable d'infections urinaires sont : Escherichia coli (48%), Klebsiella pneumoniae (10%o), Enterococcus faecalis (8%), Proteus mirabilis (5%) et Pseudomonas aeruginosa (5%). Quelques études discutées ci-après ont été réalisées sur l'identification de microorganismes directement à partir des prélèvements de patients comprenant des urines principalement, sans culture pré-analytique, par spectrométrie de masse MALDI-TOF par comparaison avec des spectres de référence de la base de données Biotyper réalisé à partir d'isolats bactériens cultivés. Mais, les résultats obtenus ne sont pas concluants voire pas satisfaisants.

Dans Ferreira et al (Clinical icrobiology and infection, vol . 17, number 7, july 2011) l'étude portait quasi-exclusivement sur des échantillons d'urines avec des infections urinaires à Escherichia coli (75% cas étudiés) avec en outre une présélection de patients avec une urine ayant une concentration supérieure à > 10 ⁵ CFU/mL voir > 5xl0 ⁵ CFU/m L pour certains pathogènes tels que E. faecalis e un volume de 4 ml était nécessaire à la procédure, cependant ce volume est parfois difficile à obtenir notamment chez les nourrissons.

Dans ossel lo et al (APMIS 122 (2013) pages 790-795), seulement 80 prélèvements d'urines de patients dont 60 avec Escherichia coli (75% cas étudiés) et nécessitant 5 m L urine (pas toujours disponibles) . Enfin, il est recommandé une préincubation du culot bactérien dans un milieu de culture pendant 4 heures pour les échantillons < 10 ⁷ CFU/mL ce qui correspond à la majorité des patients.

Dans DeMarco et al (Am . J . Clin . Pathol . 2014 141 : 204-212), l'étude repose sur l'analyse d'un échantillon d'urines d'un volume minimum de 15 mL auxquels des microorganismes (Escherichia coli et Staphylococcus saprophyticus, notamment) ont été artificiellement ajoutées. L'étude réelle (à partir d'échantillon de patient infecté) a été réalisée seulement sur 15 patients présentant des infections à Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae et Proteus mirabilis avec une limite de détection de > 10 ⁵ CFU/m L.

Dans Burillo et al (PLoS One 2014 9 : e86915), l'étude repose sur l'analyse d'un échantillon d'urines minimum de 15 m L et elle était limitée aux échantillons contenant > 10 ⁵ CFU/mL. De plus, l'i nterprétation ne respectait pas toujours un score de validation des spectres > 1.99, ce qui ne correspond pas aux critères exigés par le fabricant.

Dans Sa nchez-Juanes et al (JJ . Clin . Microbiol . 2014, 52(1) :335), l'étude porte sur des prélèvements de 3 mL d'urine. Enfin, elle est aussi limitée à des prélèvements de seu lement 71 patients contenant > 10 ⁵ CFU/m L.

Cependant, en pratique pour être fiable, l'identification doit pouvoir porter sur des extraits protéiques obtenus à partir à partir de prélèvements d'urines de pas plus de 1ml et avec des concentrations présentes dans les échantillons des prélèvements cliniques infectés chez les patients humains, à partir de seulement 10 ⁴ bactéries/mL pour les urines.

En outre, dans tous ces articles, l'acide formique, qui est un produit dangereux, a été utilisé com me moyen de lyse chimique dans le traitement de préparation d'un extrait protéique.

Les résultats d'identification des microorganismes par spectrométrie de masse de type MALDI-TOF sur des échantillons d'extraits protéiques obtenus à partir de prélèvements urinaires de patients, à l'aide des logiciels et banques de spectres de références disponibles, notam ment le logiciel et la base de données BIOTYPER® de la société BRUKER DALTONICS® ne comprenant que des spectres de référence de colonies isolées, rapportés ci-après sur des prélèvements de 1m l, sont médiocres avec moins de 50% d'identification .

On a découvert selon la présente invention qu'il est possible d'identifier de microorganismes directement à partir d'extraits protéiques de prélèvements de patients, sans culture ou autre phase pré-analytique, par spectrométrie de masse MALDI-TOF, à partir de prélèvements d'urines de pas plus de 1ml et avec des concentrations présentes dans les échantillons des prélèvements cliniques infectés chez les patients humains, à partir de à 10 ⁴ /ml pour les urines, sous réserve de réaliser et comparer les spectres de l'échantillon à analyser et des spectres de référence dans certaines conditions sans étape d'isolement et culture du microbe, à savoir à l'aide de spectres de référence réalisés à partir de prélèvements cliniques infectés sans isolement et/ou culture des microorga nismes comme explicité ci-après.

Du fait que le contenu protéique des bactéries est modifié par l'environnement et interaction avec les autres composants chimiques ou biologiques dudit prélèvement clinique, le spectre d'un extrait protéique dans un prélèvement clinique du microorganisme contenant un microbe donné diffère du spectre réalisé sur un extrait protéique obtenu à partir d'une colonie cultivée purifiée d'un échantil lon microbien purifié. Il en résulte que l'identification selon la présente invention à l'aide de spectres de référence réalisés à partir de prélèvements cliniques infectés entiers sans isolement et/ou culture des microorganismes qu'il contient, sont plus fiables et permettent un meilleur taux d'identification en comparaison avec une banque de spectres réalisés sur des microorganismes purifiés et sont aussi performants que les identifications réalisées à partir de spectres d'échantillons d'extraits protéiques bactériens obtenus et analysés après isolement et/ou culture desdits bactéries qu'ils contiennent en comparaison avec des spectres obtenus à partir d'échantillons de bactéries purifiées.

La présente invention permet une identification beaucoup plus rapide en moins d'une heure car ne nécessitant pas la perte de temps de 24 à 48h pour l'isolement et/ou la culture du microorganisme contenu dans le prélèvement clinique ce qui en cas d'infection peut s'avérer un gain de temps décisif dans le traitement thérapeutique.

Plus précisément, la présente invention fournit un procédé d'identification d'un microbe dans un prélèvement clinique par comparaison de spectres de masse réalisés par spectrométrie de masse de type MALDI-TOF d'un échantillon d'extrait protéique du dit prélèvement à analyser contenant un dit microbe, par comparaison avec des spectres de référence d'au moins une banque de spectres d'une pluralité d'extraits protéiques d'échantillons contenant chacun un microbe choisi parmi respectivement une pluralité de microbes de référence, caractérisé en ce qu'on réalise les étapes dans lesquel les : a) on établit une banque de spectres de référence par spectrométrie de masse de type MALDI-TOF, lesdits spectres de référence étant réalisés sur des échantillons de référence d'extraits protéiques obtenus selon un même procédé de préparation à partir de prélèvements cliniques de référence de même nature com prenant un traitement de lyse desdits microbes, sans isolement et/ou sans culture desdits microbes desdits prélèvements cliniques de référence, et b) on réalise un spectre d'un échantillon à analyser d'extrait protéique obtenu à partir d'un prélèvement clinique à analyser de même nature que celui des échantillons de référence, ledit échantillon à analyser étant obtenu selon le même dit procédé de préparation à partir dudit prélèvement clinique comprenant un traitement de lyse des microbes éventuels qu'il est susceptible de contenir, sans isolement et/ou sans culture dudit microbe dudit prélèvement clinique à analyser, et c) on détermine que ledit prélèvement clinique à partir duquel un échantillon à analyser a été obtenu, contient un microbe de référence donné choisi parmi ladite pl uralité des différents microbes de référence de ladite banque de référence si on retrouve dans le spectre de l'échantillon à analyser de l'étape b) l'ensemble des pics caractéristiques d'un dit spectre de référence d'un échantil lon de référence contenant ledit microbe de référence donné.

Plus particulièrement, ladite nature desdits prélèvements cliniques consiste dans des urine, liquide céphalo-rachidien, lavage bronchoalvéolaire ou sang .

De préférence, à l'étape a), pour chaque microbe de référence, la banque comprend une pluralité de spectres réalisés sur une pl uralité d'échantillons obtenus à partir de respectivement une pluralité de catégories distinctes de prélèvements cliniques d'une même nature de prélèvement clinique, les différentes catégories distinctes de prélèvements cliniques d'une même nature pour un même microbe de référence correspondant de préférence à des prélèvements cli niques dont les composants autres que le microbe au sein dudit prélèvement clinique sont qualitativement et/ou quantitativement différents induisant des différences spectrales de tout ou partie de pics caractéristiques des protéines ou fragments de protéines provenant dudit microbe de référence. Plus particulièrement, les dits spectres de référence sont obtenus à partir de différentes catégories distinctes de prélèvements d'uri nes comprenant des concentrations en globules blancs et/ou globules rouges différentes, avec de préférence au moins : - un premier groupe de prélèvements d'urines contenant pas plus de 10 globules blancs et/ou globules rouges /pl, notamment correspondant aux patients avec une infection urinaire et une faible réponse inflammatoire locale, et

- un deuxième groupe de prélèvements d'urines contenant plus de 10 globules blancs et/ou globules rouge /μΙ, notamment correspondant aux patients avec une infection urinaire et une réponse inflammatoire locale élevée.

Plus particulièrement, lesdits microbes de référence sont choisis parmi les bactéries et les levures, de préférence les bactéries. Plus particulièrement encore, lesdites bactéries de référence comprennent au moins Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Enterococcus faecalis, Proteus mirabilis, Pseudomonas aeruginosa.

Une banque de données de spectres de référence de prélèvements d'urines doit permettre de pouvoir détecter et identifier directement dans les prélèvements des patients les microorganismes pathogènes responsables d'infections urinaires.

Plus particulièrement encore, lesdites bactéries de référence, que l'on retrouve notamment dans les infections urinaires, sont choisies parmi au moins Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Enterococcus faecalis, Pseudomonas aeruginosa, Proteus mirabilis, Citrobacter koseri, Enterobacter aerogenes, Enterobacter cloacae, Enterococcus faecium, Klebsiella oxytoca, Morganella morganii, Staphylococcus aureus, Staphylococcus saprophyticus, Streptococcus agalactiae, Serratia marcescens, Citrobacter freundii, Staphylococcus epidermidis, Stenotrophomonas maltophilia, Raouitella ornithinolytica, Gardnerella vaginalis, Hafnia alvei, Acinetobacter pittii.

Plus particulièrement encore, lesdits microbes de référence comprennent au moins : Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Enterococcus faecalis, Pseudomonas aeruginosa, Proteus mirabilis, Citrobacter koseri, Enterobacter aerogenes, Enterobacter cloacae, Enterococcus faecium, Klebsiella oxytoca, Morganella morganii, Staphylococcus aureus, Staphylococcus saprophyticus, Streptococcus agalactiae, Serratia marcescens, Citrobacter freundii, Staphylococcus epidermidis, Stenotrophomonas maltophilia, Raoultella ornithinolytica, Gardnerella vaginalis, Hafnia alvei, Acinetobacter pittii, Pseudomonas putida Serratia marcescens , Klebsiella oxytoca, Aerococcus urinae ; Staphylococcus capitis ; Pseudomonas putida, Acinetobacter nosocomialis, Enterobacter kobei, Streptococcus oral/s, Enterococcus gallinarum, Stenotrophomonas maltophilia, Raoultella ornithinolytica, Pseudomonas mosseiii, Hafnia alvei, Providencia stuartii, Corynebacterium amycoiatum, Corynebacterium striatum, Streptococcus anginosus, Acinetobacter baumannii, Staphylococcus hominis ssp hominis, Gardnerella vaginalis, Candida albicans et Candida glabrata. Une banque de données de spectres de prélèvements de liquides broncho-alvéolaires doit permettre de pouvoir identifier directement des microorganismes pathogènes responsables de pneumopathies. Pour une banque de spectres de liquides céphalo-rachidiens, elle doit permettre de mettre en évidence directement dans les prélèvements de patients les m icroorganismes pathogènes responsables méningites.

Les prélèvements de lavages broncho-alvéolaires comprennent principalement les bactéries Staphylococcus aureus, des bacilles à Gram négatif non fermentant tels que Pseudomonas aeruginosa et Acinetobacter baumanii et des entérobactéries telles que Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae et Proteus mirabilis. Les prélèvements de liquides céphalo-rachidiens comprennent principalement des bactéries Neisseria meningitidis, Streptococcus pneumoniae, Escherichia coli et autres entérobactéries.

Une autre application de ce type de banques de données est la réalisation d'une banque de données de spectres de flacons de bouillons hémocultures inoculés avec du sang de patients infectés.

De préférence, ladite banque de référence comprend en outre au moins un spectre de référence d'extrait protéique de dit prélèvement clinique sain non infecté par un microbe.

Plus particulièrement, la dite banque de référence comprend au moins 500 spectres de référence réalisés à partir d'au moins 500 échantillons de dits prélèvements cliniques de référence contenant chacun un dit microbe de référence, de préférence l'ensemble desdits prélèvements cliniques de référence contenant au moins 10 dits microbes de référence différents, de préférence au moins 20 dits microbes de référence différents.

Plus particulièrement, la base comprend au moins 1000 spectres de référence réalisés à partir d'au moins 1000 échantillons de dits prélèvements cliniques de référence contenant chacun un dit microbe de référence, l'ensemble desdits prélèvements cliniques de référence contenant au moins 40 dits microbes de référence différents.

Plus particulièrement, lesdits extraits protéiques sont obtenus en effectuant un procédé de préparation comprenant les étapes successives suivantes :

1) on élimine le liquide du dit prélèvement clinique à analyser, et on récupère un premier résidu solide, et

2) de préférence, on ajoute une solution de détergent au dit premier résidu solide, et

3) on élimine le liquide à nouveau et on récupère un deuxième résidu solide, et 4) on réalise une lyse des cellules présente dans ledit deuxième résidu solide, de préférence une lyse mécanique, et

5) on solubilise les protéines et fragments de protéines présents dans le dit deuxième résidu solide, avec une solution de solvant, et 6) on élimine les substances non solubilisées.

L'acide formique, usuellement utilisé pour réaliser une lyse chimique et extraire protéines et peptides à partir des prélèvements de patients est à l'origine d'accident de travail (brûlures de la peau et de lésions oculaires graves) du personnel. Ces accidents ont conduits à réévaluer les protocoles techniques de préparation des extraits protéiques à partir des prélèvements cliniques pour la réalisation des spectres pour par spectrométrie de masse de type MALDI-TOF sans avoir à utiliser ce produit dangereux.

De préférence, lesdits extraits protéiques sont obtenus en effectuant le procédé de préparation comprenant les étapes successives suivantes :

1) on élimine le liquide du dit prélèvement clinique à analyser, en réalisant une première centrifugation et éliminant le surnageant de centrifugation, et en récupérant un premier résidu solide qui est le culot de première centrifugation, et

2) on ajoute une solution de détergent au dît premier résidu solide, de préférence une solution de saponine, et

3) on récupère un deuxième résidu solide par une deuxième centrifugation et en éliminant le surnageant et en récupérant un deuxième résidu solide qui est le culot de deuxième centrifugation, et

4) on réalise une lyse mécanique dudit deuxième résidu solide par broyage mécanique permettant d'obtenir des fragments de taille inférieure ou égale à 1 pm de préférence réalisé à l'aide de microbilles de verre, et 5) on solubilise les protéines et fragments de protéines présents dans le dit deuxième résidu solide de lysat cellulaire, de préférence avec une solution d'acide trifluoro-acétique et acétonitrile, et

6) on élimine les substances non solubilisées, par une troisième centrifugation et en éliminant le cu lot et récupérant le surnageant de troisième centrifugation .

La fonction de l'agent détergent, notamment la mise en œuvre de saponine, est d'éviter l'agglomération des bactéries et cellules avec des composés macromoléculaires tels que notamment globules blancs ou rouges contenus dans ledit prélèvement clinique d'urines. La mise en œuvre combinée avec un broyage mécanique permet de préparer les extraits protéiques sans mise en œuvre d'acide formique tant pour la lyse que pour la solubilisation des échantillons. Plus particulièrement encore, les volumes de prélèvements cliniques d'urine sont inférieurs à 3 mL, de préférence de pas plus de lm L, et les concentrations de bactéries desdits prélèvements d'urines des spectres de référence et prélèvement d'urine à analyser sont de 10 ⁴ à 10 ⁷ bactéries par millilitre et les extraits protéiques peuvent être préparés à partir de pas plus de lml de prélèvements. La présente invention fournit donc également une banque de spectres de masse de type MALDI-TOF utile comme dits spectres de référence dans un procédé selon l'invention et tel que défini ci-dessus caractérisé en ce qu'elle comprend au moins 500 dits spectres de référence, les dits spectres de référence étant réalisés sur des échantillons d'extraits protéiques obtenus selon un même dit procédé de préparation à partir d'au moins 500 prélèvements cliniques de référence de même nature, de préférence au moins 1000 prélèvements de référence, comprenant un traitement de lyse desdits microbes, sans isolement et/ou sans culture desdits microbes desdits prélèvements cliniques de référence. Plus particulièrement, ladite banque contient des spectres de référence d'extraits protéiques de prélèvements d'urines de référence contenant au total au moins 10 dits microbes de référence, de préférence au moins 20 dits microbes de référence différents, de préférence encore au moins 40 dits microbes différents.

D'autres caractéristiques et avantages de la présente invention ressortiront mieux à la lecture de la description qui va suivre, faite de manière illustrative et non limitative, en référence aux dessins annexés sur lesquels : - la figure 1 représente un spectre de masse MALDI-TOF d'extrait protéique d'urine stérile (non infectée),

- les figures 2A et 2B représentent des spectres de masse MALDI- TOF d'extraits protéiques à partir de colonie d'Escherichia coli (figure 2A) et d'urine infectée d'Escherichia coli (figure 2B), - les figures 3A et 3B représentent des spectres de masse MALDI-

TOF d'extraits protéiques à partir de colonie de Klebsiella pneumoniae (figure 3A) et d'urine infectée de Klebsiella pneumoniae (figure 3B),

- les figures 4A et 4B représentent des spectres de masse MALDI- TOF d'extraits protéiques à partir de colonie de Enterococcus faecalis (figure 4A) et d'urine infectée de Enterococcus faecalis (figure 4B),

- les figures 5A et 5B représentent des spectres de masse MALDI- TOF d'extraits protéiques à partir de colonie de Proteus mirabilis (figure 5A) et d'urine infectée de Proteus mirabilis (figure 5B),

- les figures 6A et 6B représentent des spectres de masse MALDI- TOF d'extraits protéiques à partir de colonie de Pseudomonas aeruginosa (figure 6A) et d'urine infectée de Pseudomonosas aeruginosa (figure 6B),

- les figures 7 A et 7B représentent des spectres de masse MALDI- TOF d'extraits protéiques à partir de prélèvements d'u rines infectée d'Escherichia coti contenant pas plus de 10 globules blancs et/ou rouge/ul (figure 2A) et plus de 10 globules blancs et/ou rouge/ul (figure 2B).

L'invention est illustrée ci-après par la description détaillée de l'identification de microorganismes par spectrométrie de masse de type MALDI-TOF directement à partir de prélèvements urinaires de patients infectés, réalisée de manière optimale non pas avec les spectres de microorganismes obtenus à partir de colonies isolées sur milieu de culture solide mais grâce à une comparaison avec les spectres obtenus à partir de prélèvements urinaires de patients présentant une infection urinaire.

L'urine est l'un des liquides biologiques produits par l'homme, constituant la plus grande part des déchets liquides du métabolisme de l'organisme. Le composant principal de l'urine est l'eau et le principal déchet qu'elle contient est l'urée mais en réalité, l'urine est un biofluide complexe avec une immense diversité chimique. Récemment, il a été mis en évidence que l'urine pouvait contenir plus de 3.000 différents composés chimiques. La complexité de la composition urinaire et le fait que les bactéries aient un métabolisme différent impliquant une expression différente des protéines selon que les bactéries soient sous forme de colonies dans un milieu de culture solide ou dans l'urine du patient infecté permettent d'expliquer les mauvais résultats quand on compare un spectre d'urine infectée par un microorganisme au spectre de ce même microorganisme isolé à l'état pur sous forme de colonies dans un milieu de culture solide.

Selon la présente invention, on a découvert qu'il était possible grâce à la création d'une base de données de spectres de prélèvements d'urines infectées de réaliser le diagnostic étiologique d'une infection urinaire par spectrométrie de masse de type MALDI-TOF avec une excellente sensibilité et spécificité comparé aux technique de culture. La culture est actuellement la technique de référence pour réaliser le diagnostic des infections urinaires. Cette technique demande au minimum de 24 à 48 h avant de pouvoir mettre en évidence le microorganisme pathogène. Grâce à la banque de données de spectres de références réalisés sur des extraits de prélèvements urinaires, la mise en évidence du microorganisme pathogène par analyse directe de l'urine par spectrométrie de masse de type MALDI-TOF nécessite moins d'1 h. La prise en charge spécifique du patient avec un traitement adapté peut donc être réalisée beaucoup plus tôt par rapport à une analyse nécessitant la culture. Le délai de prise en charge adapté est capital dans le pronostic des maladies infectieuses avec un impact direct sur la mortalité, la morbidité et le coût global du traitement.

A) Matériel et méthodes pour la préparation de l'extrait protéique et la réalisation du spectre de masse.

1. Sol utions et réactifs

HCCA : acide alpha cyanocinnamique, Sigma Aldrich, référence C2020-10g

TFA : Acide trifluoroacétique (Trifluoro acetic acid), Sigma Aldrich, référence 302031- lOOmL

Saponine : saponine, Sigma Aldrich, référence 84510-lOOg

Acétonitrile : qualité HPLC, VWR, référence 20060.320 Eau : qualité HPLC, VWR, référence 23595.294

Microbilles en verre : < 106 μιη, Sigma Aldrich, référence G4649-

500g

2. Préparation de la solution de matrice (HCCA saturée)

- Dans un tube polypropylène 1.5 mL, introduire 2 pointes de spatules d'alpha-cyano-4-hydroxycînnamic acid (HCCA),

- Ajouter 500 μΙ d'acétonitrile H PLC, - Ajouter 475 μΙ d'eau HPLC,

- Ajouter 25 μΙ de TFA (Acide trifluoroacétique),

- Vortexer ou secouer vigoureusement,

- Soniquer 10 min puis centrifuger 5 min à 13000 g, - Transférer le surnageant dans un tube polypropylène 1.5 ml propre.

3. Protocole de préparation d'extrait protéique à partir d'urine.

Un ml d'urine est prélevé et vigoureusement mélangé à une solution de 300 pL de saponine dans un tube polypropylène à vis de 2 m L à l'aide d'un vortex. Après centrifugation ( 13000 g, 5 minutes), le culot obtenu subit un lavage avec 500 pL d'une solution d'acide trifluoroacétique 10% . Le tube est vortexé puis le mélange est centrifugé (13000 g, 5 minutes) . Le culot est lavé avec 1 m L d'eau H PLC puis le tube est de nouveau vortexé et une centrifugation (13000 g, 5 minutes) est réalisée. Le surnageant doit bien être enlevé. Une spatule de microbilles en verre et 40 pL d'un mélange 50% eau / 50% acétonitrile sont ajoutés au culot obtenu . Les bactéries contenues dans le culot sont broyées avec un appareil broyeur à microbilles FastPrep®- 24 (MP Biomedicals, référence 116004500) selon un programme de 4 cycles de 20 secondes puis le mélange est centrifugé ( 13000 g, 5 minutes). Un pL du surnageant est déposé sur la plaque cible du spectromètre puis séché 10 minutes . Un pl de solution de matrice HCCA satu rée est ajouté par-dessus, séché 10 minutes, puis un spectre de masse de l'extrait protéique est réa lisé sur un Microflex™ LT (Bruker). 4. La méthode d'acquisition des spectres comprend les étapes et caractéristiques suivantes :

- introduire la plaque (cible Microflex modèle de référence 224989 dénommé MSP 96) contenant les dépôts dans le spectromètre de masse Microflex LT, - démarrer l'ordinateur associé au spectromètre pour lancer les analyses, et

- lancer l'acquisition des spectres de masse MALDI-TOF.

Les paramètres appliqués au spectromètre de masse sont les suivants :

- mode linéaire positif, Electrode IS1 : 20,00 kV, Electrode IS2 : 18,05 kV, Electrode de focalisation : 6 kV, Fréquence du laser : 60Hz, Gain du détecteur : 8,8 X, Post-ion-extraction (PIE) : 120 ns, Gamme de masse : de 700 à 20000 Da . Les spectres sont obtenus via une méthode automatique contrôlée par le logiciel FLEXCONTROL® du fabricant BRUKER DALTONICS® les paramètres sont les suivants pour chaque spot :

- nombres séries de 40 tirs: 6 sur des positions différentes du spot (6x40 = 240 spectres), - afin que les tirs aient balayé l'ensemble de l'échantillon de façon homogène l'acquisition se fait sur 6 positions différentes selon une géométrie hexagonale,

- pré-tirs : 10 tirs à 40% de la puissance maximum laser servent à dessaler l'échantillon (contamination par les sels minéraux), - puissance laser : 30 % à 45 % régulée via le logiciel

FLEXCONTROL®,

- sélection du spectre : sur une gamme de masse de 2000 à 20 000 Da .

L'acquisition des spectres est au final réa lisée via le logiciel BIOTYPER® du fabrica nt BRU KER DALTONICS® qui permet d'appliquer la méthode automatique décrite ci-dessus à une série d'échantillons en prenant en compte les critères mentionnés précédemment et un score de qualité ou score de validation qui représentent l'addition de 2 notes ni + n2 (ni étant fonction du nombre de pics et n2 fonction du rapport signal/bruit de fond).

- ni est la note attribuée en fonction du nombre de pics caractéristiques du spectre n, avec : ni = 0 pour n < 8, ni = 1 pour 8 < n < 27, ni = 2 pour 27 < n < 43, ni = 3 pour 43 < n < 78, ni = 4 pour 78 < n < 86, ni = 5 pour 86 < n < 110, ni = 6 pour 110 < n, et

- n2 est la note attribuée en fonction de la valeur du rapport signal/bruit (Rmax) du pic de plus grande intensité du spectre, avec n2 = 0 pour Rmax < 6,8, n2 = 1 pour 6,8 < Rmax < 26,8, n2 = 2 pour 26,8 < Rmax < 52,6, n2 = 3 pour 52,6 < Rmax < 208,6, n2 = 4 pour 208,2 < Rmax < 398,6, n2 = 5 pour 398,6 < Rmax < 1 092,2, n2 = 6 pour 1 092,2 < Rmax.

Un spectre est pris en compte si son score de validation (nl + n2) est supérieur à 2. 5. Méthode d'identification par le logiciel Biotyper

Le logiciel BIOTYPER® fourni par le fabricant du spectromètre de masse MALDI-TOF (Bruker Daltonics) permet de comparer un nouveau spectre avec les spectres moyens contenus dans la base de données. Le logiciel BIOTYPER® identifie des spectres inconnus par comparaison avec des spectres de référence stockés dans une base de données ou autre spectre comparatif par une analyse des pics qu'ils contiennent. Les résultats d'identification sont donnés sous forme de d'un score d'identification calculé comme décrit dans le manuel d'utilisation du logiciel et résumé ci-après. Dans un premier temps, les deux spectres sont alignés. On assigne une erreur acceptable pour la masse des pics de chaque spectre correspondant à 800 ppm (±1 Da) et le logiciel repositionne les deux spectres (autrement dît, si l'écart entre les pics du même spectre et entre les pics de l'autre spectre est trop différent, le logiciel ne pourra pas aligner les spectres). Ensuite, les spectres obtenus subissent le traitement suivant par le logiciel BIOTYPER® 3.0 :

- une soustraction de ligne de base, afin d'éliminer le bruit de de fonds, et - un lissage des pics par mise à 0 des intensités inférieures à un seuil donné, afin d'augmenter la résol ution, puis

- une liste de masse de pics est créée.

En résumé, le score d'identification est égal à log (indicel + incide2 + indice3), avec : - un indice i l de valeur maximale de 1000 quand l'ensemble des pics de la référence de la base de données sont trouvés dans le spectre à identifier, l'indice 1 étant de zéro si il n'y a aucune correspondance, et

- un indice i2 étant de valeur maximale de 1000, si l'ordre de classification des pics par intensité croissante du spectre à identifier est identique à l'ordre de classification des pics de la référence, et

- un indice i3 étant de valeu r maximale de 1000, si les pics non attribués du spectre à identifier ne se retrouve sur aucune référence.

Ainsi, un score d'identification compris entre 0 et 1,699 permet d'exclure l'identité du spectre de l'échantillon testé avec cel ui du spectre de référence. Un score d'identification compris entre 1,700 et 1,999 suggère que l'échantillon testé appartient ou comprend l'élément de référence et un score d'identification supérieur à 2,0 permet une identification certaine de l'échantillon testé celui du spectre de référencer présent dans la base de données.

Pour une bactérie, l'identification est la suivante :

- de 0 à 1,69 : identification non fiable - de 1,7 à 1,99.0 : identification possible, notamment du genre pour une bactérie

- de 2.0 à 3.0 : identification certaine, notamment du genre et de l'espèce pour une bactérie. Les critères ci-dessus sont pris en compte à l'aide notamment du logiciel FLEX CONT OL®, BIOTYPER® RTC développés par le fabricant de spectromètre de masse Bruker Daltonics® GmbH, Leipzig, Germany de référence mîcroflex™ LT.

Plus particulièrement encore, les pics desdits spectres sont définis par une paire de coordonnées composées d'une abscisse constituée du rapport masse/charge (m/z) de 2 000 à 20 000 Da, plus particulièrement de 3 000 à 16 000 Da, la coordonnée en ordonnée étant une intensité relative ou en unité arbitraire, et on retient de préférence dans le spectre au moins les 70 pics de plus grandes intensités. On entend ici par "intensité relative", une intensité exprimée par le rapport de (S/N = intensité du pic / intensité du bruit de fond).

6. Méthode de création de la base de données.

Chaque spectre de référence de la base de données correspond à une moyenne de 4 spectres acquis à partir de 4 dépôts d'un répl icat biologique. Pour tous les spectres réalisés, l'opérateur évalue si le nombre de pics est suffisant et si la résolution est assez correcte pour qu'ils soient utilisés comme nouvelle référence dans la base. La base est incrémentée sur le logiciel BIOTYPER®3.1 en utilisant la méthode Bio Typer MSP Création Standard Method (cf MALDI BIOTYPER® User Guide).

La gamme de masse pour l'éval uation et le traitement des spectres va de 4 000 Da à 16 000 Da afin de s'affranchir de la prise en compte des pics intenses obtenus dans les basses masses moléculaires (m/z < 4 000 Da) sur les spectres d'urines infectées (cf partie Résultats ci-après), qui diminuent considérablement le score d'identification lorsqu'ils sont confrontés aux spectres de référence.

Les spectres sont lissés selon l'algorithme Savitsky-Golay (Méthode standard du logiciel Biotyper 3.1 cf. Manuel d'utilisation du Biotyper) et normalisés par la valeur du pic le plus intense. La soustraction de ligne de base est effectuée selon la méthode Multipolygon (Méthode standard du logiciel Biotyper 3.1 cf. Manuel d'utilisation du Biotyper).

B) Résultats 1. Obtention de spectres d'extraits protéiques d'urines stériles et infectées

On a défini un spectre d'urines stériles. Le spectre présenté figure 1 correspond à une moyenne de spectres réalisés sur des extrait obtenus à partir d'urines stériles chez différents patients. Pour l'urine stérile, on obtient un spectre avec des pics d'origine cellulaire localisés dans les bas rapports m/z. Le triplet intense observé représente les a- défensines humaines 1, 2 et 3 (Kôhling et al ., Journal of Médical Microbiology (2012), 61, 339-344) .

Le tableau 1 comprend la liste des pics et la valeur de S/N pour le spectre de référence d'urine stérile selon la présente invention :

m/z S/N

2008.36 4.4

2022.56 9.5

2036.88 7.9

2052.11 9.1

2169.52 5.7

2185.03 11.0

2199.34 7.6

2331.89 3.3

3311.22 4.5

3326.09 19.4

3338.27 12.6

3354.99 30.8

3369.81 251.1

3404.41 82.3

3426.78 46.8

3440.96 288.8

3475.36 94.5

3485.26 215.8

3499.28 29.3

3510.93 57.5

3519.03 56.4

3554.69 24.3

3586.25 20.1

3611.98 15.6

3629.87 16.8

3708.74 20.0

3747.25 6.0

4670.37 3.3

5223.82 3.6

5381.71 3.3

5419.73 37.6

5655.66 3.3

5676.87 4.0

5736.94 3.1

6347.78 3.0

6387.80 3.2

6892.41 7.3

7006.09 8.8

10445.15 6.9

10835.89 52.7 On a aussi généré les spectres d'urines infectées pour les différents microorganismes impliqués dans les infections urinaires. Sur les figures 2 à 6, à titre illustratif, on montre les résultats obtenus pour les 5 bactéries les pl us fréquemment responsables d'infections urinaires. Les spectres présentés correspondent chacun à une moyenne de spectres réalisés à partir d'urines infectées par une même espèce bactérienne. Pour chaque type de bactérie analysée, les spectres à partir des colonies isolées ont également été mesurés et comparés aux spectres de la même bactérie dans les urines infectées. On observe des profils protéiques très différents selon les conditions sous lesquelles se trouve chacune des bactéries analysées. En effet, on note des discordances telles que l'apparition ou la disparition de certains pics ainsi que des changements au niveau des intensités relatives des différents pics entre les spectres des colonies isolées et les spectres des bactéries provenant des prélèvements urinaires infectés.

Les similarités entre les spectres sont mises en évidence en gris clair et les discordances en gris foncé.

Les Fig. 2A et 2B sont des spectres obtenus pour une colonie isolée d'Escherichia coli et une urine infectée par Escherichia coll. Les fig . 3A et 3B sont des spectres obtenus pour une colonie isolée de Klebsiella pneumoniae et une urine infectée par Klebsiella pneumoniae. Les Fig . 4A et 4B sont des spectres obtenus pour une colonie isolée d'Enterococcus faecalis et une urine infectée par Enterococcus faecalis. Les fig. 5A et 5B sont des spectres obtenus pour une colonie isolée de Proteus mirabilis et une urine infectée par Proteus mirabilis. Les Fig . 6A et 6B sont des spectres obtenus pour une colonie isolée de Pseudomonas aeruginosa et une urine infectée par Pseudomonas aeruginosa. 2. Détection de microorganismes en extrait protéique obtenu directement à partir du prélèvement. A. Comparaisons avec les spectres de la base de données Biotyper de spectres d'extraits protéiques obtenus à partir de colonies de bactéries.

Les discordances observées entre les spectres des extrait obtenus à partir pour une même bactérie obtenus à partir d'une colonie de la dite bactérie et à partir de l'urine infectée par cette dernière rendent difficiles l'identification du microorganisme responsable de l'infection lorsque ces spectres sont confrontés aux spectres de référence fournis dans le logiciel BIOTYPER®, qui sont réalisés à partir de bactéries isolées.

Les spectres obtenus à partir de prélèvements urinaires de patients ont d'abord été analysés avec le logiciel BIOTYPER® RTC.

Cette analyse ne permet pas de s'affranchir des pics provenant de l'urine puisque l'ensemble du spectre est évalué. Ces pics intenses, notamment ceux causés par la présence des défensines, sont alors pris en compte dans le calcul du score d'identification et diminuent sa valeur de façon notable. En outre, le niveau d'expression des protéines par la bactérie dans l'urine infectée et la même bactérie après incubation sur gélose à 37°C n'est pas le même, ce qui génère des profils différentiels entre les spectres de la même bactérie selon les conditions dans lesquelles elle se trouve. Ces différences expliquent l'incapacité à identifier les bactéries dans les urines avec la base de données BIOTYPER® dans la majorité des cas.

B. Comparaisons avec les spectres de la base de données de spectres d'extraits protéiques obtenus à partir d'urines infectées.

La création d'une base de données comprenant des spectres d'extraits protéiques obtenus à partir d'urines naturellement infectées a été réalisée. Cette base présente pl usieurs avantages :

(1) La possibilité de décaler systématiquement le cadre d'évaluation du spectre pour la comparaison à des spectres de référence afin de ne pas avoir à prendre en compte certai ns pics intenses problématiques com me ceux des défensines.

(2) La prise en compte des éléments autres que bactériens générés par l'infection, tels qu'un nombre élevé de globules blancs et de globules rouges.

Ces différents avantages permettent d'obtenir une meilleure identification des microorganismes responsables des infections avec le logiciel BIOTYPER®3.1 puisqu'on confronte alors des spectres à analyser à d'autres spectres de référence mesurés dans des conditions semblables.

Pour créer la banque de données de spectres de références à partir de prélèvements urinaires de patients infectés, on a analysé les prélèvements urinaires de patients à la fois par spectrométrie de masse de type par ALDI-TOF et pa r culture. On a ainsi réalisé systématiquement en parallèle la culture de l'urine selon le protocole de routine du laboratoire afin de pouvoir identifier le microorganisme pathogène dans chacune d'elle. Une fois le microorganisme impliqué identifié grâce à la culture et la qualité du spectre obtenu à pa rtir de l'urine infectée vérifiée, le spectre moyen de l'urine infectée est alors incrémenté dans une base de don nées spécifique des prélèvements d'urines (Base de données nommée ci-après Urinf). On a aussi analysé les spectres générés à partir des urines avec la banque de données BIOTYPER® de Bruker (spectres obtenus à partir des colonies isolées) afin de comparer les 2 banques de données. Dans un premier temps, une base préliminaire de 56 spectres moyens de références obtenues à partir d'urines infectées et correspondant chacune à un réplicat biologique, a été créée. Tableau A - Composition de la base préliminaire créée de références

Les prélèvements d'un groupe de 211 patients présentant tous des infections urinaires ont ensuite été analysés par MALDI-TOF à l'aide du logiciel BIOTYPER® RTC. Les spectres obtenus ont systématiquement été comparés aux spectres de référence fournis par Bruker. Les spectres ont également été confrontés à la base de 56 références afin de comparer les identifications obtenues dans chacun des cas.

Un score d'identification supérieur à 1.99 a été pris en considération pour conclure à une bonne identification comme recommandé par Bruker.

Le tableau B ci-après présente les résultats d'identification obtenus avec les spectres de référence Biotyper® et avec les spectres de référence de la base de données comprenant 56 références provenant d'urines infectées.

La moyenne du taux d'identification d'une base à l'autre passe de 45% à 64% . Tableau B

Ensuite, la base de données Urinf a continué à être incrémentée jusqu'à 512 références obtenues à partir d'urines infectées et correspondant chacune à un réplicat biologique.

Le tableau C donne la composition de la base Urinf, qui contient 512 références.

Tableau C

Microorganismes Nombre de références

Escherichia coli 117

Klebsiella pneumoniae 62

Enterococcus faecalis 61

Proteus mirabilis 50

Pseudomonas aeruginosa 29

Enterobacter cloacae 25

Streptococcus agalactiae 18

Staphylococcus epidermidis 9

Enterobacter aerogenes 12

Staphylococcus aureus 20

Klebsiella oxytoca 19

Citrobacter koseri 14

Morganella morganii 11

Staphylococcus saprophyticus 10 Enterococcus faecium 7

Citrobacter freundii 12

Acinetobacter pittii 2

Aerococcus urinae 1

Serratia marcescens 4

Staphylococcus capitis 2

Pseudomonas putida 2

Acinetobacter nosocomialis 1

Enterobacter kobei 1

Streptococcus oralis 1

Enterococcus gallinarum 1

Gardnerella vaginalis 3

Stenotrophomonas maltophilia 3

Raoultella ornithinolytica 2

Pseudomonas mosselii 1

Hafnla alvei 2

Providencia stuartii 1

Corynebacterium amycolatum 1

Corynebacterium striatum 1

Streptococcus anginosus 1

Acinetobacter baumannii 1

Candida albicans 2

Candida glabrata 1

Staphylococcus hominis ssp hominis 1

Les spectres obtenus à partir du même groupe de 211 patients ont alors été confrontés à cette nouvelle base de 512 références, appelée base Urinf, afin de comparer les identifications obtenues dans chacun des cas. L'analyse directe par spectrométrie de masse MALDI-TOF d'extraits protéiques obtenus à partir des urines infectées et la base de données Urinf permet de réaliser le diagnostic spécifique du microorganisme en cause dans 90% des cas.

Le tableau D présente les résultats d'identification des infections urinaires obtenus avec la base Biotyper®, la base préliminaire d'urines infectées comprenant 56 références et la base plus complète de 512 références (Base Urinf). Tableau D

Dans ce travail, pour les prélèvements urinaires infectés, les bactéries étaient présentes dans des concentrations variables de 10 ⁴ à 10 ⁷ /ml, la base Urinf contenait des spectres obtenus avec des urines contenant des taux de globules blanc et/ou globules rouges variables. La présence de prélèvements urinaires avec au moins ou plus de 10 globules blancs et/ou globules rouges par pl n'a pas empêché l'identification bactérienne. Et, même, pour les patients ne présentant que très peu de globules rouges et de globules blancs (< 10 / μΙ) dans leurs urines, l'identification bactérienne n'a pas été affectée. On avait donc toujours :

- un premier groupe de prélèvements d'urines contenant pas plus de 10 globules blancs et/ou de globules rouges /μΙ correspondant aux patients avec une i nfection urinaire et une faible réponse inflammatoire locale, et

- un deuxième groupe de prélèvements d'urines contenant pl us de 10 globules blancs et/ou de globules rouge /μΙ, correspondant aux patients avec une i nfection urinaire et une réponse inflammatoire locale élevée.

Sur les Figures 7A et 7B on compare des spectres d'urines infectées par E. coli avec des différences quantitatives en globules blancs et globules rouges. Le spectre de la figure 7A a été réalisé à partir de prélèvement d'urines contenant 6 globules blancs par μΙ et 4 globules rouges par μΙ . Le spectre de la figure 7B a été réalisé à partir de prélèvement d'urines contenant 7957 globules blancs par μΙ et 24734 globules rouges par pl . Des pics discriminants d'E. co// sont indiqués par les valeurs m/z et les flèches. Les différences entre les spectres sont mises en évidence par les rectangles gris.

Le tableau 2 ci-après reprend la liste de 10 pics discriminants et la valeur de S/N pour le spectre d'urine infectée par E. coli dans les différents groupes de prélèvements :

Le tableau 3 ci-après reprend la liste de 10 pics discriminants et la valeur de S/N pour le spectre d'urine infectée par K. pneumoniae dans les différents groupes de prélèvements :

Le tableau 4 ci-après reprend la liste de 10 pics discriminants et la valeur de S/N pour le spectre d'urine infectée par E. faecalis dans les différents groupes de prélèvements : m/z S/N

4414.96 34.9

4429.75 14.7

4443.81 29.2

4767.53 52.2

6705.98 66.2

6722.99 12.1

7337.20 14.1

8832.96 17.5

8887.75 41.7

9534.19 83.4

Le tableau 5 ci-après reprend la liste de 10 pics discriminants et la valeur de S/N pour le spectre d'urine infectée par P. mirabilis dans les différents groupes de prélèvements :

Le tableau 6 ci-après reprend la liste de 10 pics discriminants et la valeur de S/N pour le spectre d'u rine infectée par P. aeruginosa dans les différents groupes de prélèvements :

m/z S/N

4436.62 12.6

4545.92 10.4

5212.32 5.4

5421.64 9.6

6049.26 13.3

6350.33 12.9

6640.83 5.4

7206.22 10.5

9091.90 25.3

10841.01 20.4 Le tableau 7 ci-après reprend la liste de 10 pics discri minants et la valeur de S/N pour le spectre d'urine infectée par C. koseri dans les différents groupes de prélèvements :

Le tableau 8 ci-après reprend la liste de 10 pics discriminants et la valeur de S/N pour le spectre d'urine infectée par E. aerogenes da ns les différents groupes de prélèvements :

Le tableau 9 ci-après reprend la liste de 10 pics discriminants et la valeur de S/N pour le spectre d'urine infectée par E. cloacae dans les différents groupes de prélèvements :

9142.46 11.0

5152.86 5.3

6462.65 3.1

Le tableau 10 ci-après reprend la liste de 10 pics discriminants et la valeur de S/N pour le spectre d'urine infectée par E. faecium dans les différents groupes de prélèvements :

Le tableau 11 ci-après reprend la liste de 10 pics discriminants et la valeur de S/N pour le spectre d'urine infectée par K. oxytoca dans les différents groupes de prélèvements :

Le tableau 12 ci-après reprend la liste de 10 pics discriminants et la valeur de S/N pour le spectre d'urine infectée par M. morganii dans les différents groupes de prélèvements ;

4745.13 4.4

5138.48 7.3

6746.57 10.4

7276.36 12.8

9282.83 5.2

9466.05 31.3

10274.90 8.4

Le tableau 13 ci-après reprend la liste de 10 pics discriminants et la valeur de S/N pour le spectre d'urine infectée par S, aureus dans les différents groupes de prélèvements :

Le tableau 14 ci-après reprend la liste de 5 pics discriminants et la valeur de S/N pour le spectre d'urine infectée par S. saprophytlcus dans les différents groupes de prélèvements :

Le tableau 15 ci-après reprend la liste de 10 pics discriminants et la valeur de S/N pour le spectre d'urine infectée par S. agalactiae dans les différents groupes de prélèvements :

6733.69 30.8

6811.08 40.9

6842.29 17.7

6938.25 44.6

8199.11 32.2

9457.24 3.7

La base de spectres d'urines (« base Urinf ») a été complétée régulièrement et compte à ce jour 1000 spectres de références réalisés à partir de 1000 échantillons d'urines comprenant 40 espèces de bactéries différentes. Cette base sera encore enrichie graduel lement à l'avenir. La composition de la base actuelle est donnée dans le tableau E.

Tableau E

Microorganismes Nombre de références

Escherichia coli 152

Klebsiella pneumoniae 80

Enteroœccus faecalis 85

Proteus mirabilis 95

Pseudomonas aeruginosa 76

Enterobacter cloacae 80

Streptococcus agalactiae 43

Staphylococcus epidermidis 30

Enterobacter aerogenes 36

Staphylococcus aureus 44

Klebsiella oxytoca 31

Citrobacter koseri 44

Morganella morganii 24

Staphylococcus saprophyticus 37

Enterococcus faecium 29

Citrobacter freundii 20

Serratia marcescens 15

Gardnerella vaginal/s 6

Stenotrophomonas maltophilia 4

Staphylococcus capitis 2

Staphylococcus hominis 3

Staphylococcus haemolyticus 4

Pseudomonas putida 3

Pseudomonas mosselii 1

Pseudomonas plecoglossicida 1 Streptococcus oralis 4

Streptococcus anginosus 2

Streptococcus mitis 2

Streptococcus pneumoniae 1

Aerococcus urinae 3

Proteus vulgaris 5

Acinetobacter pittii 4

Acinetobacter nosocomialis 1

Acinetobacter baumannii 3

Hafnia alvei 4

Providencia stuartli 4

Providencia rettgeri 1

Corynebacterium amycolatum 1

Corynebacterium striatum 1

Corynebacterium tuberculostearicum 1

Enterococcus gallinarum 2

Enterobacter asburiae 2

Enterobacter kobei 3

Enterobacter ludwigii 1

Raoultella ornithinolytica 3

Citrobacter amalonaticus 3

Citrobacter braakii 1

Candida albicans 2

Candida glabrata 1

Les résultats obtenus par la création d'une banque de données spécifiques d'urines infectées nous permettent de :

- Détecter sans étape d'isolement la présence de microorganismes dans les prélèvements de patients tels que les urines avec une excellente sensibilité ; et

- Identifier le microorganisme en cause.