L'invention concerne un procédé de préparation enzymatique d'oligodextranes utiles dans la fabrication de substituts du sucre, ainsi que de nouveaux oligodextra- nes.

Il est connu de préparer des dextranes de masse molaire élevée, supérieure au million (degré de poly éri- sation supérieur à 6000 unités glucose) par l'action de la bactérie lactique Leuconostoc mesenteroides sur du saccharose. Il est connu aussi que certaines souches de cette bactérie produisent des dextranes contenant des liaisons glucosidiques " -> 2) qui constituent les points de ramification de ces dextranes.

Il n'était pas connu, cependant, avant la présente invention, de faire la synthèse enzymatique directe d'oli¬ godextranes (dextranes d'un bas degré de polymérisation) contenant au moins une liaison glucosidique (1 -> 2) à partir de saccharose et d'un sucre accepteur des résidus glucose provenant du saccharose.

La présente invention vise justement à fournir un tel procédé.

Plus précisément, l'invention concerne un procédé de préparation d'un mélange d'oligodextranes contenant au moins une liaison glucosidique o*.(l -> 2) et contenant une proportion majeure d'oligodextranes répondant à la formule générale (0-c -D-glucopyranosyl-(l -> 2) ) _m (0-θ-D-glucopyranosyl- (1 -> 6)) _n A

où A est le résidu d'un sucre accepteur de glucose choisi parmi le maltose, l'isomaltose, l'isomaltotriose, l'< -glu¬ coside de méthyle et le glucose, m vaut de 1 à 10 et n vaut de 1 à 30, la position de la ou des liaison(s) gluco- sidique(s) o (l -> 2) étant quelconque, caractérisé en ce qu'on met en contact du saccharose et un sucre accepteur de glucose choisi dans le groupe formé par le maltose, l'isomaltose, l'isomaltotriose, l' C-glucoside de méthyle et le glucose, en présence d'enzyme glucosyltransferase extraite d'au moins une souche de la bactérie lactique Leuconostoc mesenteroides capable de produire par fermen¬ tation un dextrane contenant des liaisons glucosidiques c d -> 2) pendant 2 à 48 heures environ, dans un milieu aqueux. La position de la ou des liaison(ε) glucosidique(s) çt^ l -> 2), dans la formule précédemment indiquée, est va¬ riable en fonction, notamment, de la nature du groupe A et de la masse molaire de l'oligodextrane, qui est elle-même fonction des conditions réactionnelles. Ces liaisons peu- vent, par exemple, être sur la chaîne principale, sur les ramifications ou constituer les points de ramification de l'oligodextrane.

Des exemples de souches de la bactérie lactique Leuconostoc mesenteroides qui conviennent comprennent, de façon non limitative, les suivantes : NRRL B-1299, B-1399, B-1397, B-1298, B-1396, B-1424, B-1382, B-1149 et B-523.

Certains des oligodextranes (appelés aussi parfois oligosaccharides) produits par le procédé de l'invention sont des composés nouveaux. La préparation du trisaccharide 0-θ-D-glucopyranosyl-(l -> 2)-0-CX-D-glucopyranosyl- ol& l -> 6)-D-glucose par acétolyse de dextrane NRRL B-1397 a toutefois été décrite par K. Sakakibara et coll. dans Carbohydrate Research, 2*5 (1972), pages 443-451. Egalement, Y. Mitsuishi et coll. dans Carbohydrate Research, 127 (1984), pages 331-337,ont décrit des oligo¬ saccharides ramifiés par le moyen de liaison glucosidique θ d - > 2).

L'invention concerne donc, aussi, à titre de pro¬ duits nouveaux, les oligodextranes répondant à la formule générale (0-C<-D-glucopyranosyl-(l -> 2)) _m (0- 0(-D-glucopyranόsyl- (1 - > 6)) _n A où A est le résidu d'un sucre accepteur de glucose choisi parmi le maltose, l' o(-glucoside de méthyle, m vaut de 1 à 3 et n vaut de 1 à 10, la position de la ou des liaison(ε) glu- cosidique(s) C (1 -> 2) étant quelconque.

Les oligodextranes produits par le procédé de l'invention qui contiennent une liaison glucosidique O^d -> 2) qui est située à leur extrémité non réductrice ou qui constitue un point de ramification de 1Oligodextrane, qu'ils soient nouveaux en eux-mêmes ou non, sont particu¬ lièrement résistants à l'hydrolyse enzymatique par des enzymes glucohydrolases, telles que 1'endodextranase et la glucoamylase et ceci en raison de la présence de cette liaison glucosidique rare (_(,(1 - > 2), située à leur extré- mité non réductrice ou constituant un point de ramifica¬ tion de l'oligodextrane..

Cette propriété les rend utiles comme agents de charge ou de corps dans des substituts du sucre peu ou pas métabolisables par l'homme. Ils peuvent donc être utilisés d»ans des formulations alimentaires pauvres en calories, en mélange avec un agent édulcorant intense, tel que l'aspartame ou équivalent.

Les oligosaccharides de l'invention peuvent égale¬ ment favoriser la croissance et le développement de cer- tains microorganismes bénéfiques de la flore intestinale. Cette propriété peut les rendre utiles aussi bien comme additifs pour l'alimentation animale (additifs d'intérêt zootechnique) que pour l'alimentation humaine (diététique et nutrition) . L'invention concerne donc, en outre, l'utilisation d'un mélange d'oligodextranes contenant au moins une liai¬ son glucosidique θ (l -> 2) située à leur extrémité non réductrice ou constituant un point de ramification de

1'oligodextrane, qui contiennent une proportion majeure d'oligodextranes répondant à la formule générale 0-0<.-D-glucopyr.anosyl-(l -> 2) _m (0- ^, X-D-glucopyranosyl- (1 -> 6)) _n A où A est le résidu d'un sucre accepteur de glucose choisi parmi le maltose, l'isomaltose, l'isomaltotriose, l' o-glu- coside de méthyle et le glucose, m vaut de 1 à 10 et n vaut de 1 à 30, la position de la ou des liaison(s) glucosidique(s)C (1 -> 2) étant quelconque, comme agents de charge dans des substituts du sucre ou comme additifs alimentaires.

Comme indiqué ci-dessus, la réaction de synthèse enzymatique est mise en oeuvre en présence d'enzyme gluco¬ syltransferase (E.C:2.4.1.5) extraite de souches de la bactérie Leuconostoc mesenteroides capables de produire par fermentation un dextrane contenant des liaisons gluco- sidiques (^ 1 -> 2). Cette réaction peut être représentée par l'équation globale : glucosyltransferase saccharose + sucre accepteur > oligodextr nes + fruc¬ tose

Des souches qui conviennent, entre autres, sont les souches NRRL B-1299, B-1399, B-1397, B-1298, B-1396, B-1424, B-1382, B-1149 et B-523. Ces souches sont disponi- blés auprès du N.R.R.C- (Northern Régional Research Center) dont l'adresse est la suivante : Agricultural Research Service, U.S. Department of Agriculture, 1815 North University Street, Peoria, Illinois 61604, USA. Elles ont été caractérisées au début des années 1950 à partir d'une sélection de microorganismes isolés du sol. Elles ont été répertoriées, parmi d'autres, dans la publi¬ cation suivante s

"Characterization and classification of dextrans from ninety-six strains of bacteria", A. Jeanes et al. (1954), J. Amer. Chem. Soc. 76,

5041-5052.

Il va de soi que, au lieu des souches précitées, on pourrait aussi utiliser des souches dérivant de celles-ci

et obtenues par mutagénèse de façon classique, c'est-à-dire par irradiation des souches ou action d'un agent chimique sur lesdites souches, puis culture des individus survi¬ vants, ou obtenues par sélection de mutants naturels. Aux fins de l'invention, ces souches mutantes sont consi¬ dérées comme équivalentes aux souches précitées.

La glucosyltransferase peut être obtenue en culti¬ vant une souche appropriée de la bactérie lactique Leuconostoc mesenteroides, comme la souche NRRL B-1299, sur un milieu nutritif approprié contenant en particulier du saccharose de façon à induire la production de la glu¬ cosyltransferase. Après croissance de la bactérie, l'acti¬ vité enzymatique est extraite par addition de polyéthylè¬ neglycol de façon à précipiter et concentrer les différen¬ tes formes de la glucolsyltransférase : extracellulaire, liée aux cellules et aux polysaccharides insolubles, et intracellulaire. Cette préparation enzymatique contient donc les cellules entières de L. mesenteroides B-1299. Des techniques connues de cassage des cellules peuvent être utilisées à la fin de la culture pour augmenter l'activité enzymatique, d'une part, et détruire les cellu¬ les, d'autre part (broyage mécanique, emploi d'agents chimiques ou enzymatiques (lysozyme,... ) . Toutefois, cette opération n'est pas strictement nécessaire. L'extraction de l'activité enzymatique par le polyéthylèneglycol est réalisée une seconde fois après avoir redissous le premier précipité (obtenu après la première extraction), par exemple, à l'aide d'un tampon acétate de sodium 20 M, pH 5,4 contenant du chlorure de calcium 0,02 g/1. Le deu¬ xième précipité contient tout l'activité enzymatique. Il peut être lyophilisé ou congelé sous forme concentrée sans perte d'activité. D'autres techniques de purification peuvent être utilisées comme la centrifugation, l'ultra- filtration ou un procédé chromatographique.

La synthèse enzymatique d'oligodextranes est réa¬ lisée à l'aide de cette préparation enzymatique ou d'une fraction de cette préparation correspondant à une certaine forme de l'enzyme (enzyme intracellulaire, après cassage

des cellules, enzyme extracellulaire liée à des polymères insolubles, enzyme extracellulaire soluble) en présence de saccharose qui constitue le substrat de la réaction et d'un sucre connu pour être accepteur de glucose, comme le maltose (ou une matière riche en maltose comme un hy- drolysat d'amidon) , l'isomaltose, l'^-glucoside de méthy¬ le, l'isomaltotriose , le glucose (ou une matière riche en glucose comme un hydrolysat d'amidon).

A titre indicatif, la réaction peut être effectuée entre 5 et 45°C, préférentielle ent entre 20 et 30°C envi¬ ron. Le pH de la réaction est compris entre 4,5 et 7, de préférence entre 5 et 6. La durée de la réaction est habi¬ tuellement comprise entre 2 et 48 heures environ ; elle est fonction de la concentration d'enzyme dans le milieu de synthèse. De préférence, la concentration d'enzyme est de 0,20 à 1 U/ml mais pourrait être plus élevée, si dési¬ ré. 1 unité enzymatique (U) est définie comme la quantité d'enzyme nécessaire pour produire 1 micromole de fructose par minute dans les conditions standard suivantes de la mesure d'activité :

- saccharose : 100 g/1

- tampon acétate de sodium 20 M, pH 5,2

- 30°C

Les proportions de saccharose et de sucre accepteur de glucose ne sont pas très critiques. A titre indicatif, on peut employer une concentration de saccharose allant de 20 à 600 g/1 et une concentration de sucre accepteur de glucose allant de 10 à 300 g/1. Les rendements de syn¬ thèse des oligodextranes les plus élevés sont obtenus lorsque le rapport de la concentration de saccharose, exprimée en g/1, à la concentration de l'accepteur, expri¬ mée en g/1, est compris entre 0,5 et 10, de préférence entre 2 et 4.

L'enzyme peut être utilisée soit sous forme libre (procédé discontinu) soit incluse à l'intérieur d'un gel réticulé (gel d'alginate de calcium, par exemple) ou fixée de manière covalente sur un support insoluble. Si l'enzyme est immobilisée, elle peut alors être utilisée dans un

réacteur approprié (réacteur à lit fixe, lit fluidisé, etc..) pour la production continue des oligodextranes.

Après action de l'enzyme, le milieu réactionnel peut être analysé par une méthode de chromâtographie li- quide à haute performance (HPLC) en phase inverse de sépa¬ ration des oligodextranes (par exemple la colonne micro- Bondapack C18 de Millipore-Waters) , l'élution étant réali¬ sée avec de l'eau ultrapure ou un mélange eau/méthanol (% de méthanol compris entre 0 et 6% (v/v)). Cette méthode quantitative permet de séparer tous les oligodextranes de degré de polymérisation compris entre 2 et 20 environ.

Le dosage des sucres réducteurs produits au cours de la réaction peut être réalisé avec le réactif D.N.S. (dinitrosalicylate de sodium en milieu alcalin). Le mélange réactionnel obtenu comprend des oligo¬ dextranes contenant au moins une liaison glucosidique oil l -> 2), des oligodextranes ne comprenant pas une telle liaison, du fructose et du sucre accepteur de glucose inaltéré. Les oligodextranes à liaison glucosidique c ( l -> 2) peuvent constituer de 30 à 55% environ des oli¬ godextranes totaux.

Suivant la masse molaire des oligodextranes re¬ cherchée, le procédé de synthèse et purification peut être adapté. En particulier, la masse molaire moyenne des oligodextranes dépend du rapport saccharose/accepteur dans le milieu de synthèse, étant d'autant plus élevée que ce rapport est plus grand. Après synthèse, le fructose peut être conservé dans le milieu réactionnel ou séparé, par une technique chromatographique d'échange d'ions.

Egalement, il faut noter que certains additifs peuvent être ajoutés au milieu de synthèse dans le but d'augmenter la proportion des oligodextranes contenant une liaison σ(l -> 2), comme certains solvants miscibles à l'eau tels que des polyéthers comme le monoglyme, le diglyme, etc., ainsi que certains sels tels que le chlorure de magnésium, le chlorure de calcium, etc...

Avantageusement, si l'on désire éliminer les oli¬ godextranes ne contenant pas de liaison glucosidique © d -> 2) du milieu réactionnel, on peut soumettre ce dernier à l'action d'hydrolases comme la glucoa ylase d'Aspergillus niger et/ou l'endodextranase de Pénicillium sp. , afin d'opérer l'hydrolyse totale des oligodextranes ne contenant pas de liaison c(l -> 2). Par contre, les oligodextranes contenant une liaison o^l -> 2), notamment ceux d'un degré de polymérisation de 4, 5, 6 et 7 (en abrégé D.P. 4, D.P.5, D.P.6 et D.P.7) résistent à l'hydro¬ lyse. Après action des hydrolases, le milieu réactionnel contient du glucose, du fructose et les oligodextranes contenant une ou plusieurs liaisons cM l -> 2). Le glucose et le fructose peuvent être séparés, si désiré, des oligo- dextranes par chromatographie, par exemple à l'aide d'une résine échangeuse cationique sous forme calcium. Les frac¬ tions contenant les oligodextranes sont concentrées sous pression réduite, déminéralisées, filtrées sur charbon actif, puis εéchées par lyophilisation ou par ato isation. Le produit final a l'aspect d'une poudre blanche très so- luble dans l'eau (solubilité : 70%, p/p) non sucrée, de pH neutre, et _. contient 95% en poids ou plus d'oligodextranes contenant une ou plusieurs liaisons glucosidiques oUl -> 2). Les exemples non limitatifs suivants sont donnés en vue d'illustrer davantage la présente invention.

EXEMPLE 1

(a) Production et purification de la glucosyl¬ transferase de L. Mesenteroides B-1299 La souche de L. mesenteroides B-1299 est conservée sous forme lyophilisée ou congelée en présence de glycérol à 10% (v/v).

Elle est cultivée dans le milieu de culture suivant (milieu standard) : - saccharose : 40 g/1

- extrait de levure : 20 g/1

- phosphate dipotassique : 20 g/1 (ajouté sous forme d'une solution dont le pH avait été ajusté à 6,9 à l'aide d'acide orthophosphorique pur) - sulfate de magnésium, 7H 0 : 0,2 g/1

- sulfate de manganèse, H 0 : 0,01 g/1

- chlorure de calcium, 2H 0 : 0,02 g/1

- chlorure de sodium : 0,01 g/1

- sulfate de fer, 7H 0 : 0,01 g/1 Le pH du milieu de culture est égal à 6,9. Le milieu de culture et la solution de phosphate monopotassi¬ que ont été préalablement stérilisés par la chaleur (121°C, 20 minutes). Si le pH n'est pas régulé durant la culture, le milieu s'acidifie au fur et à mesure de la croissance de la bactérie. En fin de culture, le pH peut atteindre 4,5. Il est préférable de réguler le pH à une valeur plus éle¬ vée, comprise entre 5 et 6,5. La régulation du pH s'effec¬ tue à l'aide de soude 2N ou d'une solution alcaline de saccharose (saccharose 400 g/1 ; soude 2N) . Cette dernière solution est avantageuse car elle permet d'augmenter légè¬ rement la densité cellulaire de la culture et la produc¬ tion d'enzyme.

Des additifs, tels que le maltose (20 g/1) et l'agent terisio-actif ween^ (1%) favorisent l'excrétion de l'enzyme dans le milieu extracellulaire sous une forme soluble.

Le tableau 1 ci-après récapitule les résultats de trois essais de culture effectués dans diverses conditions.

TABLEAU 1

Activité Activité Concentration

CONDITIONS enzymatique extracellulaire d'insolubles Activité DE CULTURE totale, soluble, (cellules + in.soluble> U/ml U/ml polysaccharides), g/ml U/mg

essai 1 ; Erlenroeyer pas de régulation de pH 3,5 0,35 7,9 0,4 milieu standard

essai 2 ; Fermenteur 2 litres milieu standard + maltose (20 g/1) + 2,75 0,6 4,3 0,5 o

TYιeen ® ( 1%) » pas de régulation du pH

essai 3 : Fermenteur 2 litres milieu standard •f maltose (20 g/1) +

Tween® (1%) 4,0 0,6 8,4 0,4

+ régulation du pH à 5,6 par addition de saccharose alcalin (saccharose 400 g/1 soude 2N )

La température du milieu de culture est de 27°C. L'agitation est de 500 rp et l'aération égale à 1 wm. Après 6h 30 de culture, la concentration d'enzyme dans le milieu de culture de l'essai 3 est de 4 U/ml, dont 0,6 U/ml de forme enzymatique soluble et extracellu¬ laire. 85% de la glucosyltransferase est associée aux cellules et/ou aux polysaccharides sous forme d'agrégats insolubles.

Après croissance, les différentes formes de l'enzyme sont extraites du milieu de culture par précipi¬ tation en présence de polyéthylèneglycol de faible masse molaire (PEG 1500). Toute l'activité enzymatique précipite en même temps que le polysaccharide produit par la bactérie et les cellules, lorsque la concentration de PEG 1500 atteint 20% (p/v).

La fraction précipitée est centrifugée (10 minutes, 10 000 g) ou récupérée après sédimentation (12 heures, 4°C, en présence d'un agent bactériostatique tel que le sulfite de sodium à lg/litre ou le benzoate de sodium à 2g/litre). Après deux extractions successives par le po¬ lyéthylèneglycol, la préparation enzymatique est lyophili¬ sée. Le rendement d'extraction de l'enzyme est voisin de 100%.

(b) Synthèse enzymatique d'oligodextranes avec la glucosyltransferase soluble et insoluble de L. mesenteroides B-1299 La synthèse est réalisée dans les conditions suivantes

- saccharose : 100 g/1

- maltose i 50 g/1 - température : 30°C

- tampon acétate de sodium 20 mM, pH 5,2

- azoture de sodium : 0,5 %o (bactéricide)

- concentration d'enzyme s 0,3 U/ml

Après 20 heures de réaction, l'enzyme est inactivée par la chaleur (30 mn, 80°C) puis les oligodextranes sont analysés par la méthode HPLC précédemment décrite. Les résultats sont rassemblés dans le tableau 2 .

Tableau 2 : Composition du milieu réactionnel après action de la glucosyltransferase soluble et insoluble de L. mesenteroides B-1299

Sucres Concentration, g/1

Fructose 52,0

Maltose 15,3

Panose (trisaccharide) 16,6 Oligodextrane de D.P. 4 14,9 Oligodextrane de D.P. 4 contenant une liaison D^l -> 2) 5,3

Oligodextrane de D.P. 5 7,0 Oligodextrane de D.P. 5 contenant une liaison (1 -> 2) 18,0 Oligodextrane de D.P. > 5 contenant au moins une liaison o(l -> 2) 5,9

Rendement en oligodextranes contenant une liaison o(l -> 2)* 30%

Rendement de la réaction d'accepteur ** 84%

Les rendements sont exprimés de la manière suivante s <*> (oligodextranes sUl -> 2)), g/1 0,474 x (saccharose) + (maltose), g/1

(**) (oligodextranes totaux) , g/1

0,474 x (saccharose) + (accepteur initial-accepteur rési¬ duel), g/1 (c) Synthèse enzymatique d'oligodextranes avec la gluco¬ syltransferase soluble et insoluble de L. mesenteroides B-1299 en présence d'additifs Trois synthèses 1, 2 et 3 ont été réalisées dans les conditions communes suivantes : - saccharose : 100 g/1

- maltose : 33 g/1

- tampon acétate de sodium 20 mM, pH 5,2

- azoture de sodium : 0,5°/ ₀₀

- concentration d'enzyme : 1 U/ml

- température : 30°C mais avec les différences suivantes :

* synthèse 1 s durée d'incubation : 6 heures (sans additif)

* synthèse 2 J durée d'incubation : 23 heures, en présence de magnésium 500 mM et de chlorure de calcium 5 mM

* synthèse 3 : durée d'incubation : 23 heures, en présence de chlorure de calcium 300 mM.

Après le temps d'incubation indiqué, l'enzyme est inactivée par la chaleur (30 mn, 80°C) puis les oligo¬ dextranes sont analysés par la méthode HPLC précédemment décrite. Les résultats sont rassemblés dans le tableau

3 -

La vitesse de la réaction enzymatique est fortement ralentie en présence de concentrations élevées de sels (chlorure de calcium et chlorure de magnésium). Toutefois, on constate une forte augmentation de la population d'oli¬ godextranes contenant au moins une liaison c<(l -> 2) par rapport à la synthèse témoin (effectuée sans additif). Tableau : Composition du milieu réactionnel après action de la glucosyltransferase soluble et insoluble de L. mesenteroides B-1299 en présence d'additifs

S nthèse 1 Synthèse 2 S nthèse 3

Rendement en oligodextranes contenant une liaison 22% 47% 41% o ^* \(l -> 2)

Rendement de la réaction d'accepteur 52% 75% 61%

EXEMPLE 2

Synthèse d'oligodextranes avec la glucosyltransferase soluble de L. mesenteroides B-1299 Après centrifugation du milieu de culture pour éliminer les cellules et les polymères insolubles (10.000 g, 20 mn) , le surnageant est soumis à une extraction liquide- liquide par le polyéthylèneglycol 1.500 selon le procédé décrit dans l'exemple 1. Le rendement d'extraction de la glucosyltransferase est supérieur à 85%. Cette opération a été effectuée deux fois. L'enzyme est alors congelée ou lyophilisée dans du tampon acétate de sodium 20 mM, pH 5,2.

La synthèse est réalisée dans les conditions sui- vantes :

- saccharose : 100 g/1

- maltose : 50 g/1

- température : 30°C

- tampon acétate de sodium 20 mM, pH 5,2 - concentration d'enzyme : 0,5 U/ml

- durée de la réaction J 4 heures.

Après consommation totale du saccharose par la glucosyltransferase, l'enzyme est dénaturée par la chaleur (30 minutes, 80°C) . L'analyse des oligodextranes présents dans le milieu réactionnel est réalisée par la méthode HPLC précédemment décrite. Les résultats sont exprimés dans le tableau 4.

Tableau A. ; Composition du milieu réactionnel après action de la glucosyltransferase soluble de L. mesenteroides B-1299

Sucres Concentration g/1

Fructose 50,5

Maltose 11,6

Panose 17,4 Oligodextrane de D.P. 4 19,0

Oligodextrane de D.P. 4 contenant

3,1 une liaison od -> 2)

Oligodextrane de D.P. 5 9,9

Oligodextran une liaison

Oligodextranes de D.P. > 5 contenant au moins une liaison glucosidique 13,6

C<(1 -> 2)

Rendement en oligodextranes contenant au moins une liaison 36%

⁽ (l -> 2)

Rendement de la réaction d'accepteur 95%

Les rendements ne prennent pas en compte les oligodextra¬ nes de D.P. supérieur ou égal à 7, qui n'apparaissent pas sur les chromatogrammes obtenus par cette méthode. EXEMPLE 3

Synthèse d'oligodextranes avec la glucosyltransferase insoluble de L. mesenteroides B-1299

Le milieu de culture est centrifugé (20 mn, 10.000 g, 4°C) puis le culot de centrifugation est lavé plusieurs fois à l'aide de tampon acétate de sodium 20 M pH 5,2.

La solution est alors lyophilisée de façon à éviter toute prolifération microbienne.

La synthèse d'oligodextranes est réalisée dans les conditions suivantes :

- saccharose : 100 g/1

- maltose : 50 g/1

- température : 30°C

- tampon acétate de sodium 20 mM, pH 5,2

- azoture de sodium : 0,5 °/oo - concentration d'enzyme : 0,9 U/ml

Après 8 heures d'incubation, le saccharose est totalement consommé. Le Tableau 5 résume la composition des oligo¬ dextranes du milieu de synthèse.

Tableau 5 : Composition du milieu réactionnel après action de la glucosyltrans erase insoluble (associée aux cellules) de L. mesenteroides B-1299

Sucres Concentration, g/1

Fructose 51,2

Maltose 22,0

Panose 12,8

Oligodextranes de D.P. 4 9,6 Oligodextranes de D.P. 4 contenant une liaisonO (l -> 2) 5,7

Oligodextranes de D.P. 5 3,7 Oligodextranes de D.P. 5 contenant une liaison { 1 -> 2) 13,9 Oligodextranes de D.P. > 5 contenant au moins une liaison 0<((1 -> 2) 3,7

Rendement en oligodextranes contenant au moins une liaison ^1 -> 2) 24%

Rendement de la réaction d'accepteur 65%

EXEMPLE 4

Influence de la concentration de la glucosyltransferase soluble de L. mesenteroides B-1299 sur la synthèse d' oligodextranes Conditions expérimentales :

_ saccharose ; 100 g/1

- maltose : 50 g/1

- tampon acétate de sodium 20 mM, pH 5,2

- température : 30°C

Trois concentrations d'enzyme ont été utilisées : . 0,17, 0,5 et 2 U/ml. Après consommation totale du sac¬ charose, les 3 milieux réactionnels sont analysés. Les

5 résultats sont identiques pour les trois synthèses aussi bien en ce qui concerne le rendement de la réaction d'accepteur que le rendement en oligodextranes contenant au moins une liaison σ* _\ (l -> 2). EXEMPLE 5

^{' ~} Influence du pH sur la synthèse enzymatique d'oligodextranes Conditions expérimentales :

- saccharose : 100 g/1

- maltose : 50 g/1 ¹⁵ - température : 30°C

- concentration d'enzyme : lU/ml

- tampon citrate phosphate de sodium 30 mM

Trois pHs ont été testés : 5,2, 6,0 et 6,4. L'activité de l'enzyme soluble et insoluble baisse légère- 0 ment lorsque le pH est supérieur à 6,0. Toutefois,, on n'observe pas de différence significative due à la valeur du pH en ce qui concerne la composition en oligodextranes du milieu réactionnel.

EXEMPLE 6 5 Synthèse d'oligodextranes en présence d'un mélange d'isomaltose et d'isomaltotriose comme accepteur avec la glucosyltransferase insoluble de L. mesenteroides B-1299 Conditions expérimentales : 0 - saccharose : 100 g/1

- accepteur : 50 g/1 composition de l'accepteur : isomaltose : 59% isomaltotriose : 36% 5 glucose : 5%

- température : 30°C

- azoture de sodium Î 0,5°/oo

- tampon acétate de sodium 20 mM, pH 5,2

- concentration d'enzyme : 1 U/ml

Après consommation du saccharose, l'analyse du milieu réactionnel est effectuée à l'aide de la méthode HPLC précédemment décrite (Tableau 6). Tableau 6 : Composition du milieu réactionnel après action de la glucosyltransferase insoluble de L. mesenteroides B-1299

Sucres Concentration, g/1

Fructose 53,0

Isomaltose 15,0

Isomaltotriose 6,1

Oligodextranes de D.P. 4 contenant 10,4 une liaison (l -> 2) Isomaltotetraose 2,4

Oligodextranes de D.P. 5 contenant une liaison θt(l -> 2) 9,4

Rendement en oligodextranes contenant au moins une liaison c«l -> 2)

Rendement de la réaction d'accepteur 29,0%

EXEMPLE 7

Synthèse d'oligodextranes en présence d' c -glucoside de méthyle avec la glucosyltransferase de L. mesenteroides B-1299 Conditions expérimentales :

- saccharose : 100 g/1

- < -glucoside de méthyle : 50 g/1 - autres conditions : voir exemple 6.

Après consommation du saccharose, l'analyse HPLC du milieu réactionnel fournit les résultats suivants (Tableau 7) .

Tableau 7 : Composition du milieu réactionnel après action de la glucosyltransferase insoluble de L. mesenteroides B-1299 Sucres Concentration, g/1

Fructose 53,0

C-^-glucoside de méthyle 34,0

Isomaltoside de méthyle 4,8 Oligodextranes éthylés contenant une liaison 0 (1 -> 2) 9,3

Iεomaltotrioside de méthyle 1,4

Isomaltotetraoside de méthyle 0,8

Rendement en oligodextranes contenant au moins une liaison (X(l -> 2) 10%

Rendement de la réaction d'accepteur 26%

EXEMPLE 8 Synthèse enzymatique d'oligodextranes en présence de concentrations variables de saccharose avec la glucosyltransferase soluble et insoluble de L. mesenteroides B-1299 Conditions expérimentales : - température : 30°C

- tampon acétate de sodium 20 mM, pH 5,2

- azoture de sodium : 0,5°/oo

- rapport saccharoεe/maltose : 3 Synthèse 1 : - matière sèche : 20 % (p/p)

- saccharose : 15% (p/p)

- maltose : 5% (p/p)

- concentration d'enzyme : 0,6 U/ml Synthèse 2 : - matière sèche : 35% (p/p)

- saccharose : 26% (p/p)

- maltose : 9% (p/p)

- concentration d'enzyme : 1,2 U/ml

- -

Synthèse 3 :

- matière sèche Î 40 % (p/p)

- saccharose : 30% (p/p)

- maltose : 10% (p/p)

- concentration d'enzyme : 1,8 U/ml

Après 21 heures de réaction, l'enzyme est inactivée par la chaleur (30 mn, 80°C). L'analyse HPLC du milieu réactionnel est reportée dans le tableau 8.

Tableau 8 : Composition des 3 milieux de synthèse après action de la glucosyltrans erase soluble et insoluble (associée aux cellules) de L. mesenteroides B-1299

Concentration, g/1

Fructose

Maltose

Leucrose

Panose

Oligodextrane D.P.4

Oligodextrane D.P.4 contenant 1 liaison (l -> 2) Oligodextrane D.P. 5 Oligodextrane D.P. 5 contenant 1 liaison

Oligodextranes D.P. _ 5 contenant une liaison 15,1 36,6 46,2 0*\(1 -> 2) au moins

Rendement en oligodextranes contenant une liaison 39% 40,5% 38% O (l -> 2) Rendement de la réaction d'accepteur 76% 75% 70%

Le milieu de synthèse est ensuite soumis à l'action d'un mélange de glucoamylase d'A. niger (2U/ml) et d'endo- dextranase de Pénicillium sp. (17 U/ml) pendant 6 heures à 40°C. La réaction enzymatique est stoppée par chauffage à 90°C pendant 30 minutes. Le glucose et le fructose sont éliminés par chromatographie sur résine échangeuse sous forme calcium.

La concentration d'oligodextranes contenant une liaison glucosidique C* _\ (l -> 2) dans le milieu réactionnel est de 57 g/1 pour la synthèse 1, de 107 g/1 pour la syn¬ thèse 2, et de 122 g/1 pour la synthèse 3.

La répartition des oligodextranes est la suivante :

Synthèse 1 Synthèse 2 Synthèse 3 % % %

Oligodextranes de D.P.4 contenant une liaison 24 26 30

CX.U -> 2)

Oligodextranes de D.P.5 contenant une liaison 69 65 57

C (1 -> 2)

Oligodextranes de D.P.6 contenant une liaison 4 5 7

C<(1 -> 2) Oligodextranes de D.P.7 contenant une liaison 3 4 6

OUI -> 2) EXEMPLE 9

Synthèse d'oligodextranes en présence d'un sirop de glucose riche en maltose (nutriose R 725) par la glucosyltransferase soluble et insoluble de L. mesenteroides B-1299 Le nutriose R 725 est un produit de la Société Roquette Frères (Lestrem, France), qui contient une teneur élevée en maltose et maltotriose.

Composition moyenne du sirop de glucose Nutriose R 725 Î

- matière sèche : 68% (p/p)

- glucose : 1,5%

- maltose : 77 %

- maltotriose : 20%

- produits d'un D.P. _.4* : 1,5% Ce sirop de glucose a été utilisé comme accepteur dans les conditions suivantes : Synthèse 1 :

- concentration de saccharose : 100 g/1

- Nutriose R 725 : 68 g/1 - rapport saccharose/ altose : 2

- concentration d'enzyme : 0,3 U/ml

- autres conditions : voir Exemple 8 Synthèse 2 :

- concentration de saccharose : 100 g/1 - Nutriose R 725 : 42 g/1

- rapport saccharose/maltose : 3

- concentration d'enzyme : 0,3 U/ml

- autres conditions : voir Exemple 8

Après 21 heures d'incubation, le milieu réactionnel est analysé par HPLC. Les résultats sont rassemblés dans le Tableau 9.

Tableau 9 : Composition du milieu réactionnel après action de la glucosyltransferase soluble et insoluble de L. mesenteroides B-1299 Concentration, g/1

S nthèse 1 Synthèse 2 Fructose Maltose Maltotriose Panose

Oligodextrane de D.P. 4 Oligodextrane de D.P. 4 contena une liaison * (1 -> 2) Oligodextrane de D.P. 5 Oligodextrane de D.P. 5 contenant une liaison & ( 1 -> 2) 15,0 12,9

Oligodextranes de D.P. > 5 (conte¬ nant une liaison c-^l -> 2) 3,8 8,5 au moins

Rendement en oligodextranes contenant une liaison c^ ,1 -> 2) 21%. 26%

Rendement de la réaction d'accep¬ teurs 74% 60%

Le milieu de synthèse est ensuite soumis à l'action d'un mélange de glucoamylase d'A. niger (2U/ml) ^' et d'endo- dextranase de Pénicillium sp. (17 U/ml) pendant 6 heures à 40°C. La réaction enzymatique est stoppée par chauffage à 90°C pendant 30 minutes. Le glucose et le fructose sont éliminés par chromatographie sur résine échangeuse sous forme calcium.

La concentration d'oligodextranes contenant une liaison glucosidique ^(1 -> 2) dans le milieu réactionnel est de 30 g/1 pour la synthèse 1 et de 35 g/1 pour la synthèse 2.

La répartition des oligodextranes est la suivante :

Synthèse 1, Synthèse 2, % %

Oligodextranes de D.P. 4 contenant une liaison 23 23

<\(1 -> 2)

Oligodextranes de D.P. 5 contenant une liaison 72 70 o((l -> 2)

Oligodextranes de D.P. 6 contenant une liaison 3 4

C (1 -> 2)

Oligodextranes de D.P. 7 contenant une liaison 2 3

C (1 -> 2)

EXEMPLE 10

Hydrolyse, des oligodextranes par la glucoamylase

d'A. niger ou un mélange de la glucoamylase d'A. niger et de l'endodextranase de Pénicillium sp. Les différents milieux réactionnels des exemples

I à 9 contiennent des oligodextranes dont le degré de polymérisation varie avec les conditions de réaction.

II est possible d'enrichir le produit en oligodextranes contenant une liaison c(l -> 2) de D.P. 4 et 5 par action d'hydrolases qui agissent exclusivement sur les liaisons θ(^ ⁽ l -> 6) et c* _\ (l -> 4). La glucoamylase d'A. niger hydrolyse les liaisons C 1 ~> 4) et c ^' l -> 6) d'oligodextranes à partir de l'extrémité non réductrice. Son action est bloquée par la présence d'une liaison glucosidique < (l -> 2) quelle que soit sa position sur l'oligodextrane. L'endodextranase hydrolyse exclusivement les liaisons glucosidiques

OU1 -> 6) de manière endolytique sur un substrat de degré de polymérisation supérieur ou égal à 3. Toutefois, l'endodextranase n'hydrolyse pas les oligodextranes de D.P. 4 et D.P. 5 qui contiennent une liaison glucosidique ° ⁽ 1 -> 2) à. l'extrémité non réductrice. L'action conju¬ guée de ces deux enzymes permet d'obtenir un produit for¬ mé principalement de l'oligodextrane de D.P. 4 et l'oligo¬ dextrane de D.P. 5.

Le fructose libéré dans le milieu par action de la glucosyltransferase de L. mesenteroides B-1299 sur le saccharose et le glucose produit par les hydrolases peuvent être séparés simultanément par chromatographie sur résine échangeuse sous forme calcium, technique connue et largement développée industriellement pour la production de sirops à haute teneur en fructose.

Si l'on fait agir la glucoamylase d'A. niger seule, la population d'oligodextranes que l'on obtient présente un degré de polymérisation moyen plus élevé que dans le cas précédent ; en effet, l'action de la glucoamylase est stoppée à l'extrémité non réductrice de l'oligodextrane en présence d'une liaison glucosidique C (1 -> 2). Conditions d'hydrolyse :

- dilution du milieu de synthèse au l/10ème

- addition d'amyloglucosidase NOVO (300 AGU/ml) : 3 AGU/ l

- addition de dextranase L AMANO (5000 U/ml) : 17 U/ml - température : 40°C

- durée de l'hydrolyse : 6 heures

Après 6 heures d'incubation, les deux enzymes sont inactivées par la chaleur (30 mn, 100°C). L'analyse HPLC des deux milieux réactionnels après traitement par les deux hydrolases est reportée dans le Tableau 10.

TABLEAU 10

01 igodextranes 01 igodextranes 01 igodex ranes contenant une contenant une contenant une liaison liaison liaison O (1 -> 2), 0 (1 -> 2), <X(1 -> 2), D.P. 4 D.P. 5 D.P. > 5

Accepteur : maltose

Conditions de synthèse 8 g/1 17 g/1 2 g/1 voir Exemple 3

Accepteur : isomaltose, isomaltotriose

22 g/1 5 g/1 i g/i

Conditions de synthèse voir Exemple 6

EXEMPLE 11 Synthèse et purification d'oligodextranes contenant une liaisonc (l -> 2) avec la glucosyltransferase soluble et insoluble de Leuconostoc mesenteroides B-1299 Après avoir préparé et purifié de la glucosyltrans¬ ferase, comme à l'exemple l(a), on procède à la synthèse d'oligodextranes dans les conditions suivantes :

- saccharose : 100 g/1

- accepteur : Nutriose R 725 : 44 g/1 (maltose : 33 g/1)

- rapport saccharose/maltose : 3

- concentration d'enzyme : 0,3 U/ml

- azoture de sodium : 0,5 °/oo

- pH : 5,6 (ajusté avec l'acide chlorhydrique IN) - température : 30°C

- durée d'incubation : 40 heures

- volume réactionnel : 2,5 litres

La réaction enzymatique est stoppée par chauffage à 90°C pendant 15 minutes. Après synthèse, la composition du milieu réaction¬ nel est la suivante :

- fructose : 49 g/1

- leucrose : 6 g/1

- maltose : 3 g/1 - maltotriose : 7,5 g/1

- panose : 12 g/1

- oligodextrane de D.P. 4 contenant une liaison

< (1 -> 2) : 3 g/1

- oligodextrane de D.P. 4 : 13 g/1 - oligodextrane de D.P. 5 contenant une liaison ((l -> 2) : 15 g/1

- oligodextranes de D.P. > 5 contenant une liaison θ (l -> 2) : 10 g/1

Le ^" milieu contient également des oligodextranes de D.P. plus élevé qui n'apparaissent pas dans l'analyse chromatographique du milieu de synthèse.

Le milieu de synthèse est ensuite soumis à l'action d'un mélange de glucoamylase d'A. niger (3U/ml) et d'endo-

dextranase de Pénicillium sp. (17 U/ml) pendant 6 heures à 40°C. La réaction enzymatique est stoppée par chauffage à 90°C pendant 30 minutes. Le glucose et le fructose sont éliminés par chromatographie sur résine échangeuse sous forme calcium.

On obtient ainsi 40 g d'oligodextranes contenant une liaisonod -> 2) de pureté égale à 94%. La réparti¬ tion des oligodextranes est la suivante :

% - glucose, leucrose 6

- oligodextranes de D.P. 4 contenant une liaison c (l -> 2) 24

- oligodextranes de D.P. 5 contenant une liaison o d -> 2) 56 - oligodextranes de D.P. 6 contenant une liaison O^d -• ^> 2) 7

- oligodextranes de D.P. 7 contenant une liaison oU-*- ~* -****- ¹ ^

La préparation est finalement lyophilisée. Après lyophilisation le produit final se présente sous la forme d'une poudre blanche non hygroscopique, sans saveur sucrée et très soluble dans l'eau. Sa solubilité dans l'eau à

20°C est égale à 70% (p/p).

EXEMPLE 12 Synthèse d'o(l -> 2) oligodextranes en présence d'oligo¬ dextranes de masse molaire 1000 comme accepteur.

L'accepteur utilisé est constitué par un mélange d'olîgosaccharides linéaires contenant une liaison o (l -> 4) à. l'extrémité réductrice et des liaisons o (l -> 6) exclusivement. Il est obtenu par action de la dextrane-saccharase de L. mesenteroides B-512 (F) en pré¬ sence de saccharose et de maltose. Conditions expérimentales : Synthèse 1 - saccharose: 200 g/1

- oligodextranes de masse molaire 1000 (M ^* : 1000) : 20g/l

- 29 -

- tampon acétate de sodium 20 mM, pH 5,0

- température : 23°C

_ concentration d'enzyme : 1 U/ml Synthèse 2 On répète la synthèse 1 si ce n'est que la con¬ centration de l'accepteur (oligodextranes de masse molaire 1000) est égale à 40g/1.

Après 40 heures de réaction, l'enzyme est inactivée par un traitement thermique du milieu réactionnel (chauf- fage à 70°C, 20 minutes). Les deux milieux réactionnels sont alors centrifugés, puis soumis à l'action de la glu¬ coamylase d'Aspergillus niger dans le but d'hydrolyser les liaisons glucosidiques * (1 -> 6) situées à l'extrémité non réductrice, dans les conditions suivantes : - glucoamylase d'A. niger AMG 200 L ® (N0V0) Î 2 AGU/ml

- température : 40°C

- durée de l'incubation : 24 heures

La glucoamylase est ensuite inactivée par chauffage à 70°C pendant 20 minutes. Les C (1 -> 2) oligodextranes sont ensuite purifiés~ par chromatographie sur résine échangeuse d'ions (Dowe ^ 50W x 4, sous forme calcium) de façon à éliminer les mono et disaccharides. Lesc (l -> 2) oligodextranes sont ensuite ultrafiltrés (seuil de coupure 100.000, module AMIC0N) , déminéralisés et lyophilisés.

Dans le cas de la synthèse 1, la masse molaire moyenne en poids (M ) des <χd -> 2) oligodextranes est égale à 1600. Dans le cas de la synthèse 2, la masse mo¬ laire moyenne est égale à. 1400.