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SHI ZHUFENG (CN)
CN103175810A | 2013-06-26 | |||
CN102735660A | 2012-10-17 | |||
JP2004037215A | 2004-02-05 |
1、一种观测融合蛋白长距离转运至水稻叶芽的方法, 其特征在于, 该方法 采用 GFP融合蛋白处理水稻根尖, 处理过根尖的水稻植株叶芽进行冷冻切片, 切片后 PI荧光染料进行染色, 共聚焦显微镜直接观测 GFP融合蛋白从水稻根 尖转运至叶芽。 2、如权利要求 1所述的观测融合蛋白长距离转运至水稻叶芽的方法,其特 征在于, 该方法的具体步骤是: 步骤一、 5.0mg/ml的 GFP融合蛋白处理种子发芽至 14天的水稻幼嫩植株 的根尖 0.5cm处 24h, 灭菌水漂洗 4h, 叶芽进行冷冻切片, PI对切片进行染色, 共聚焦显微镜直接观测 GFP融合蛋白在水稻植株内的转运; 步骤二、 将稻瘟病菌效应蛋白基因表达产物于 4°C离心机离心收集菌体, 用新鲜配制的緩冲液悬浮菌体; 步骤三、 在水水浴上进行超生破碎细胞后离心收集上清。 3、如权利要求 1所述的观测融合蛋白长距离转运至水稻叶芽的方法,其特 征在于,緩沖液为 20mMTris-HCl, pH7.4; 200mM NaCl; ImMEDTA; lOmM β- 巯基乙醇。 4、如权利要求 1所述的观测融合蛋白长距离转运至水稻叶芽的方法,其特 征在于, 荧光染色的具体方法为: (1)、 将切片^固定液抽气 10min, 室温固定 1 hr; (2) 、 固定完毕后用 PEMT洗三次, 每次 lOmin; (3 ) 、 37°C条件下酶解 lhr; 酶解后 PEM沖洗三次,每次 10 min; (4) 、 用 0.1MPBS (pH7.2)溶液配制 NaBH4, 浓度为 lmg/ml, 用配制 好的 lmg/ml的 NaBH4处理水稻 4艮尖 20min; (5) 、 室温用 50mMGly封闭 30min; (6)、 加一抗, 4°C过夜, 冲洗一抗: PBS冲洗三次,每次 10 min; 加二抗 ( 1:600),37°C、 闭光条件下, 3 hr; 冲洗二抗: PBS冲洗三次,每次 10 min; 加 上抗荧光淬灭剂后, 封片。 |
本发明属于植物保护和细胞生物学领域, 尤其涉及一种观测融合蛋白长距 离转运至水稻叶芽的方法。 背景扶术
病原细菌是通过 III型分泌系统转运效应子, 其转运机制研究得较为清楚。 但对于丝状真菌来说,尽管诸如吸器等专化的 侵染结构参与了效应蛋白的转运, 但其效应蛋白是如何被转运进入寄主细胞仍然 未知。 卵菌效应蛋白都具有一个保守的基序即 RXLR, 该基序位于信号肽下游并且 参与效应蛋白在寄主细胞内的转运。 许多研究表明, RXLR基序在卵菌效应蛋白 转运 寄主细胞中起作用。 绿色荧光蛋白 (green f luorescence protein, GFP )作为基因标记已经完 全应用于微观定位和数量性状的测定, 利用原核表达技术构建效应蛋白基因与 GFP基因融合的原核表达载体, 通过化学方法诱导融合蛋白表达, 利用融合蛋 白处理水稻根尖, 将融合蛋白处理过根尖的水稻植株的叶芽进行 冷冻切片, 用 荧光染料对切片进行染色,共聚焦显微镜观测 效应蛋白在水稻植株体内的转运。 稻瘟病菌效应蛋白能在水稻根组织内的转运已 有报道, 但目前还没有关于稻瘟 病菌蛋白在水稻植株体内转运, 即从水稻根尖转运至叶芽的报道。 发明内容 本发明实施例的目的在于提供一种观测融合蛋 白长距离转运至水稻叶芽的 方法, 旨在解决现有技术不能快速、 简便、 准确的观测融合蛋白是如何长距离 转运至水稻叶芽的问题。
本发明实施例提供了一种观测融合蛋白长距离 转运至水稻叶芽的方法, 该 方法采用 GFP融合蛋白处理水稻根尖,处理过根尖的水稻 植株叶芽进行冷冻切 片, 切片后 PI荧光染料进行染色, 共聚焦显微镜直接观测 GFP融合蛋白从水 稻根尖转运至叶芽。
进一步、 该方法的具体步骤是:
步骤一、 5.0mg/ml的 GFP融合蛋白处理种子发芽至 14天的水稻幼嫩植株 的根尖 0.5cm处 24h, 灭菌水漂洗 4h, 叶芽进行冷冻切片, PI对切片进行染色, 共聚焦显微镜直接观测 GFP融合蛋白在水稻植林内的转运;
步骤二、 将稻瘟病菌效应蛋白基因表达产物于 4°C离心机离心收集菌体, 用新鲜配制的緩冲液悬浮菌体;
步骤三、 在冰水浴上进行超生破碎细胞后离心收集上清 。 进一步、其特征在于,緩沖液为 20mM Tris-HCl, pH7.4; 200mM NaCl; ImM EDTA; ΙΟιηΜ β-巯基乙醇。
进一步、 荧光染色的具体方法为:
( 1 )将切片放入固定液抽气 10min, 室温固定 1 hr;
( 2 ) 固定完毕后用 PEMT洗三次, 每次 10 min;
( 3 ) 37°C条件下酶解 lhr; 酶解后 PEM沖洗三次,每次 10 min;
( 4 )用 0.1M PBS ( pH7.2 )溶液配制 NaBH4, 浓度为 lmg/ml, 用配制好 的 img/ml的 NaBil4处理水稻 >尖 20min;
( 5 ) 室温用 50mM Gly封闭 30min;
( 6 )力。一抗, 4°C过夜, 冲洗一抗: PBS冲洗三次,每次 10 min; 加二抗 ( 1 :600 ) ,37°C、 闭光条件下, 3 hr; 沖洗二抗: PBS冲洗三次,每次 10 min; 加 上抗荧光淬灭剂后, 封片。
本发明实施例提供的观测融合蛋白长距离转运 至水稻叶芽的方法的有益效 果在于: 1、 方法简便、 准确、 快速。
2、利用 GFP融合蛋白处理水稻根尖 0.5cm处,叶芽被冷冻切片后 PI染色, 共聚焦显微镜观测 GFP融合蛋白从水稻根尖转运至叶芽, 能直接定性地了解 GFP融合蛋白在水稻植株内的长距离转运情况。
3、 GFP融合蛋白直接处理水稻根尖 0.5cm处, 共聚焦显微镜观测 GFP融 合蛋白转运至叶芽可为进一步开展效应蛋白能 引起水稻系统防御反应提供非常 强有力的证据。
4、荧光染色法处理切片,有效避免了切片易 到残留叶绿素的干扰的问题。 附图说明
图 1是本发明实施例提供的观测融合蛋白长距离 运至水稻叶芽的方法流 程图。 具体实施方式
为了使本发明的目的、 技术方案及优点更加清楚明白, 以下结合实施例, 对本发明进行进一步详细说明。 应当理解, 此处所描述的具体实施例仅仅用以 解释本发明, 并不用于限定本发明。
图 1示出了本发明提供的观测融合蛋白长距离转 至水稻叶芽的方法流 程。 为了便于说明, 仅仅示出了与本发明相关的部分。 本发明实施例提供了一种观测融合蛋白长距离 转运至水稻叶芽的方法, 该 方法采用 GFP融合蛋白处理水稻根尖,处理过根尖的水稻 植株叶芽进行冷冻切 片, 切片后 PI荧光染料进行染色, 共聚焦显微镜直接观测 GFP融合蛋白从水 稻才艮尖转运至叶芽。
作为本发明实施例的一优化方案, 该方法的具体步骤是:
步骤一、 5.0mg/ml的 GFP融合蛋白处理种子发芽至 14天的水稻幼嫩植株 的根尖 0.5cm处 24h, 灭菌水漂洗 4h, 叶芽进行冷冻切片, PI对切片进行染色, 共聚焦显微镜直接观测 GFP融合蛋白在水稻植株内的转运;
步骤二、 将稻瘟病菌效应蛋白基因表达产物于 4°C离心机离心收集菌体, 用新鲜配制的緩冲液悬浮菌体;
步骤三、 在冰水浴上进行超生破碎细胞后离心收集上清 。 作为本发明实施例的一优化方案,緩沖液为 20mM Tris-HCl, pH7.4; 200mM NaCl; ImMEDTA; ΙΟπιΜβ-巯基乙醇。
作为本发明实施例的一优化方案, 荧光染色的具体方法为:
(1)、 将切片 ^ 固定液抽气 10min, 室温固定 1 hr;
(2) 、 固定完毕后用 PEMT洗三次, 每次 lOmin;
( 3 ) 、 37°C条件下酶解 lhr; 酶解后 PEM冲洗三次,每次 10 min;
(4) 、 用 0.1MPBS (pH7.2)溶液配制 NaBH4, 浓度为 lmg/ml, 用配制 好的 lmg/ml的 NaBH4处理水稻才艮尖 20min;
(5) 、 室温用 50mMGly封闭 30min;
(6) 、 加一抗, 4°C过夜, 冲洗一抗: PBS冲洗三次,每次 10 min; 加二抗 ( 1:600),37°C、 闭光条件下, 3 hr; 沖洗二抗: PBS沖洗三次,每次 10 min; 加 上抗荧光淬灭剂后, 封片。
作为本发明实施例的一优化方案, 方法
下面结合附图及具体实施例对本发明的应用原 理作进一步描述。
实施例 1、
5. Omg/ml的 GFP融合蛋白处理种子发芽至 14天的水稻幼嫩植株的根尖 0.5cm处 24h, 灭菌水漂洗 4h, 叶芽进行冷冻切片, PI对切片进行染色, 共聚 焦显微镜直接观测 GFP融合蛋白在水稻植株内的转运。
将稻瘟病菌效应蛋白基因表达产物于 4°C离心机离心收集菌体, 用新鲜配 制的緩冲液 (20mM Tris-HCl, pH7.4; 200mM NaCl; lmM EDTA; lOm β -巯基 乙醇) 悬浮菌体。 在冰水浴上进行超生破碎细胞后离心收集上清 。 处理是将该 基因的原核表达产物纯化后按照 5. Omg/ml (含 25mMMES) 的浓度处理种子发芽 至 14天的丽江新团黑谷幼嫩植株的根尖 0. 5cm处 24h, 灭菌水漂洗 4 h, 叶芽 进行冷冻切片, PI对切片染色, 共聚焦显微镜观测 GFP融合蛋白在水稻植株内 的转运。 共聚焦显微镜观测到 GFP融合蛋白已经从水稻根尖转运到叶芽。
实施例 2、 切片荧光染色
将水稻切片放入固定液 (4%多聚甲酪 0.1% 戊二醛)抽气 lOmin,室温固定 1 hr。 固定完毕后用 PEMT(0.05% Triton x-100)洗三次, 每次 10 min。 37°C条件下 酶解 lhr PEM配制 1% 果胶酶,1.5% 纤维素酶, 0.4M甘露醇。 酶解后 PEM冲 洗三次,每次 10 min。 用 lmg/ml NaBH4 (PBS配制) 处理 20min。 室温用 50mM Gly封闭 30min。 加一抗( β-tubulin—抗 1:800, AtMAP18—抗 1 :100 ) , 4°C过 夜冲洗一抗: PBS冲洗三次,每次 10 min。 加二抗( 1 :600 ) ,37V、 闭光条件下, 3 hr。 沖洗二抗: PBS沖洗三次,每次 10 min。 加上抗荧光淬灭剂后, 封片。
以上所述仅为本发明的较佳实施例而已, 并不用以限制本发明, 凡在本发 明的精神和原则之内所作的任何修改、 等同替换和改进等, 均应包含在本发明 的保护范围之内。