L'iode 131 est utilisé depuis plus de cinquante ans dans le traitement des cancers différenciés de la thyroïde. Son efficacité thérapeutique est liée à la dose de radiations délivrée au tissu tumoral. Par exemple dans le cas de métastases, une réponse tumorale après traitement par l'iode 131 est observée lorsque la dose délivrée au niveau du tissu tumoral est supérieure à 80 grays alors que le taux de réponse tumorale est faible ou nul pour des doses inférieures à 35 grays [Maxon, NEJM, 309 : 937-941,1983]. On peut généralement estimer que les doses totales nécessaires pour traiter ou réduire le volume d'une tumeur varient entre 40 et 60 grays en fonction de leur radiosensibilité. Cette dose totale peut tre délivrée lors de plusieurs traitement par l'iode 131, comme cela est réalisé lors du traitement des métastases fixantes de cancer thyroïdien différencié.

La dose de radiation délivrée au tissu tumoral dépend de deux facteurs biologiques : la demi-vie effective (Te, T) de l'iode 131 dans le tissu tumoral et la concentration radioactive.

-La demi-vie effective (T, ff) de l'iode 131 dans le tissu tumoral dépend de la demi-vie biologique (Tbjo,) et de la demi-vie physique (Tphys) selon la relation 1/T, l/Tbjol+I/Tphyse La demi-vie biologique (Tbjol) de l'iode 131 dans les cellules fixantes dépend de leur capacité d'organification de l'iode. En l'absence d'organification, comme par exemple dans les cellules non thyroïdiennes, la demi-vie biologique est brève, de quelques heures à quelques dizaines d'heures. La demie-vie physique (Tpl, ys) de l'iode 131 est de 8.02 jours. Ainsi, au mieux, on peut estimer que

la demi-vie effective de l'iode 131 dans un tissu tumoral est de quelques heures à quelques dizaines d'heures.

-La concentration radioactive est le rapport entre la fixation globale de 1'iode 131 par le tissu tumoral et la masse de ce tissu.

A titre d'exemple, pour une fixation d'iode de 0.1 % de l'activité administrée pour I g de tissu et une demie-vie effective de 1.5 jours, on peut estimer que l'administration de 3,7 gigabecquerel (ou 100 mCi) délivre une une dose de 30 grays au tissu tumoral.

La fixation globale d'iode 131 est un paramètre qui dépend d'une part, de l'activité de l'iode 131 administrée au patient et d'autre part, des capacités du tissu tumoral à concentrer l'iode 131.

-L'activité maximale d'iode 131 pouvant tre administrée à un patient est limitée par la toxicité de l'iode de l'iode 131 résultant des doses d'irradiation délivrées aux tissus sain et notamment à la moelle osseuse. Ainsi en cas de cancer de la thyroïde, les activités thérapeutiques administrées, alors que les patients sont en état d'hypothyroïdie, sont en général comprises entre 3.7 et 10 GBq (100 à 300 mCi).

Les activités maximales pouvant tre administrées à des patients euthyroïdiens sont plus élevées car la rétention de l'iode est alors deux fois inférieure à celle observée en cas d'hypothyroïdie), elles atteignent des valeurs comprises entre 8,5 et 22. 2 GBq (500 à 600 mCi).

-La capacité du tissu tumoral à concentrer l'iode 131, pour une activité déterminée administrée au patient, dépend du niveau d'expression du symporteur de l'iode et de son activité biologique. Ceci a été démontré par l'étude des tissus thyroïdiens humains normaux et pathologiques et par des études in vitl o de l'activité du NIS. L'activité spécifique de l'iode 131 étant élevée, il n'a pas été observé de phénomène de saturation avec augmentation de l'activité d'iode 131 administrée.

En raison de la limitation de l'activité maximale d'iode 131 pouvant tre administrée au patient, il serait souhaitable de pouvoir accroître la capacité du tissu tumoral à concentrer l'iode 131 pour augmenter la fixation globale de l'iode 131.

Il est également déterminant que l'augmentation de la fixation de l'iode se fasse de manière homogène au niveau du tissu tumoral. En effet, la fixation de l'iode dans un tissu fixant peut tre très hétérogène d'une cellule à l'autre, voire d'une zone tumorale à une autre. La dose d'irradiation au niveau du tissu tumoral est délivrée essentiellement par l'émission (3 de l'iode 131. Or son parcours dans les tissus biologiques est au maximum de 2 à 3 mm. De plus, autour d'une source ponctuelle, la dose d'irradiation diminue de manière exponentielle avec la distance. Ces éléments renforcent l'importance d'atteindre une forte concentration radioactive au niveau des zones tumorales fixantes et d'autre part, la nécessité d'obtenir une fixation d'iode aussi homogène que possible.

Il faut noter que la fixation de l'iode 131 par la thyroïde humaine, et donc son irradiation, peut tre facilement supprimée (fixation d'iode 131 non mesurable) par l'administration de L-triiodothyronine 1 ug/kg/jour divisée en trois prises quotidiennes pendant trois semaines.

Le transporteur NIS est responsable de la concentration de l'iode circulant (sous forme d'iodure I-) par les thyréocytes [pour une revue voir P. Thomopoulos, Médecine et Science, vol 4 (10), p. 825-828]. La concentration de l'iode dans ces cellules présente les caractéristiques suivantes : 1'iode est concentré d'un facteur 30 à 40 fois contre un gradient électrochimique ; il requiert la présence de sodium (Na~) ; il s'agit d'un transport actif, il est inhibé de manière compétitive par certains anions, tels le thiocyanate, le perchlorate, le pertechnétate. La concentration de l'iode par les thyréocytes est suivi de l'organification de l'iode et la synthèse d'iodotyrosines et d'hormones thyroïdiennes (thyroxine T4 et triiodothyronine T3).

Les gènes codant pour le transporteur murin [Dai et al. Nature 379 : 458-460 (1996)] et le transporteur humain [Smanik P. A. et al. Biochem. Biophys. Res.

Commun. 226 : 339-345 (1996)] de l'iode NIS ont été isolés, ils sont identiques à 84 %. Le gène est localisé sur le chromosome 19p dans l'espèce humaine. I1 comporte 15 exons séparés par 14 introns. Sa transcription donne naissance à deux formes par épissage alternatif, dont la forme longue prédomine dans la thyroïde. La protéine a un poids moléculaire de 55 kDa, atteignant 80 kDa après glycosylation. Elle est localisée dans la membrane latérobasale des thyréocytes. Ses extrémités aminoterminale et carboxyterminale sont intracellulaires tandis que le reste de la chaîne peptidique

comporte 13 segments transmembranaires réunis par des boucles intracellulaires et extracellulaires [Levy et al., 1998, J. Biol. Chem. 273 : 22657-22663]. L'introduction du gène codant pour NIS dans des cellules non thyroïdiennes leur confère la capacité à capter l'iode, avec les mmes propriétés que les thyréocytes, en particulier la présence obligatoire de sodium (Na+) et l'inhibition par les anions perchlorates.

La transcription du gène nis est activée dans les thyréocytes par la TSH. Cet effet est médié par l'AMP cyclique. La demi-vie de la protéine, dans les thyréocytes murins est de 4 jours [Paire A. et al. J. Biol. Chem. 272 : 18245-18249 (1997)].

Dans les tissus extrathyroïdiens, l'activité du gène est plus faible que celle de la thyroïde à l'état basal. Ceci est vraisemblablement dû à la stimulation de la transcription du gène nis dans les thyréocytes, par le facteur spécifique de transcription TTF-I (thyroid transcription factor 1), qui peut se lier au promoteur du gène nis thyroïdien, mais non à celui des autres tissus [Endo T. et al. Mol. Endocrinol.

Il : 1747-1755 (1997)]. En dehors de la thyroïde, certains tissus sont capables de capter et de concentrer l'iode notamment les glandes salivaires et la muqueuse gastrique.

Une étude récente rapporte le transfert du gène nit au moyen d'un vecteur rétroviral dans des cellules tumorales humaines ou murines [Mandell et al. Cancer Research 59 : 661-668 (1999)]. Ces résultats sont intéressants en ce qu'ils montrent qu'il est possible d'exprimer le gène nis dans des cellules non thyroïdiennes et d'observer une concentration de l'iode dans des cellules qui n'accumulent pas cet élément naturellement. Cependant un certain nombre de facteurs limitants restent à surmonter afin d'atteindre un niveau de fixation de l'iode suffisant pour envisager une application thérapeutique.

Un premier facteur est le faible niveau d'expression du gène nis au niveau des cellules tumorales. Par exemple, dans l'étude précitée, les résultats obtenus in vitro montrent que la concentration d'iode atteinte dans les cellules tumorales non thyroïdiennes reste environ deux fois inférieure à la concentration d'iode accumulée dans les cellules thyroïdiennes.

De plus, compte tenu des perturbations importantes que présentent les cellules tumorales au niveau membranaire, il apparaît difficile d'assurer l'intégration

fonctionnelle d'un transporteur avec une efficacité comparable à celle des cellules thyroïdiennes non tumorales.

Un autre facteur limitant est l'absence d'organification de l'iode au niveau des cellules non thyroïdiennes, or cette organification de l'iode est un élément nécessaire au maintient de l'iode dans les cellules. Ainsi dans l'étude rapportee ci-dessus, il est observé un efflux très rapide de l'iode accumulé in vitro (entre 30 et 60 min) pour les cellules non thyroïdiennes.

Enfin compte tenu de l'hétérogénéité des cellules tumorales et des modifications importantes de ces cellules au niveau membranaire, il semble difficile de pouvoir atteindre une répartition homogène du transporteur NIS au niveau des membranes des cellules tumorales.

Ainsi aucune approche décrite à ce jour n'a encore permis d'atteindre une accumulation de l'iode au niveau de tumeur non thyroïdienne avec un niveau d'expression suffisant pour envisager l'utilisation de l'iode 131 pour le traitement des tumeurs non thyroïdiennes.

La présente invention présente une méthode améliorée de traitement des tumeurs combinant la thérapie génique et la radiothérapie à l'iode 131 La présente invention décrit en particulier une méthode permettant d'augmenter l'efficacité de la fixation de l'iode au niveau des tumeurs non thyroidiennes et permettant ainsi d'appliquer aux tumeurs non thyroïdiennes, les principes de radiothérapie développés avec succès pour le traitement des cancers thyroïdiens.

La présente invention résulte de la mise en évidence que le transfert du gène codant pour le transporteur spécifique de l'iode (Na~/l~ Symporteur) NIS au moyen d'un adénovirus recombinant défectif permet d'atteindre une accumulation d'iode très importante au niveau de cellules tumorales non thyroïdiennes. Dans un mode de réalisation spécifique, l'apport d'un adénovirus défectif exprimant le gène nis permet d'accumuler l'iode à des concentrations environ cinq fois supérieures à celles observées dans les cellules thyroïdiennes. Cette capacité surprenante des cellules tumorales non thyroïdiennes à accumuler l'iode 125 permet d'envisager pour ce type

de tumeurs une nouvelle approche thérapeutique basée sur la radiothérapie métabolique par l'iode 131 ; approche jusqu'alors réservée au traitement de certaines tumeurs thyroïdiennes.

L'intért majeur de la radiothérapie métabolique est de délivrer des doses d'irradiation importantes aux tissus fixants l'isotope radioactif, sans irradier significativement les tissus environnants.

La découverte qu'il est effectivement possible de concentrer de manière importante l'iode dans des cellules tumorales qui sont normalement incapables d'accumuler cet élément permet d'envisager l'application de cette méthode dans de nombreuses indications pour le traitement des tumeurs d'origine non thyroïdienne.

Deux types d'indications sont plus particulièrement envisagées : les tumeurs difficilement accessibles à la radiothérapie externe en raison de leur localisation, à titre d'exemple on peut citer les cancers de la prostate inopérables ou les tumeurs intracérébrales ; les tumeurs ayant déjà été irradiées et pour lesquelles un complément de radiothérapie externe est impossible, car les doses maximales ont déjà été délivrées : ceci concerne tous les cancers survenant ou rechutant en zones irradiées.

Cette méthode est également applicable au traitement des tumeurs thyroïdiennes ayant perdu la capacité de capter l'iode et ne répondant pas à la thérapie métabolique.

II est également envisageable de combiner la radiothérapie métabolique et la radiothérapie externe comme cela est réalisé en cas de métastases de cancer différencié de la thyroïde. Cette combinaison permet d'augmenter l'efficacité thérapeutique de la radiothérapie, sans en augmenter la toxicité. Cette combinaison paraît particulièrement intéressante pour les tumeurs peu sensibles à la radiothérapie.

Par ailleurs, elle permet d'envisager l'application de cette technique à des tumeurs qui ne seraient pas accessibles à la radiothérapie métabolique seule, en raison de leur taille trop importante.

Un premier objet de l'invention réside donc dans un adénovirus recombinant défectif comprenant au moins une séquence d'ADN hétérologue codant pour le transporteur spécifique de l'iode (Nat/I~ Symporteur) NIS, ou un de ses dérivés.

Au sens de la présente invention on entend par"dérivé"du transporteur spécifique de I'lode (Na-/I-Symporteur) NIS tout analogue, fragment ou forme mutée qui est dérivé du polypeptide NIS et qui conserve une activité de transport spécifique de l'iode. Différents dérivés peuvent exister à l'état naturel. Ces dérivés peuvent tre des variations alléliques caractérisées par des différences dans la séquence nucléotidique des gènes de structure codant pour le NIS ou peuvent résulter d'un épissage différentiel ou de modifications post-traductionnelle. Ces dérivés peuvent tre obtenus par substitution, délétion, addition et/ou modification d'un ou plusieurs résidus acides aminés. Ces modifications peuvent tre réalisées par toutes techniques connues de l'homme du métier. Ces dérivés sont notamment des molécules ayant une plus grande affinité pour leurs substrats, des séquences permettant une expression améliorée in vivo, des molécules présentant une plus grande résistance aux protéases, des molécules ayant une efficacité biologique plus grande ou des effets secondaires moindres, ou éventuellement de nouvelles propriétés biologiques. D'autres dérivés utilisables dans le cadre de l'invention sont notamment les molécules dans lesquelles un ou plusieurs résidus ont été substitués, les dérivés obtenus par délétion de régions n'intervenant pas ou peu dans l'interaction avec les sites de liaison considérés ou exprimant une activité indésirable, et les dérivés comportant par rapport à la séquence native des résidus supplémentaires, tels que par exemple un signal de sécrétion et/ou un peptide de jonction.

Le transporteur spécifique de 1'iode (Na~/l~ Symporteur) NIS ou son dérivé produit dans le cadre de la présente invention peut tre un ADNc, un ADN gnomique (ADNg), ou une construction hybride consistant par exemple en un ADNc dans lequel seraient insérés un ou plusieurs introns. Il peut également s'agir de séquences synthétiques ou semi-synthétiques. De manière avantageuse, on utilise un ADNc ou un ADNg. En particulier, l'utilisation d'un ADNg peut permettre une meilleure expression dans les cellules humaines.

Selon un premier mode de réalisation, il s'agit d'une séquence d'ADNc codant pour le transporteur spécifique de l'iode (Na'/I-Symporteur) NIS d'origine murine Selon un mode préféré de l'invention, il s'agit d'une séquence d'ADNc codant pour le transporteur spécifique de l'iode (Na/I-Symporteur) NIS d'origine humaine.

Les adënovirus utilisés dans le cadre de la présente invention sont des adénovirus recombinants, c'est à dire comprenant une séquence d'ADN hétérologue.

Avantageusement, il s'agit d'adénovirus recombinants défectifs, c'est à dire incapables de réplication autonome dans les cellules cibles.

Pour la construction des adénovirus selon l'invention, différents sérotypes peuvent tre utilisés. Il existe en effet de nombreux sérotypes, dont la structure et les propriétés varient quelque peu, mais qui présentent une organisation génétique comparable. Plus particulièrement, les adénovirus recombinants peuvent tre d'origine humaine ou animale. Concernant les adénovirus d'origine humaine, on peut citer préférentiellement ceux classés dans le groupe C, en particulier les adénovirus de type 2 (Ad2), 5 (Ad5), 7 (Ad7) ou 12 (Adl2). Parmi les différents adénovirus d'origine animale, on peut citer préférentiellement les adénovirus d'origine canine, et notamment toutes les souches des adénovirus CAV2 [souche manhattan ou A26/61 (ATCC VR-800) par exemple]. D'autres adénovirus d'origine animale sont cités notamment dans la demande W094/26914.

Le génome des adénovirus comprend notamment une séquence inversée répétée (ITR) à chaque extrémité, une séquence d'encapsidation (Psi), des gènes précoces et des gènes tardifs. Les principaux gènes précoces sont contenus dans les régions El, E2, E3 et E4. Parmi ceux-ci, les gènes contenus dans la région El notamment sont nécessaires à la propagation virale. Les principaux gènes tardifs sont contenus dans les régions LI à L5. Le génome de l'adénovirus Ad5 a été entièrement séquence et est accessible sur base de données (voir notamment Genbank M73260).

De mme des parties, voire la totalité d'autres génomes adénoviraux (Ad2, Ad7, Ad 12, etc) ont également été séquencées.

Comme indiqué ci-avant, les adénovirus selon l'invention sont défectifs et sont donc incapables de se répliquer de façon autonome dans la cellule cible. A cet effet, différentes constructions dérivées des adénovirus ont été préparées, incorporant différents gènes thérapeutiques. Dans chacune de ces constructions, t'adénovirus a été modifié de manière à le rendre incapable de réplication dans la cellule infectée. Ainsi, les constructions décrites dans l'art antérieur sont des adénovirus délétés de la région E1, essentielle à la réplication virale, au niveau de laquelle sont insérées les séquences d'ADN hétérologue (Levrero et al., Gene 101 (1991) 195 ; Gosh-Choudhury et al.,

Gene 50 (1986) 161). Par ailleurs, pour améliorer les propriétés du vecteur, il a été proposé de créer d'autres délétions ou modifications dans le génome de l'adénovirus.

Ainsi, une mutation ponctuelle thermosensible a été introduite dans le mutant tsl25, permettant d'inactiver la proteine de 72kDa de liaison à 1'ADN (DBP) (Van der Vliet et al., J. Virol., 1975,15 (2) 348-354). D'autres vecteurs comprennent une délétion d'une autre région essentielle à la réplication et/ou à la propagation virale, la région E4. La région E4 est en effet impliquée dans la régulation de l'expression des gènes tardifs, dans la stabilité des ARN nucléaires tardifs, dans 1'extinction de 1'expression des protéines de la cellule hôte et dans l'efficacité de la réplication de 1'ADN viral.

Des vecteurs adénoviraux dans lesquels les régions El et E4 sont délétées possèdent donc un bruit de fond de transcription et une expression de gènes viraux très réduits.

De tels vecteurs ont été décrits pas exemple dans les demandes W094/28152, W095/02697, W096/22378. En outre. des vecteurs portant une modification au niveau du gène IVa2 ont également été décrits (W096/10088).

Dans un mode préféré de mise en oeuvre de l'invention, I'adénovirus recombinant est un adénovirus humain du groupe C. De manière plus préférentielle, il s'agit d'un adénovirus Ad2 ou Ad5.

Avantageusement, I'adénovirus recombinant utilisé dans le cadre de l'invention comprend une délétion dans la région El de son génome. Encore plus particulièrement, il comprend une délétion des régions Ela et Elb. A titre d'exemple, on peut citer des délétions affectant les nucléotides 454-3328, 386-3446, 459-3510 ou 357-4020 (par référence au génome de l'Ad5).

Selon une autre variante, I'adénovirus recombinant utilisé dans le cadre de l'invention est défectif pour tout ou partie des régions E I et E3 au moins.

Selon une autre variante, I'adénovirus recombinant utilisé dans le cadre de l'invention comprend outre une délétion dans la région E 1, une délétion affectant tout ou partie de la région E4 de son génome. Plus particulièrement, la délétion dans la région E4 affecte l'ensemble des phases ouvertes. On peut citer à titre d'exemple précis les délétions 33466-35535 ou 33093-35535 ou une partie seulement de la région E4 (ORF6 ou ORF3 par exemple), comme décrit dans les demandes W095/02697 et W096/22378.

Il peut s'agir par exemple d'adénovirus recombinants dits de 3""e génération, c'est à dire défectifs pour les régions El et E4, en tout ou partie, et éventuellement pour la région E3. Des variantes particulières de l'invention sont constituées par l'utilisation d'adénovirus portant des délétions affectant tout ou une partie des régions fonctionnelles suivantes : <BR> <BR> <BR> <BR> <BR> <BR> <BR> -E I, E4 et E3,<BR> <BR> <BR> <BR> <BR> <BR> <BR> <BR> <BR> -El, E4etE2, -E1, E4, E2 et E3, -les régions ci-dessus ainsi que tout ou partie des gènes codant pour les fonctions tardives de t'adénovirus (L 1 à L5), ou encore, -1'ensemble des régions virales codantes.

Concernant les adénovirus dépourvus en plus des fonctions tardives (vecteur "minimum") ou de l'ensemble des régions codantes (vecteur"gutless"), leur construction a été décrite par exemple par Parks et al. PNAS 93 (1996) p. 13565 et Lieber et al.. J. Virol. 70 (1996) p. 8944.

I1 peut s'agir également de vecteurs adénoviraux hybrides tels que ceux décrits dans la demande W099/60144 et dans lesquels l'adénovirus est utilisé comme vecteur d'un autre virus et notamment comme vecteur de rétrovirus.

La cassette d'expression contenant l'acide nucléique codant pour le transporteur de l'iode (NIS) peut tre insérée en différents sites du génome recombinant. Elle peut tre insérée au niveau de la région E I, E3 ou E4, en remplacement des séquences délétées ou en surplus. Elle peut également tre insérée en tout autre site, en dehors des séquences nécessaires en cis à la production des virus (séquences ITR et séquence d'encapsidation).

Au sens de la présente invention on entend par"cassette d'expression"d'un acide nucléique, un fragment d'ADN qui peut tre inséré dans un vecteur à des sites de restrictions spécifiques ; le fragment d'ADN comprend, outre la séquence

nucléotidique codant pour un ARN ou un polypeptide d'intért, les séquences nécessaires à 1'expression (enhanceur (s), promoteur (s), séquence de polyadénylation ...) de ladite séquence d'intért. Le fragment d'ADN et les sites de restriction sont conçus pour assurer une insertion dudit fragment dans un cadre de lecture approprié pour la transcription et/ou la traduction.

Les adénovirus recombinants sont produits dans une lignée d'encapsidation, c'est-à-dire une lignée de cellules capables de complémenter en trans une ou plusieurs des fonctions déficientes dans le génome adénoviral recombinant. Parmi les lignées d'encapsidation connues par l'homme du métier, on peut citer par exemple la lignée 293 dans laquelle une partie du génome de t'adénovirus a été intégrée. Plus précisément, la lignée 293 est une lignée de cellules embryonnaires humaines de rein contenant l'extrémité gauche (environ 11-12 %) du génome de t'adénovirus sérotype 5 (Ad5), comprenant l'ITR gauche, la région d'encapsidation, la région E 1, incluant Et a et Elb, la région codant pour la protéine pIX et une partie de la région codant pour la protéine pIVa2. Cette lignée est capable de trans-complémenter des adénovirus recombinants défectifs pour la région El, c'est-à-dire dépourvus de tout ou partie de la région Et, et de produire des stocks viraux ayant des titres élevés. Cette lignée est également capable de produire, à température permissive (32°C), des stocks de virus comportant en outre la mutation E2 thermosensible. D'autres lignées cellulaires capables de complémenter la région Et ont été décrites, basées notamment sur des cellules de carcinome de poumon humain A549 (W094/28152) ou sur des rétinoblastes humains (Hum. Gen. Ther. (1996) 215). Par ailleurs, des lignées capables de trans-complémenter plusieurs fonctions de l'adénovirus ont également été décrites. En particulier, on peut citer des lignées complémentant les régions El et E4 (Yeh et al., J. Virol. Vol. 70 (1996) pp 559-565 ; Cancer Gen. Ther. 2 (1995) 322 ; Krougliak et al., Hum. Gen. Ther. 6 (1995) 1575) et des lignées comptémentant les régions El et E2 (W094/28152, W095/02697, W095/27071) ou des lignées dérivées de celles-ci utilisables pour produire des adénovirus minimum, en particulier parce qu'elles expriment en outre une activité de recombinase site spécifique impliquée dans la construction de tels virus.

Les adénovirus recombinants peuvent également tre modifiés dans la structure de la capside pour augmenter l'efficacité d'infection au niveau de la tumeur.

Par exemple la capside peut contenir un ligand de uPAR ou un motif RGD qui permet le ciblage de l'adénovirus vers les cellules tumorales, de tels vecteurs et des séquences de ciblage ont été décrits notamment dans la demande WO 00/12738. Les séquences de ciblage peuvent tre insérées dans la protéine de I'hexon ou dans la protéine de la fibre. De préférence les séquences de ciblages sont insérées au niveau de délétion de la protéine de la fibre ou de 1'hexon. La séquence polypeptidique de 1'hexon est avantageusement délétée de 13 amino acides correspondant aux positions 279 à 292 de la séquence polypeptidique de 1'hexon de Ad 5. La séquence polypeptidique de la fibre est avantageusement délétée de 11 amino acides correspondant aux positions 539 à 547 de la séquence polypeptidique de la fibre (HI Loop) de Ad 5.

Les adénovirus recombinants sont habituellement produits par introduction de 1'ADN viral dans la lignée d'encapsidation, suivie d'une lyse des cellules après environ 2 ou 3 jours (la cinétique du cycle adénoviral étant de 24 à 36 heures). Pour la mise en oeuvre du procédé, I'ADN viral introduit peut tre le génome viral recombinant complet, eventuellement construit dans une bacterie (W096/25506) ou dans une levure (W095/03400), infecté dans les cellules. I1 peut également s'agir d'un virus recombinant utilisé pour infecter la lignée d'encapsidation. L'ADN viral peut aussi tre introduit sous forme de fragments portant chacun une partie du génome viral recombinant et une zone d'homologie permettant, après introduction dans la cellule d'encapsidation, de reconstituer le génome viral recombinant par recombinaison homologue entre les différents fragments.

Après la lyse des cellules, les particules virales recombinantes peuvent tre isolées par toute technique connue telle que la centrifugation en gradient de chlorure de césium ou la chromatographie. Une méthode alternative a été décrite dans la demande W098/00528.

Séquences de régulation le l'expression. Le gène codant pour le transporteur spécifique de l'iode (Na+/l~ Symporteur, NIS) peut tre placé sous le contrôle de toute séquence régulatrice de 1'expression telle que par exemple un promoteur ou un

promoteur/enhancer. fonctionnelle et permettant 1'expression dans les cellules hõtes tumorales.

Les séquences régulatrices de l'expression peuvent comprendre, outre la région promotrice, une région située en 3'du gène codant pour le transporteur spécifique de l'iode et qui fournit un signal de fin de transcription et un site de polyadénylation. L'ensemble de ces éléments constitue une cassette d'expression.

Le promoteur peut tre constitutif ou régulable (inductible). Il peut s'agir du propre promoteur du gène. II peut également s'agir de séquences d'origine différente (responsables de 1'expression d'autres protéines, ou mme d'un promoteur synthétique). Notamment, il peut s'agir de séquences promotrices de gènes eucaryotes ou viraux. Par exemple, il peut s'agir de séquences promotrices issues du génome de la cellule que l'on désire transfecter. De mme, il peut s'agir de séquences promotrices issues du génome d'un virus, y compris du virus utilisé. A cet égard, on peut citer par exemple les promoteurs EIA, MLP, CMV, LTR-RSV, MT-1, SV40 etc.

En outre, ces séquences d'expression peuvent tre modifiées par addition de séquences d'activation, de régulation, permettant une expression tissu-spécifique ou prédominante dans certains tissus (promoteur énolase, GFAP, etc.). Il peut en effet tre particulièrement intéressant d'utiliser des signaux d'expression actifs spécifiquement ou majoritairement dans les cellules tumorales, de manière à ce que le gène thérapeutique ne soit exprimé et ne produise son effet que lorsque le virus a effectivement infecté une cellule tumorale. Le caractère spécifique ou majoritaire de 1'expression signifie que l'activité du promoteur est significativement très supérieure dans les cellules tumorales. Bien qu'une expression non-spécifique puisse exister dans d'autres cellules, le niveau d'activité correspondant reste généralement très faible (négligeable) par rapport à celui observé dans les cellules tumorales, généralement inférieur d'un facteur 10 au moins.

Parmi les promoteurs utilisables dans le cadre de l'invention on peut citer les promoteurs ubiquitaires (HPRT, vimentine, a-actine, tubuline, etc.), les promoteurs des filaments intermédiaires (desmine, neurofilaments, kératine, GFAP), les promoteurs de gènes d'intért thérapeutique (MDR, CFTR, facteur VIII etc.), les promoteurs spécifiques de tissus (promoteurs des gènes de la desmine, des myosines,

de la créatine kinase, de la phophoglycérate kinase), les promoteurs plus spécifiquement actifs dans les cellules en croissance ou encore les promoteurs répondant à un stimulus tels que des promoteurs répondant aux hormones naturelles (récepteurs des hormones stéroïdes, récepteur de l'acide rétinoïque, etc.) ou un promoteur régule par les antibiotiques (tétracycline, rapamycine, etc) ou d'autres promoteurs répondant à d'autres molécules d'origine naturelle ou synthétique ou de séquences promotrices issues du génome d'un virus comme l'enhancer/promoteur du cytomégalovirus CMV, le promoteur LTR du rétrovirus, le promoteur SV40, le promoteur du gène E I A, le promoteur MLP. Les promoteurs réglables par la tétracycline et le promoteur CMV ont été décrits dans W096/01313, US 5,168,062 et US 5,385,839.

Parmi les promoteurs utilisables pour la mise en oeuvre de l'invention on peut citer notamment le promoteur du cytomegalovirus (CMV), la région promotrice early du SV40 (Benoist and Chambon, 1981, Nature 290 : 304-310), le promoteur compris dans la région 3'LTR du virus du sarcome de Rous (Yamamoto, et al., 1980, Cell 22 : 787-797), le promoteur de la thymidine kinase du virus de l'herpes (Wagner et al., 1981, Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 78 : 1441-1445), les séquences régulatrices du gène de la métallothioneine (Brinster et al., 1982, Nature 296 : 39-42) ; les promoteurs d'origine procaryotes comme le promoteur de la p-lactamase (Villa-Kamaroff, et al., 1978, Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 75 : 3727-3731), ou le promoteur tac (DeBoer, et al., 1983, Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 80 : 21-25) ; voir également"Useful proteins from recombinant bacteria"in Scientific American, 1980,242 : 74-94 ; les promoteurs de levures tels que les promoteurs Gal4, ADC (alcool déshydrogénase), PGK (phosphoglycérol kinase), phosphatase alkaline ; et les séquences de régulation transcriptionnelle d'origine animale qui présentent une spécificité de tissus et qui sont utilisés pour les animaux transgéniques : les séquences de régulation du gène de l'élastase I qui sont actives dans les cellules des acini du pancréas (Swift, 1984, Cell 38 : 639-646 ; Ornitz et al., 1986, Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. 50 : 399-409 ; MacDonald, 1987, Hepatology 7 : 425-515) ; les séquences de régulation du gène l'insuline qui sont actives dans les cellules beta du pancréas (Hanahan, 1985, Nature 315 : 115-122), les séquences de régulation de 1'expression des immunoglobulines qui sont actives dans les cellules lymphoïdes (Grosschedl et al., 1984, Cell 38 : 647-658 ; Adames et al., 1985, Nature 318 : 533-538 ; Alexander et al., 1987, Mol. Cell. Biol.

7 : 1436-1444), la séquence de régulation du virus des tumeurs mammaires de souris qui est active dans les cellules des testicules, du sein, les lymphocytes et les mastocytes (Leder et al., 1986, Cell 45 : 485-495), la séquence de régulation du gène PSA qui est active dans les tumeurs prostatiques, la séquence de régulation du gène de l'albumine qui est active dans le foie (Pinkert et al., 1987, Genes and Devel.

1 : 268-276), la séquence de régulation du gène de l'alpha-foetoprotéine qui est active dans le foie (Krumlauf et al., 1985, Mol. Cell. Biol. 5 : 1639-1648 ; Hammer et al., 1987, Science 235 : 53-58), la séquence de régulation du gène de l'alpha I-antitrypsine qui est active dans le foie (Kelsey et al., 1987, Genes and Devel. 1 : 161-171),), la séquence de régulation du gène de la (3-globine qui est active dans les cellules myéloides (Mogram et al., 1985, Nature 315 : 338-340 ; Kollias et al., 1986, Cell 46 : 89-94), la séquence de régulation du gène de la myéline basique qui est active dans les oligodendrocytes dans le cerveau (Readhead et al., 1987, Cell 48 : 703-712),), la séquence de régulation du gène de la chaîne légère 2 de la myosine qui est active dans le muscle squelettique (Sani, 1985, Nature 314 : 283-286), et la séquence de régulation du gène de l'hormone de libération des gonadotrophines qui est active au niveau de l'hypothalamus (Mason et al., 1986, Science 234 : 1372-1378).

Dans un mode particulier de réalisation de l'invention, on utilise un adénovirus recombinant défectif comprenant un gène codant pour le transporteur spécifique de l'iode (Na/I-Symporteur) NIS sous le contrôle d'un promoteur viral, choisi de préférence parmi le LTR-RSV ou le promoteur précoce du CMV.

Il est également possible d'associer l'introduction du gène NIS avec le vecteur selon l'invention à l'introduction d'un système biologique permettant l'augmentation de la demi-vie biologique de l'iode 131. I1 est ainsi possible de délivrer dans les cellules tumorales de manière simultanée ou successive le gène NIS et un gène ou plusieurs gènes codant pour des polypeptides impliqués dans un système d'organification de l'iode. On peut citer par exemple les gènes codant pour des polypeptides impliqués dans un système peroxydasique tel que le gène codant pour la glucose oxidase. On peut également citer le gène codant pour la thyroperoxidase, enzyme des cellules thyroïdiennes impliqué dans le processus d'organification de !'iode (Nucleic Acids Res. 15 : 6735-6735 (1987) ; séquence GenBank g37251).

L'introduction du gène codant pour la thyroperoxidase peut tre associée également à

l'introduction de séquences nucléiques codant pour tout ou partie de la thyroglobuline (parties de la thyroglobuline riches en résidus tyrosines) . On peut envisager de délivrer dans les cellules tumorales le gène NIS et un gène ou plusieurs gènes codant pour des polypeptides impliqués dans un système d'organification de l'iode au moyen d'un vecteur unique exprimant plusieurs transgènes ou par co-infection de deux vecteurs, un vecteur adénoviral exprimant le gène NIS et un autre vecteur, viral ou plasmidique, exprimant un ou plusieurs gènes codant pour des polypeptides impliqués dans un système d'organification de 1'iode.

Il est en outre possible d'associer l'introduction du gène NIS avec le vecteur selon l'invention à l'administration d'un système permettant un ralentissement de 1'efflux de l'iode par un agent pharmacologique (par exemple, un sel de lithium).

Selon une autre variante, il est également envisageable d'associer l'introduction du gène NIS avec d'autres gènes d'intért thérapeutique pour le traitement des cancers. II peut s'agir d'un gène suicide tel que le gène de la thymidine kinase de l'Herpès ou le gène de la cytosine déaminase. I1 peut s'agir de gènes codant pour des protéines induisant l'apoptose comme p53, Bax, BcIX-s, Bad ou tout autre antagoniste de Bcl2 et de BclX-1. II peut s'agir de gènes codant pour des variants de ces protéines présentant des propriétés améliorées comme un variant de p53 (CTS-I, W097/04092). II peut s'agir également de gènes codant pour des facteurs anti- angiogéniques ou angiostatiques tels que notamment le ligand de Tie-l et de Tie-2, I'angiostatine, I'endostatine, le facteur ATF, les dérivés du plasminogene, Fendothéline, les thrombospondines 1 et 2, le PF-4,1'interféron a ou P, 1'interleukine 12, le TNFa, le récepteur de l'urokinase, flt I, KDR, PAI1, PAI2, TIMPI, le fragment prolactine. II peut s'agir également de gènes codant pour des protéines capables d'induire une immunité antitumorale ou stimuler la réponse immunitaire (IL2, GM- CSF, IL12, etc.). Parmi les gènes codant pour des protéines d'intért thérapeutique dans le traitement des cancers, il est également important de souligner les anticorps, les fragments variables d'anticorps simple chaîne (ScFv) ou tout autre fragment d'anticorps possédant des capacités de reconnaissance pour une utilisation en immunothérapie pour le traitement des tumeurs : anticorps anti-RAS (W09429446).

De manière avantageuse, il peut s'agir d'un gène dont 1'expression entraîne une radiosensibilisation des cellules tumorale comme le gène p53.

L'administration de ces gènes ou de la combinaison de deux ou plusieurs de ces gènes d'intért thérapeutique précités peut tre réalisée par introduction d'un ou plusieurs de ces gènes dans le vecteur adénoviral comprenant le gène codant pour le transporteur NIS ou dans un vecteur séparé de nature virale ou non virale.

Selon une autre variante, le vecteur selon l'invention peut tre administré en combinaison avec un agent anticancéreux tel que notamment, le taxol, le taxotère et autre taxoïdes [tels que décrits notamment dans U. S. 4,857,653 ; US ; US 4,924,011 ; US ; US ; US 5,438,079 ; US 5,587,493 : EP 0 253 738 ; et W091/17976, W093/00928, W093/00929, et W09601815], ou d'autres agents thérapeutiques anticancéreux tels que le cis-platine et les dérivés du platine, t'étoposide and etoposide phosphate, btéomycine, mitomycine C, CCNU, doxorubicine, daunorubicine, idarubicine, ifosfamide, etc.

L'invention concerne également une composition pharmaceutique comprenant un vecteur adénoviral tel que décrit ci-avant et un véhicule physiologiquement acceptable. Les compositions pharmaceutiques de l'invention sont de préférence sous forme injectable et peuvent tre formulées en vue d'une administration intratumorale ou par voie orale, parentérale, intranasale, intraartérielle, intraveineuse, intratrachéale etc.

Préfërentiellement, la composition pharmaceutique contient des véhicules pharmaceutiquement acceptables pour une formulation destinée à tre administrée par voie intratumorale.

Les compositions selon l'invention peuvent comprendre des doses variables d'adénovirus recombinants, aisément adaptables par l'homme du métier en fonction des applications envisagées et de différents paramètres, et notamment en fonction du mode d'administration utilisé ou encore de la durée de I'expression recherchee. D'une manière générale, les virus recombinants selon l'invention sont formulés et administrés sous forme de doses comprises entre 104 et 1014 pfu, et de préférence 106 à 1011 pfu. Le terme pfu ("plaque forming unit") correspond au pouvoir

infectieux du virus, et est déterminé par infection d'une culture cellulaire appropriée, et mesure du nombre de plages de cellules infectées. Les techniques de détermination du titre pfu d'une solution virale sont bien documentées dans la littérature.

En outre, les compositions selon l'invention peuvent également comprendre un agent de transfert chimique ou biochimique. On entend par le terme"agent de transfert chimique ou biochimique"tout composé (i. e., autre qu'un virus recombinant) facilitant la pénétration d'un acide nucléique dans une cellule. II peut s'agir d'agents non viraux cationiques comme des lipides cationiques, des peptides, des polymères (Polyéthylène Imine, Polylysine), des nanoparticules ; ou d'agents non viraux non cationiques comme des liposomes non cationiques, des polymères ou des nanoparticules non cationiques.

Selon un mode préféré, les compositions selon 1'invention comprennent un vecteur recombinant défectif comprenant un gène codant pour le transporteur de ('iode NIS et sont formulées pour une administration intratumorale.

Avantageusement, les compositions de l'invention comprennent de 104 et 1015 pfu, et de préférence 107 à 1012 pfu.

L'invention a également pour objet un procédé de préparation d'un médicament utile pour la prévention, l'amélioration et/ou le traitement des tumeurs caractérisé en ce que l'on mélange un vecteur recombinant comprenant un acide nucléique codant pour un transporteur de l'iode (NIS) avec un ou plusieurs adjuvants compatibles et pharmaceutiquement acceptables.

L'invention concerne également une méthode de traitement des tumeurs des mammifères, et notamment de l'homme, comprenant l'administration d'une quantité efficace d'un vecteur adénovirus recombinant défectif comprenant un acide nucléique codant pour le transporteur de l'iode (NIS).

Le terme « quantité efficace) > désigne une quantité suffisante pour réduire d'au moins environ 15 %, de préférence d'au moins 50 %, et de préférence encore d'au moins 90 % le volume des tumeurs, et plus préférentiellement encore une quantité suffisante pour l'élimination des tumeurs lorsque l'administration de

I'adénovirus comprenant un acide nucléique codant pour le transporteur de l'iode (NIS) est associée à un traitement par radiothérapie métabolique à l'iode 135.

L'invention concerne le traitement des tumeurs et plus particulièrement le traitement des tumeurs solides. Parmi les tumeurs solides qui peuvent tre traitées par l'objet de l'invention on peut citer notamment les sarcomes et les carcinomes, et à titre d'exemple non limitatif, les fibrosarcomes, les sarcomes ostéogéniques, les angiosarcomes, les endothéliosarcomes. les lymphangiosarcomes, les tumeurs de Ewing, le cancer du colon, le cancer du pancréas, le cancer des ovaires, le cancer de la prostate, les adénocarcinomes, les carcinomes du rein, du foie, du canal biliaire, les tumeur de Wilm's, le cancer du col de l'utérus, le cancer des testicules, le cancer du poumon, le cancer du poumon non à petite cellules, le cancer de la vessie, les carcinomes épithéliaux, les gliomes, les astrocytomes, les mélanomes, les neuroblastomes et les rétinoblastomes.

L'invention concerne également la prévention et/ou le traitement des désordres prolifératifs (telles que les métaplasies et les displasies) des tissus épithéliaux tels que l'épithélium du col de l'utérus, de l'oesophage et des poumons. A cet égard, 1'invention concerne le traitement des conditions connues ou suspectées pour précéder une évolution vers une néoplasie ou un cancer, en particulier dans les états où la croissance de cellules non-néoplastiques telle que l'hyperplasie, la métaplasie, et plus particulièrement la displasie se produit (pour une revue de ces conditions anormales de croissance, voir Robbins and Agell, 1976, Bblsic Patholog) d Ed.. W. B. Saunders Co., Philadelphia, pp. 68-79). Hyperplasie est une forme de prolif6ration cellulaire contrôlée impliquant une augmentation du nombre de cellules dans un organe, sans altération structurale ou fonctionnelle significative de cet organe. Par exemple, une hyperplasie de l'endomètre peut précéder le cancer de l'endomètre. La métaplasie est une forme contrôlée de croissance cellulaire dans laquelle un type de cellule adulte ou totalement différenciée se substitue pour un autre type de cellule. La métaplasie peut se produire dans les tissus épithéliaux ou dans les tissus conjonctifs. La displasie est souvent un signe avant-coureur du cancer et se rencontre principalement au niveau de 1'épithélium ; c'est la forme la plus fréquente de croissance cellulaire non-néoplastique. impliquant la perte de l'uniformité des cellules individuelles et la perte de l'orientation structurelle des cellules.

La displasie se produit de manière typique lorsqu'il existe une irritation ou une inflammation

chroniques, et est souvent observée au niveau du col de l'utérus, les voies respiratoires, la cavité bucale. et sur la paroie de la vessie. Pour une revue, voir Fishman et a/.. 1985, Medicine, 2d Ed., J. B. Lippincott Co., Philadelphia.

La présente invention sera décrite plus en détail à l'aide des exemples qui suivent qui doivent tre considérés comme illustratifs et non limitatifs.

LEGENDE DES FIGURES Figure 1 : schéma du plasmide pABI, du plasmide pXL3048 et du plasmide pAB2. Le plasmide pXL3048 comprend l'extrémité gauche du génome de 1'adenovirus de type 5 (nucléotides 1-382), un polylinker comprenant trois sites uniques de clonage et une partie du gène pIX (nucléotides 3446-4296). Le plasmide pAB2 résulte du clonage du fragment SspI-EcoRV de pAB 1 dans pXL3048 préalablement linéarisé par EcoRV.

Figure 2 : obtention du plasmide pXL3215 généré par double recombinaison à partir des plasmides pAB2 et pXL3215 selon la méthode décrite par Crouzet et al.

(PNAS vol 94 pl414,1997). Le plasmide pXL3215 contient le génome d'un adénovirus de type 5 délété pour la région E 1 et E3 et contient la cassette d'expression de NIS.

Figure 3 : cinétique d'accumulation de l'iode 125 par les cellules FTRL-5 et SiHa infectées avec le vecteur Ad-NIS (multiplicité d'infection 10). Les résultats de la cinétique sont exprimés en nombre de coups par minute pour lOh cellules. La détermination du nombre de cellules par puits au moment du contact avec l'iode est la moyenne de deux mesures.

Figure 4 : inhibition spécifique du transport de l'iode par NIS en présence de perchlorate (NaCIO4) 30,300 et 3000 pM. Le temps de contact des cellules avec l'iode 125 est de 15 minutes.

Figure 5 : accumulation de l'iode in vivo par des tumeurs infectées avec le vecteur Ad-NIS. Les cellules MCF-7 (cellules tumorales humaines de cancer mammaire) ont été injectées en sous-cutané chez la souris nude (5 x 10"cellules).

Après 15 jours (début d'apparition des tumeurs), des injections intrapéritonéales quotidiennes de thyroxine (2ug/animal/jour) ont été effectuées pendant 15 jours. Le vecteur Ad-CMV-NIS a ensuite été injecté à certains animaux en intratumoral (2 x 109 pfu/tumeur ; taille des tumeurs 3-6mm). Trois jours après l'infection, 6pCi d''2'I sont injectés aux souris en intrapéritonéal. Les comptages sont effectués sur 10 secondes à intervalles de temps réguliers en plaçant la sonde sur la thyroide, sur la tumeur, et juste à proximité de la tumeur. Les résultats sont exprimés en nombre de coups détectés (mesure sur 10 secondes) en fonction du temps.

Figure 6 : scintigraphie d'une souris dont la tumeur a été infectée par le vecteur Ad-NIS. Les cellules MCF-7 (cellules tumorales humaines, cancer mammaire) ont été injectées en sous-cutané chez la souris nude (5 x 106 cellules).

Après 15 jours (début d'apparition des tumeurs), des injections intrapéritonéales quotidiennes de thyroxine (2pg/animal/jour) ont été effectuées pendant 15 jours. Le vecteur Ad-NIS a ensuite été injecté en intratumoral (2 x 109 pfu/tumeur ; taille des tumeurs 3-6mm). Trois jours post-infection, 50 tCi d''-'I sont injectés en intrapéritonéal aux souris. Les comptages sont réalisés 1 heure après injection de )'iode. Le cliché est une vue ventrale de l'animal.

MATERIEL ET METHODES Techniques générâtes de biologie moléculaire Les méthodes classiquement utilisées en biologie moléculaire telles que les extractions préparatives d'ADN plasmidique, la centrifugation d'ADN plasmidique en gradient de chlorure de césium, l'électrophorèse sur gels d'agarose ou d'acrylamide, la purification de fragments d'ADN par électroélution, les extractions de protéines au phénol ou au phénol-chloroforme, la précipitation d'ADN en milieu salin par de l'éthanol ou de l'isopropanol, la transformation dans Escherichia coli, etc... sont bien connues de l'homme de métier et sont abondamment décrites dans la littérature

[Maniatis T. et al.,"Molecular Cloning, a Laboratory Manual", Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N. Y., 1982 ; Ausubel F. M. et al. (eds)."Current Protocols in Molecular Biology", John Wiley & Sons, New York, 1987].

Pour les ligations, les fragments d'ADN peuvent tre séparés selon leur taille par électrophorèse en gels d'agarose ou d'acrylamide, extraits au phénol ou par un mélange phénol/chloroforme, précipités à l'éthanol puis incubés en présence de )'ADN ligase du phage T4 (Biolabs) selon les recommandations du fournisseur.

Le remplissage des extrémités 5'proéminentes peut tre effectué par le fragment de Klenow de 1'ADN Polymérase I d'E. coli (Biolabs) selon les spécifications du fournisseur. La destruction des extrémités 3'proéminentes est effectuée en présence de l'ADN Polymérase du phage T4 (Biolabs) utilisée selon les recommandations du fabricant. La destruction des extrémités 5'proéminentes est effectuée par un traitement ménagé par la nucléase S 1.

La mutagénèse dirigée in vitro par oligodéoxynucléotides synthétiques peut tre effectuée selon la méthode développée par Tavlor et al. [Nucleic Acids Res. 13 (1985) 8749-8764] en utilisant le kit distribué par Amersham.

L'amplification enzymatique de fragments d'ADN par la technique dite de PCR [Polymérase-catalyzed Chain Reaction. Saiki R. K. et al., Science 230 (1985) 1350-1354 ; Mullis K. B. et Faloona F. A., Meth. Enzym. 155 (1987) 335-350] peut tre effectuée en utilisant un"DNA thermal cycler" (Perkin Elmer Cetus) selon les spécifications du fabricant.

La vérification des séquences nucléotidiques peut tre effectuée par la méthode développée par Sanger et al. [Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 74 (1977) 5463- 5467] en utilisant le kit distribué par Amersham.

EXEMPLES Exemple 1 : construction d'un adénovirus recombinant défectif exprimant le gène codant pour le transporteur spécifique de l'iode (Na+/I- Svmporteur) NIS.

Cet exemple décrit la construction d'un vecteur adénoviral défectif portant le gène codant pour le transporteur spécifique de l'iode (Na~/I~ Symporteur) NIS (ref Genbank U60282) lié de manière opérationnelle au promoteur CMV.

Le fragment comportant les nucléotides 74 à 2046 de la séquence du gène nis de rat (Dai et al., 1996, Nature 379 : 458-460) a été clone sous forme d'un fragment AatII-HindIII aux sites PvuII-HindIII du plasmide pCEP-4 (Invitrogen). Le site AatII du fragment AatII-HindIII a préalablement été rendu bout franc par traitement à la nucléase Mung Bean (Biolabs) avant insertion dans le plasmide pCEP-4. Le plasmide résultant est nommé pAB 1.

Le plasmide pAB 1 (figure 1) comprend le gène nis dont 1'expression est placée sous contrôle de 1'enhancer/promoteur du cytomégalovirus CMV (nucléotides -522 à +72) (Boshart et al. 1985, Cell, 41 : 521-530) et suivi du site de polyadénylation du virus SV40 (nucléotides 2538 à 2759 d'après génome de SV40, Genbank locus SV4CG).

L'ensemble formé par (i) 1'enhancer/promoteur du cytomegalovirus, (ii) 1'ADNc du gène nis et (iii), le site de polyadénylation du virus SV40 est appelé ci- après la cassette d'expression de NIS.

Le fragment SspI-EcoRV (3711 bp) du plasmide pAB 1 comprenant la cassette d'expression de NIS définie ci-dessus est ensuite clone dans le vecteur navette pXL3048 préalablement linéarisé par EcoRV. Le vecteur résultant est nommé pAB2 (figure 2). Le plasmide pXL3048 est un plasmide dérivé du plasmide Kan-SacB (Crouzet et al. PNAS vol 94 pl414-1419, 1997) comprenant l'extrémité gauche du génome de l'adénovirus de type 5 (nucléotides 1-382), un polylinker comprenant trois sites uniques de clonage et une partie du gène pIX (nucléotides 3446-4296).

L'adénovirus Ad-NIS a été construit selon la méthode décrite par Crouzet et al. (PNAS vol 94 p 1414-1419,1997) par recombinaison homologue entre le plasmide pAB2 et le plasmide pXL3215.

Le plasmide pXL3215 contient le génome d'un adénovirus contenant une cassette RSV-LacZ insérée dans sa région El (tEI 386-3446) et une délétion dans la région E3 (AE3 28592-30470).

Le principe de la construction est décrit dans la figure 2. Le plasmide pXL3215géneré par cette double recombinaison contient le génome d'un adénovirus de type 5 détété pour la région E I et E3 et contenant la cassette d'expression CMV- NIS-poly A SV40. Cette construction est vérifiée par séquençage de la cassette d'expression de NIS.

L'adénovirus Ad-NIS est généré par infection de 1'ADN de pXL3215 digéré par Pacl dans ! a lignée 293 (ATCC CRL-1573). Les particules virales obtenues sont ensuite amplifiées dans cette mme lignée et des stocks de virus produits sont purifiés par double gradient de CsCI.

Les particules virales sont ensuite utilisées pour étudier 1'expression du gène NIS dans différentes) ignées tumorales.

Exemple 2 : accumulation de l'iode in vitre par des cellules tumorales infectées avec le vecteur Ad-NIS La capacité d'accumulation de l'iode dans les cellules infectées avec le vecteur Ad-NIS a été testée dans différentes lignées : des cellules tumorales épithéliales SiHa (ATCC HTB-35), des cellules tumorales mammaires MCF7 (ATC HTB-22) et T-47D (ATCC HTB-133) et des cellules tumorales d'origine prostatique DU-145 (ATCC HTB-81) et PC-3 (ATCC CRL-1435).

Les cellules sont infectées avec le vecteur Ad-NIS à une multiplicité d'infection de 10. La capacité des cellules à capter l'iode est testée 28 à 29h après infection selon la méthode de Weiss et al. [Endocrinology (1984) 114 : 1090-1098].

Les cellules infectées sont lavées avec du tampon HBSS et mises en contact pendant le temps indiqué dans la figure 3 avec 0,5ml de tampon HBSS contenant 0,1 pli d'iode 125. A la fin du temps de contact, les cellules sont lavées une fois avec du tampon HBSS froid, puis incubées pendant 20 min avec de l'éthanol froid. La quantité d'iode 125 captée par les cellules est déterminée par dosage de la radioactivité de l'éthanol, avec un compteur gamma.

Les résultats obtenus avec ! a lignée SiHa sont présentés dans la figure 3 et peuvent tre comparés à ceux obtenus avec les cellules FRTL-5 (cellules thyroidiennes de rat, captant l'iode naturellement et servant de contrôle).

L'inhibition spécifique du transport de l'iode par NIS a été testée en présence de perchlorate. Le NaCIO, est ajouté dans le tampon HBSS contenant l'iode 125 de façon à obtenir des concentrations finales de 30,300 et 3000 pM. Le temps de contact des cellules avec l'iode 125 est de 15 minutes. Les résultats sont présentés dans la figure 4. Les résultats sont exprimés en nombre de coups pour un mme nombre de cellules.

Les cellules FRTL-5 (contrôle positif) fixent une certaine quantité d'iode, et on observe que ce phénomène est très rapide (maximum presque atteint après 15 min de contact). Les résultats obtenus montrent que les cellules SiHa (cellules pithliales humaines, tumorales) non infectées ne captent pas d'iode. De manière surprenante, on observe que les cellules SiHa infectées avec le vecteur Ad-NIS captent jusqu'à 5 fois plus d'iode que les cellules FRTL-5. On remarque également que la cinétique initiale du phénomène est comparable à celle observée pour les cellules FRTL-5. La spécificité du transfert a été confirmée par infection avec un adénovirus contrôle ne comportant pas le gène nis (résultat non présenté).

Les résultats des expériences d'inhibition (figure 4) montrent que la fixation d'iode dans les cellules FRTL-5 est inhibée à plus de 90% à partir d'une concentration en NaCIO, de 30pM (93% pour 30 pM, 95% aux concentrations supérieures). II est intéressant de noter que, par contre, pour les cellules SiHa infectées par Ad-NIS, la concentration en inhibiteur nécessaire pour obtenir le mme taux d'inhibition est beaucoup plus élevée (40% d'inhibition seulement pour 30uM en NaCIO4,92% d'inhibition pour 3001lu en NaCIO4 et 98% pour 3 mM en NaCIO4).

L'expérience d'inhibition permet de conclure que la capacité des cellules SiHa infectées par Ad-NIS à capter l'iode est bien due à 1'expression de NIS dans ces cellules, puisque le phénomène est inhibé par NaCIO4 qui est un inhibiteur compétitif et spécifique du transport des ions iodures par NIS. Des résultats similaires ont étés obtenus pour d'autres lignées cellulaires tumorales humaines (cellules tumorales mammaires : MCF-7 et T47-D, et cellules tumorales d'origine prostatique : DU-145 et PC-3).

Les résultats concernant l'inhibition par NaCIO4 confirment également que l'infection de cellules tumorales par Ad-NIS conduit à un niveau d'expression de NIS particulièrement levé, puisque des concentrations élevées en NaCIO4 sont requises pour inhiber le phénomène (dans le cas des cellules SiHa, et par rapport aux cellules FRTL-5, une concentration en inhibiteur 10 fois supérieure est requise pour obtenir un mme taux d'inhibition).

L'ensemble de ces résultats démontre que le vecteur adénoviral est un vecteur particulièrement avantageux pour le transfert du gène nis et que l'utilisation d'un tel vecteur permet d'atteindre un niveau d'accumulation de l'iode dans des cellules tumorales non thyroïdiennes de l'ordre de 5 fois supérieur à celui observe pour les cellules captant naturellement 1'iode 125.

Exemple 3 : accumulation de l'iode in vivo par des tumeurs infectées par le vecteur Ad-NIS Des cellules MCF-7 (cellules tumorales humaines de cancer mammaire) ont été injectées en sous-cutané chez la souris nude (5 x 106 cellules). Après 15 jours (début d'apparition des tumeurs), des injections intrapéritonéales quotidiennes de thyroxine (2ug/animal/jour) ont été effectuées pendant 15 jours, de façon à mettre la thyroide des animaux au repos. Le vecteur Ad-NIS a ensuite été injecté à certains animaux en intratumoral (2 x 10"pfu/tumeur) ; le diamètre des tumeurs au moment de l'injection était de 3 à 6 mm. Trois jours après l'infection, 6 pCi d'l-I ont été injectés en intrapéritonéal aux souris, et des comptages sur 10 secondes ont été effectués à l'aide d'une sonde pouvant tre déplacée à différents endroits de l'animal. Des comptages ont été effectués à intervalles de temps réguliers en plaçant la sonde sur la thyroide, sur la tumeur, et juste à proximité de la tumeur. Les résultats sont présentés sur la figure 5. Les résultats sont exprimés en nombre de coups détectés (mesure sur 10 secondes) en fonction du temps.

Dans les animaux contrôles (sans administration de Ad-NIS), la thyroide fixe une petite quantité d'iode, mais grâce au traitement par la thyroxine, on n'observe pas d'accumulation importante de l'iode dans la thyroide au cours du temps. On

n'observe pas de fixation d'iode dans la tumeur dans les animaux contrôles (voir figure 5A). Le fait que NIS soit naturellement présent dans l'estomac, ainsi que le fait que l'iode soit éliminé par voie urinaire expliquent les valeurs relativement élevées observées (bruit de fond relativement important).

Les animaux traités avec Ad-NIS administré en intratumoral (figure 5B) ne présentent pas d'accumulation importante d'iode au niveau de la thyroïde (effet du traitement par la thyroxine). Sur ces animaux, les quantités d'iode détectées en plaçant la sonde sur la tumeur sont systématiquement plus élevées que les quantité d'iode détectées à proximité de la tumeur, ce qui indique qu'il y a bien fixation de l'iode dans la tumeur après traitement par le vecteur Ad-NIS.

Afin de confirmer la fixation de l'iode au niveau des tumeurs, des mesures de radioactivité par scintigraphie ont été réalisées sur les animaux traités par le vecteur Ad-NIS. Les résultats obtenus sont présentés sur la figure 6. Les animaux utilisés ont été préparés selon le protocole décrit ci-dessus, sauf que 50 pCi d''-RI ont été injectés en intrapéritonéal ; l'image a été obtenue une heure après injection de l'iode.

Le cliché est une vue ventrale de l'animal. Quatre zones de fixation de l'iode sont visibles : la thyroide, la vessie (voie d'élimination de l'iode) 1'estomac (dans lequel NIS est exprimé naturellement), et la tumeur. Ces résultats de scintigraphie confirment les résultats précédents obtenus par comptage et montrent que les vecteurs selon l'invention permettent d'obtenir une fixation importante de 1'iode au niveau des tumeurs.

Exemple 4 : évaluation quantitative de 1'accumulation de l'iode ilt vivo par des tumeurs infectées par le vecteur Ad-NIS Des cellules SiHa (5 x 106 cellules) ont été injectées en sous-cutané chez la souris nude (n=12) sur les deux flancs de l'animal. Après 15 jours (début d'apparition des tumeurs), des injections intrapéritonéales quotidiennes de thyroxine (t'pg/animal/jour) ont été effectuées pendant 15 jours, de façon à mettre la thyroide des animaux au repos. Pour chaque animal, le vecteur Ad-NIS a ensuite été injecté en intratumoral (2 x 109 pfu/tumeur) sur une tumeur ; 1'autre tumeur servant de contrôle ; le diamètre des tumeurs au moment de l'injection était de 5 à 8 mm. Trois jours après

1'infection, 6 uCi d''-'I ont été injectés en intrapéritonéat aux souris. Les animaux ont été sacrifiés 90 minutes après l'administration d"-51. et la quantité d"-51 a été déterminée. Les résultats sont présentés dans le tableau 1. Les résultats sont exprimés en pourcentage d"-51 administré par gramme de tissu. souris Tumeur traitée Tumeur ratio avec contrôle Ad-NIS (% 125 I (% 125 I administré/g administré/g de tissu) de tissu) 1 9.53 1.75 5.4 2 16.81 0.88 19. 1 3 5.1 4 7.9 5 4.2 6 12.91 0.92 14.0 7 12.76 1. 16 11. 0 8 3.9 9 10.75 1.45 7.4 10 14.52 0. 85 17. 1 11 10. 10 0. 41 24.6 12 10.91 1.17 9.3 10.46+3. 79 1. 14+0. 36 10. 8+6.6

Les résultats obtenus montrent que les tumeurs traitées avec le vecteur Ad-NIS sont capables d'accumuler l'iode 1-5l de manière très efficace et jusqu'à 25 fois plus que dans les tumeurs non traitées. Ces résultats confirment les résultats précédents et montrent que les vecteurs selon l'invention permettent d'obtenir une fixation importante de l'iode au niveau des tumeurs.