温度、 盐渍和干旱等逆境胁迫会对高等植物的生长发 育造成严重危害， 导致作物产 量降低， 品质下降， 严重威胁农业生产和自然环境。 其中干旱对作物产量的影响，在诸多 自然逆境中占首位，其危害相当于其它灾害之 和，是许多地区农业发展的瓶颈。据统计， 世界干旱、半干旱地区占陆地面积的 34%;我国干旱、半干旱地区约占国土面积的 52%， 年受旱面积达 200— 270万公顷， 全国灌溉区每年缺水约 30亿立方米， 因缺水而少收粮 食 350— 400亿公斤； 特别是我国主要产粮区如华北、 东北和西北， 是我国缺水最严重的 地区， 春旱频繁达到十年九遇。

植物耐旱性大多属于多基因控制的数量性状， 利用常规育种方法改良作物的抗旱性 受到周期长、 优异种质资源缺乏的限制。 近年来的转录组学、 蛋白组学和基因表达调控 的研究初步揭示了植物干旱胁迫的作用分子机 理。 目前，利用干旱胁迫相关基因提高植物 的抗旱能力， 已经成为植物抗逆分子生物学的研究热点和植 物抗逆基因工程重要的研究 方向。

植物受到逆境胁迫时会产生相应的应答反应， 以降低或消除逆境胁迫给植物带来的 危害。 植物的这种应答反应是一个涉及多基因、 多信号途径及多基因产物的复杂过程。 但就目前的研究状况而言， 由于其机制十分复杂， 许多植物对逆境的生物化学和生理学 响应机制仍有待深入研究。 在抗逆应答基因的功能及表达调控方面的研究 将对植物抗逆 相关的信号传递途径之间的联系以及整个信号 传递网络系统的研究提供重要的基础。 发明内容 本发明人利用 SSH (抑制差减杂交） 与 RACE ( cDNA末端快速扩增） 相结合的方 法克隆了小盐芥的一个脱水素蛋白 （本文命名为 DH2 的编码基因， 并测定了其 DNA 序列。 并且发现将其导入植物超量表达后， 可明显改善转基因植株的耐旱性， 而且这些 性状可稳定遗传。

本发明第一方面提供小盐芥的一个脱水素蛋白 Dm 的编码基因 （本文命名为

ThDH2) ， 其序列为 SEQ ID NO: 2。

本发明第二方面提供一种重组表达载体， 其含有本发明第一方面所述的基因并且所 述基因的核苷酸序列与所述表达载体的表达控 制序列可操作地连接； 优选地， 所述载体 为附图 2所示的 35S-7 )H2-2300载体。

本发明第三方面提供一种重组细胞， 其含有本发明第一方面所述的基因或者本发明 第二方面所述的重组表达载体； 优选地， 所述重组细胞为重组农杆菌细胞。

本发明第四方面提供一种改善植物耐旱性的方 法， 包括： 将本发明第一方面所述的 基因或者本发明第二方面所述的重组表达载体 导入植物或植物组织并使所述基因表达； 优选地， 所述植物是拟南芥。

本发明第五方面提供一种制备转基因植物的方 法， 包括： 在有效产生植物的条件下 培养含有本发明第一方面所述的基因或者本发 明第二方面所述的重组表达载体的植物或 植物组织； 优选地， 所述植物是拟南芥。

本发明第六方面提供本发明第一方面所述的基 因、 本发明第二方面所述的重组表达 载体或者本发明第三方面所述的重组细胞用于 改善植物耐旱性以及用于植物育种的用途; 优选地， 所述植物是拟南芥。

本发明第七方面提供本发明第一方面所述的基 因编码的蛋白质， 其氨基酸序列如 SEQ ID NO: 1所示。 附图说明 图 1是 T DH2的植物表达载体 C35S-7 )H2-2300)的构建流程 （图 la-lb)。

图 2是 T DH2的植物表达载体 C35S-7 )H2-2300)的质粒图。

图 3是 7 )H2 T1代转基因拟南芥植株 （图中， T1B3 ) 和作为对照的非转基因拟南 芥植株 （图中， CK) 的耐旱模拟实验结果。 （图 3a为正常生长 20天的拟南芥植株； 图 3b为正常生长 20天后干旱处理 14天的拟南芥植株）。

图 4是转基因 T1代拟南芥植株和非转基因对照植株在转录水� ��上的蛋白表达验 证结果。 M为 DNA Ladder Marker (DL2000,TakaRa), 1-7为耐旱转基因拟南芥 T1代 植株 （依次为： T1B1、 T1B2、 T1B3、 T1B4、 T1B5、 T1B6、 T1B7), 8-11为不耐旱转基 因拟南芥 T1代植株， 12-15为非转基因拟南芥对照。 具体实施方式 下面结合非限制性实施例对本发明进行进一步 说明。所述实施例仅出于示例性目的， 并非意在限制本发明的范围。

下面实施例中提到的限制性内切酶均购自 New England Biolabs公司。 实施例 1、 干旱胁迫下小盐芥 SSH文库构建：

具体方法为：

利用 Clontech公司的 PCR-select™ cDNA Subtraction Kit所示的方法通过抑制差减杂 交方法构建差减文库。在实验中以生长过程中 干旱处理的小盐芥幼苗的叶片的 mRNA作 为样本 （tester), 以未处理的小盐芥幼苗的叶片的 mRNA作为对照 （driver)。 具体步骤 如下：

( 1 ) 供试材料：

小盐芥 （ T ellungiella halophila, 购自中国内蒙古巴彦淖尔市乌兰布和沙漠绿色 植物园盐生植物繁育中心） ， 播种到灭过菌的蛭石上， 在 25 °C、 光周期 16小时光照 /8小时黑暗（光强 2000— 3000 Lx)条件下培养，每周浇 1/2MS培养基（ 9.39 mM KN0 ₃ ， 0.625 mM KH ₂ P0 ₄ ， 10.3 mM NH ₄ N0 ₃ , 0.75 mM MgS0 ₄ ， 1.5 mM CaCl ₂ ， 50 μΜ KI， 100 μΜ Η ₃ ΒΟ ₃ ， 100 M MnSO ₄ ， 30 μΜ ZnS0 ₄ , 1 μΜ Να ₂ Μο0 ₄ , 0.1 μΜ CoCl ₂ , 100 μΜ Na ₂ EDTA, 100 M FeSO ₄ ) —次。 当苗株培养 1个月左右时用于实验。

( 2 ) 材料处理：

将供试幼苗分为 2组， 每组 4盆， 每盆 1株。 第一组为对照组， 在 25 °C、 光周 期 16小时光照 /8小时黑暗条件下培养， 正常浇灌。 第二组为干旱处理组， 25 °C、 光 周期 16小时光照 /8小时黑暗条件下培养， 停止浇灌， 处理 10天， 处理完毕后及时剪 取两组幼苗顶端 1/3的叶片， 用液氮迅速冷冻后， 于 -70 °C冰箱中保存。

( 3 ) 总 RNA提取：

分别取对照组和干旱处理组的小盐芥叶片 0. 1 g， 用植物 RNA提取试剂盒（购自

Invitrogen) 提取小盐芥叶片的总 RNA。 用 HITACHI公司的紫外分光光度计 U-2001 测定总 RNA在 260 nm和 280 nm的吸光度值， OD ₂₆₀ /OD ₂₈₀ 比值为 1.8-2.0， 表明总 RNA纯度较高； 用 1.0%的琼脂糖凝胶电泳检测总 RNA的完整性， 28S条带的亮度 约为 18S条带的 2倍，表明 RNA的完整性良好。使用 Qiagen 公司的 Oligotex mRNA 纯化试剂盒（purification of polyA+ RNA from total RNA, 从总 RNA中纯化 polyA+ RNA)分离 mRNA。

( 4 ) 抑制差减杂交：

按 Clontech公司的 PCR-select ^TM cDNA Subtraction Kit试剂盒所示的方法进行抑制差 减杂交。先将 Driver mRNA和 Tester mRNA分别反转录，得到双链 cDNA,再以 2 Tester cDNA禾 P 2 g Driver cDNA作为起始材料进行差减杂交。 在 37°C水浴下分别将 Tester cDNA和 Driver cDNA用 Rsa I 酶切 1.5 h， 然后将酶切后的 Tester cDNA分成两等份， 连接上不同的接头， 而 Driver cDNA不连接头。 两种连有不同接头的 Tester cDNA分别 与过量的 Driver cDNA混合， 进行第一次正向差减杂交。 将两种第一次正向差减杂交的 产物混合， 再与新变性的 Driver cDNA进行第二次正向差减杂交，然后通过两次� �制性 PCR扩增差异表达的片段， 使其得到富集。

为了增加获得表达序列标签 （Expressed sequence tag, EST) (unigene)的有效性， 避 免基因无酶切位点及所获得序列在非翻译区， 本实验同时用内切酶 Haelll按上述步骤对 Tester cDNA和 Driver cDNA进行酶切并先后进行两次正向差减杂交和� �次抑制性 PCR 扩增， 最后合并两组正向差减杂交 cDNA片段的第二次抑制性 PCR产物。

( 5 ) cDNA差减文库的构建与初步筛选、 克隆、 鉴定

依照 pGEM-T Easy试剂盒（购自 Promega)的说明，将上述合并的正向差减杂交 cDNA 片段的第二次 PCR产物 （使用 QIAquick PCR Purification Kit纯化， 购自 Qiagen) 与 pGEM-T Easy载体连接， 其具体步骤如下： 在 200 μΐ PCR管中依次加入下列成分： 纯化 的正向差减杂交 cDNA片段的第二次 PCR产物 3 μ1、 2 Χ Τ4连接酶缓冲液 5 μ1、 pGEM-T Easy载体 1 μ1、 Τ4 DNA连接酶 1 μΐ ， 于 4°C连接过夜。然后取 10 μ 连接反应产物， 加 入到 100 感受态大肠杆菌 JM109 (购自 TAKARA)中，冰浴 30 min、 42°C热休克 60 s、 冰浴 2 min,另加 250 μL LB液体培养基（含有 1%胰蛋白胨（Tryptone,购自 OXOID)、 0.5% 酵母提取物 （Yeast Extract, 购自 OXOID ) 禾 P 1% NaCl (购自国药）） 置于 37°C 摇床中， 以 225 r/min振荡培养 30 min, 然后从中取 200 μ 菌液涂布于含 50 g/ml氨苄 青霉素、 40 g/mL X-gal、 24 g/mL IPTG (X-gal ( 5-溴 -4氯 -3-吲哚 - β -D-半乳糖苷） 和 IPTG (异丙基 - β -D-硫代吡喃半乳糖苷） 购自 TAKARA) 的 LB固体培养板上， 37°C培 育 18小时。 计数培养板中直径 > 1 mm的清晰白色及蓝色菌落数， 随机挑取 198个白色 菌落 (编号： YLS-001至 YLS-198)。 将所挑取的白色菌落分别接种于 96孔细胞培养板 (CORNING)中含有 50 g/mL氨苄青霉素的 LB液体培养基， 37°C培养过夜后加甘油至甘 油终浓度 20% (体积比）， 于 -80°C保存备用。 对所培养的菌落克隆以巢式 PCR (引物 Primer 1和 Primer 2R， 来自 Clontech公司的 PCR-select™ cDNA Subtraction Kit试剂盒） 进行菌液 PCR扩增验证，得到 166个阳性克隆，然后将所有阳性克隆送英潍捷 基（上海） 贸易有限公司测序。

( 6) 差异克隆的 cDNA测序分析：

将 DNA 测序结果去除载体和不明确序列及冗余的 cDNA 后， 共得到 123 个

EST(unigene) ₀ 经分析有 22个重叠群， 有 101个单一的序列。 经 BlastN发现其中 53条 unigene在 GenBank 中有同源序列， 21条 EST功能未知或者为假定蛋白， 另有 27条未 获得同源匹配， 推测可能是处于 3'或 5'末端非翻译区的较短序列。 实施例 2 小盐芥脱水素蛋白编码基因 ThDH2的克隆

克隆子 YLS-93去掉冗余 DNA后， 序列为 SEQ ID NO: 3， 序列分析表明该序列的 编码的蛋白质属于脱水素蛋白，本文将克隆子 YLS-93对应的全长编码基因命名为 7 )H2， 其对应的蛋白命名为 Z)H2。

SEQ ID NO: 3

1 GAGAAGAAGG AGAAGAAGAA GAAGGTGTGT GGTCACAACA AGGAAGATGC TCCAGATCAG 61 TGTGAAACAG AGGAGAAGAA AAGCATCATG GATAAGATCA AGGACAAGCT TCCTGCTGCT 121 AAAGGTCATG ACCTAGCCAA CAAGGCTGAT GAACACGAGG ATGGGAAGGA GAAAGGGTTT 181 ATGGAGAAGA TGAAGGATAA GCTTCCCGGG GGTCACCATG GAAACCCTGA ACCTGAACCT 241 AATCATGTCA ACAGCAAGGA GAAAGGGTTT ATGGAGAAGA TCAAGGAGAA GCTTGCTGGT 301 CATACCAAGC ATGATCATGA CGATGGTGAG AAGAAGAAGG AAACCTAG

DH2全长编码基因的克隆

根据已经获得的 SEQ ID NO: 3序列分析： SEQ ID NO: 3为编码基因 7¾DH2的

3 ' 端序列。 根据已经获得的 SEQ ID NO: 3序列， 设计如下三条特异性引物， 作为反转录引 物及 5 'RACE的特异性引物。

YLS-93GSP1 : SEQ ID NO: 4：

TTCAGGGTTTCCATGGTGAC YLS-93GSP2 : SEQ ID NO: 5：

CGGGAAGCTTATCCTTCATC YLS-93GSP3 : SEQ ID NO:6:

GAGAAGAAGGAGAAGAAGAAG

试剂盒自带通用引物：

AAP: SEQ ID NO: 7： GGCCACGCGTCGACTAGTACGGGIIGGGIIGGGIIG

AUAP: SEQ ID NO: 8：

GGCCACGCGTCGACTAGTAC 实验步骤按试剂盒说明书操作 （5' RACE System for Rapid Amplification of cDNA Ends试剂盒购自 Invitrogen公司）。

以 YLS-93GSP1(SEQ ID NO: 4)为反转录引物， 以干旱处理组小盐芥叶片提取的 mRNA为模板进行反转录， 获得 cDNA模板， 然后按照上述 5' RACE试剂盒说明书中的 步骤加 Poly C尾，以加尾后的产物为模板进行第一轮 PCR扩增，所用引物为 SEQ ID NO: 4与通用引物 SEQ ID NO: 7 (试剂盒自带， I 为次黄嘌吟修饰的 a、 c、 g或 t)， 具体步 骤如下：

50 μΐ PCR反应体系： 5 μΐ ΙΟ Εχ Buffer、 3 μΐ 2.5 mM的 dNTP、 2.0 μΐ 上述 mRNA 反转录的 cDNA、 1.0 μΐ Ex Taq (购自 TAKARA)、 10 μΜ的引物 SEQ ID NO: 4和 SEQ ID NO: 7各 2.0 μ1， 以及 35 μΐ的双蒸水。 PCR反应条件： 94°C预变性 5 min, 33个循环（94°C 变性 45s， 58°C退火 45 s， 72°C延伸 1 min)， 72°C延伸 10 min。

所得的 PCR产物用双蒸水稀释 50倍后取 2.0 μΐ作为模板， 用 SEQ ID NO: 5与通用 引物 SEQ ID NO: 8进行第二轮 PCR扩增， 具体步骤如下：

50 μΐ PCR反应体系： 5 μΐ ΙΟ Εχ Buffer、 3 μΐ 2.5 mM的 dNTP、 2.0 μΐ稀释的第一轮 PCR产物、 1.0 l Ex Taq、 10 μΜ的引物 SEQ ID NO: 5和 SEQ ID NO: 8各 2.0 μ1， 以及 35 μΐ的双蒸水。 PCR反应条件： 94 °C预变性 5 min， 33个循环 （94°C变性 45 s， 58°C退 火 45 s， 72°C延伸 l min)， 72°C延伸 10 min。 回收第二次 PCR产物中约为 460bp大小的 条带 （Gel Extraction Kit购自 OMEGA), 并将其连接到 pGEM-T Easy Vector载体， 然后 转化到 JM109 (具体方法同上）， 随机挑取 10个白色菌落分别接种于含有 50 g/mL氨苄 青霉素的 LB液体培养基中， 37°C培养过夜后加甘油至甘油终浓度 20% (体积比）， -80°C 保存备用。 用引物 SEQ ID NO: 5与 3'端引物 SEQ ID NO: 6进行菌液 PCR扩增 （反应体 系及反应条件同上）， 得到 4个阳性克隆 （YL16-1、 YL16-3、 YL16-5和 YL16-6) ，送英 潍捷基 （上海） 贸易有限公司测序， 获得该基因的 cDNA的一段 5'端序列。

所得的 5'RACE产物克隆子 YL16-3测序获得序列为 SEQ ID NO: 9：

1 GCGGGGGGGC GGATGGCGGA TCATCCTCGT TCCAGTGAGC AGCAGGAAGC CGATGATGCA

61 GCTTCCAAAG GCTGTGGGAT GTTTGACTTT CTCAAGAAGA AGCCCGAAGA CGAAGCTTCC 121 TCCGAGAATG CCGTTGTGAC GACGACCAAG GAAGACAAGG ATGCGGAGAA GCCTTCTCTC

181 GCTGAAAGAC TCCACCTTTC TGACAGCTCT TCATCAAGTG ACGAGGAAGC GGGTGGAAAT

241 GGGGAAAAGA AGGAGAAGAA GGAGAAGAAG AAGAAGGTGT GTGGTCACAA CAAGGAAGAT 301 GCTCCAGATC AGTGTGAAAC AGAGGAGAAG AAAAGCATCA TGGATAAGAT CAAGGACAAG 361 CTTCCTGCTG CTAAAGGTCA TGACCTAGCC AACAAGGCTG ATGAACACGA GGATGGGAAG 421 GAGAAAGGGT TTATGGAGAA GATGAAGGAT AAGCTTCGCG 将 5 'RACE获得的序列 SEQ ID NO : 9， 与前述获得的序列 SEQ ID NO: 3拼接， 获得 SEQ ID NO: 10 :

GCGGGGGGGC GGATGGCGGA TCATCCTCGT TCCAGTGAGC AGCAGGAAGC CGATGATGCA

61 GCTTCCAAAG GCTGTGGGAT GTTTGACTTT CTCAAGAAGA AGCCCGAAGA CGAAGCTTCC

121 TCCGAGAATG CCGTTGTGAC GACGACCAAG GAAGACAAGG ATGCGGAGAA GCCTTCTCTC

181 GCTGAAAGAC TCCACCTTTC TGACAGCTCT TCATCAAGTG ACGAGGAAGC GGGTGGAAAT

241 GGGGAAAAGA AGGAGAAGAA GGAGAAGAAG AAGAAGGTGT GTGGTCACAA CAAGGAAGAT

301 GCTCCAGATC AGTGTGAAAC AGAGGAGAAG AAAAGCATCA TGGATAAGAT CAAGGACAAG

361 CTTCCTGCTG CTAAAGGTCA TGACCTAGCC AACAAGGCTG ATGAACACGA GGATGGGAAG

421 GAGAAAGGGT TTATGGAGAA GATGAAGGAT AAGCTTCGCG GGGGTCACCA TGGAAACCCT

481 GAACCTGAAC CTAATCATGT CAACAGCAAG GAGAAAGGGT TTATGGAGAA GATCAAGGAG

541 AAGCTTGCTG GTCATACCAA GCATGATCAT GACGATGGTG AGAAGAAGAA GGAAACCTAG 根据 SEQ ID NO : 10序列分析， SEQ ID NO : 10 为 7¾DH2的全长序列。根据 SEQ ID NO: 10序列设计一对引物如下：

ThDH2F : SEQ ID NO: 1 1：

ATGGCGGATCATCCTCGTTC

ThDH2R: SEQ ID NO: 12：

CTAGGTTTCCTTCTTCTTCTC AP : SEQ ID NO: 13：

GGCCACGCGTCGACTAGTACTTTTTTTTTTTTTTTTT 通过 SEQ ID NO: 11和 SEQ ID NO: 12来克隆 ThDH2全长编码序列。

提取干旱处理组小盐芥的 RNA作为模板,以引物 SEQ ID NO: 13为反转录引物， 反转录获取小盐芥 cDNA，然后采用 stratagene的 PfuUltra II Fusion HS DNA Polymerase, 以上述获得的小盐芥 cDNA 为模板进行 PCR 反应。 50 μΐ PCR 反应体系： 5 μΐ 10 X PfuUltra II reaction Buffer 0.5 μΐ 25 mM的 dNTP、 2.0 μΐ cDNA 1.0 μΐ PfuUltra II Fusion HS DNA Polymerase、 10 μΜ的引物 SEQ ID NO: 1 1和 SEQ ID NO: 12各 2.0 μ1， 以及 37.5 μΐ的双蒸水。 PCR反应条件： 95 °C预变性 2 min, 35个循环（95 °C变性 25 s， 51 °C退火 25 s， 72°C延伸 30min) ， 72°C延伸 5 min。

PCR扩增产物加 A尾： PCR产物补水至 400 μ1， 先用氯仿抽提一遍去除蛋白， 吸 取上清加入 3 Μ醋酸钠溶液 40 μ1， 加入 2倍体积的无水乙醇， -20°C放置 10分钟， 离 心， 去上清， 晾干， 用 21 μΐ双蒸水溶解。 加入 2.5 μΐ Ι Ο Χ Εχ Buffer 0.5 μΐ 5 mM的 dATP禾 P 1.0 μΐ Ex Taq。 反应条件： 70°C反应 30分钟。将得到的约 600bp的 DNA片段 回收（Omega回收试剂盒），连接至 pGEM T-easy载体上（得到 ThDH2-pGEM质粒）， 然后转化 JM109, 随机挑取 6个白色菌落分别接种于含有 50 g/mL氨苄青霉素的 LB 液体培养基中培养， 37°C培养过夜后加甘油至甘油终浓度 20% (体积） ， -80°C保存备 用。 用引物 SEQ ID NO: 1 1与 SEQ ID NO: 12进行菌液 PCR扩增 （反应体系及反应条 件同上） ， 得到 3个阳性克隆，送至英潍捷基 （上海） 贸易有限公司测序，序列为 SEQ ID NO: 2， 其编码的蛋白的氨基酸序列为 SEQ ID NO: 1

DH2蛋白的氨基酸序列： SEQ ID NO: 1

1 MADHPRSSEQ QEADDAASKG CG FDFLKKK PEDEPSSENA WTTTKEDKD AEKPSLAERL

61 HLSDSSSSSD EEAGGNGEKK EKKEKKKKVC GHNKEDAPDQ CETEEKKS I DKIKDKLPAA 121 KGHDLANKAD EHEDGKEKGF EK KDKLPG GHHGNPEPEP NHVNSKEKGF EKIKEKLPG 181 HTKHDHDDGE KKKET

ThDH2编码基因的核苷酸序列： SEQ ID NO: 2

1 ATGGCGGATC ATCCTCGTTC CAGTGAGCAG CAGGAAGCCG ATGATGCAGC TTCCAAAGGC

61 TGTGGGATGT TTGACTTTCT CAAGAAGAAG CCCGAAGACG AACCTTCCTC CGAGAATGCC

121 GTTGTGACGA CGACCAAGGA AGACAAGGAT GCGGAGAAGC CTTCTCTCGC TGAAAGACTC

181 CACCTTTCTG ACAGCTCTTC ATCAAGTGAC GAGGAAGCGG GTGGAAATGG GGAAAAGAAG

241 GAGAAGAAGG AGAAGAAGAA GAAGGTGTGT GGTCACAACA AGGAAGATGC TCCAGATCAG

301 TGTGAAACAG AGGAGAAGAA AAGCATCATG GATAAGATCA AGGACAAGCT TCCTGCTGCT

361 AAAGGTCATG ACCTAGCCAA CAAGGCTGAT GAACACGAGG ATGGGAAGGA GAAAGGGTTT

421 ATGGAGAAGA TGAAGGATAA GCTTCCCGGG GGTCACCATG GAAACCCTGA ACCTGAACCT

481 AATCATGTCA ACAGCAAGGA GAAAGGGTTT ATGGAGAAGA TCAAGGAGAA GCTTCCTGGT

541 CATACCAAGC ATGATCATGA CGATGGTGAG AAGAAGAAGG AAACCTAG 实施例 3 7¾DH2基因植物表达载体构建

选择植物双元表达载体 pCAMBIA2300 (购自北京鼎国昌盛生物技术有限责任公司） 作为植物表达载体， 用 Pnos启动子替换 ΝΡΤΠ基因含双增强子的 CaMV35S启动子， 以 降低 ΝΡΤΠ蛋白在植物中的表达。 在 Pnos启动子的上游插入 35S启动子及终止子 Tnos分 别作为 T DH2基因的启动子和终止子， ThDH2基因在所述 35 S启动子和 Tnos终止子之间。

用引物 SEQ ID NO: 14和 SEQ ID NO: 15以植物表达载体 pBI121 (购自北京华夏 远洋科技有限公司） 为模板扩增 Pnos, 采用 TaKaRa的 PrimeSTAR HS DNA聚合酶。

50 μ1 ΡΟ 反应体系： 10 μΐ 5 xPS Buffer、 3 μΐ 2.5 mM的 dNTP、 1.0 μΐ ρΒΙ121 1.0 μΐ PrimeSTAR HS DNA聚合酶、 10 μΜ的引物 SEQ ID NO: 14和 SEQ ID NO: 15各 2.0 μ1， 以及 31 μΐ的双蒸水。 PCR反应条件： 94°C预变性 5 min, 33个循环（94°C变性 30 s， 56°C退火 30 s， 72°C延伸 30 s)， 72°C延伸 10 min。 通过 EcoRI、 Bglll酶切后将所得 PCR产物连接到 pCAMBIA2300 ( Promega, T4连接酶盒） 获得 pCAMBIA2300-l。 SEQ ID NO: 14 ：

GCACGAATTCATACAAATGGACGAACGGAT SEQ ID NO: 15 :

ATCCAGATCTAGATCCGGTGCAGATTATTTG 使用引物 SEQ ID NO: 16和 SEQ ID NO: 17以 pBI121为模板扩增 Tnos， 采用 TaKaRa的 PrimeSTAR HS DNA聚合酶。 50 μΐ PCR反应体系： 10 μΐ 5 xPS Buffer 3 μΐ 2.5 mM的 dNTP、 1.0 μΐ pBI121、 1.0 μΐ PrimeSTAR、 10 μΜ的引物 SEQ ID NO: 16和 SEQ ID NO: 17各 2.0 μ1， 以及 31 μΐ的双蒸水。 PCR反应条件： 94°C预变性 5 min， 33 个循环（94°C变性 30 s， 58 °C退火 30 s， 72°C延伸 30 s)， 72°C延伸 10 min。通过 Sacl、 EcoRI酶切后将所得 PCR产物连接到 pCAMBIA2300-l ( Promega T4连接酶盒） 获得 pCAMBIA2300-2。

SEQ ID NO: 16：

AAGG^GCJCGAATTTCCCCGATCGTTCAAA

SEQ ID NO: 17：

TCKGAA rrCCC AGTGAATTCCCGATCT AGT A 使用引物 SEQ ID NO: 18和 SEQ ID NO: 19以 pCAMBIA2300质粒为模板扩增 35S 启动子。采用 TaKaRa的 PrimeSTAR HS DNA聚合酶。 50 μΙ ΡΟ 反应体系： 10 μΐ 5 xPS Buffer 3 μΐ 2.5 mM的 dNTP、 1.0 μΐ稀释 50倍的 pCAMBIA2300质粒、 1.0 μΐ PrimeSTAR HS DNA聚合酶、 10 的引物 8£0 10 ^^0: 18和 8£0 10 ^^0: 19各2.0 ^， 以及 31 μΐ 的双蒸水。 PCR反应条件： 94°C预变性 5 min， 33个循环 （94°C变性 30 s， 50°C退火 30 s, 72°C延伸 30 s)， 72 °C 延伸 10 min。 通过 HindIII、 Pstl酶切后将所得 PCR产物 连接到 （连接方法同上） pCAMBIA2300-2获得 pCAMBIA2300-3 SEQ ID NO: 18：

ACT^GCrJATGGTGGAGCACGACACTCT

SEQ ID NO: 19：

TGACJGC^GAGAGATAGATTTGTAGAGAGAGAC 使用弓 I物 SEQ ID NO: 20和 SEQ ID NO: 21扩增 ThDH2 (模板是实施例 2所获得 的阳性 7¾DH2-pGEM质粒），采用 stratagene的 PfuUltra II Fusion HS DNA Polymerase。 50 μ1 ΡΟ 反应体系： 5 μΐ lOxPfuUltra II reaction Buffer、 0.5μ1 25 mM的 dNTP、 2.0 μΐ ThDH2-pGEM质粒、 1.0 μΐ PfuUltra II Fusion HS DNA Polymerase 10 μΜ的引物 SEQ ID NO:20和 SEQ ID NO: 21各 2.0 μ1， 以及 37.5 μΐ的双蒸水。 PCR反应条件： 95 °C预 变性 2 min，35个循环（95 °C变性 25 s，51 °C退火 25 s，72°C延伸 30s)，72°C延伸 5 min。 通过 Pstl、 Sacl酶切后将所得 PCR产物连接 （连接方法同上） 到 pCAMBIA2300-3， 获得植物表达载体 35S-7¾DH2-2300。

SEQ ID NO: 20：

AACJGC^GATGGCGGATCATCCTCGTTC

SEQ ID NO: 21：

AAGGAGCTC CTAGGTTTCCTTCTTCTTCTC 实施例 4 35S-ThDH2-2300表达载体转化农杆菌

农杆菌 LBA4404 (购自 Biovector Science Lab,Inc) 感受态细胞的制备： 提前 1-2天 将农杆菌 LBA4404在含 50 g/ml利福平和 50 g/ml链霉素的 LB固体培养基上划单斑接 种， 28°C培养 1至 2天。挑取单菌落接种于 5 ml含 50 μ _§ /ιη1利福平和 50 μ _§ /ιη1链霉素的 LB液体培养基中，28°C下摇动培养过夜 (约 12-16小时)至 OD _6(K) 值为 0.4，形成种子菌液。 取 5 ml活化后的菌液 （1 :20的比例） 接种于 100 ml含 50 g/ml利福平和 50 g/ml链霉 素的 LB液体培养基中， 28°C摇动培养 2-2.5小时至 OD ₆ 。。=0.8。冰浴菌液 10 min， 每隔 3 min摇匀一次， 使细菌均匀进入休眠状态。 于 4°C下 4000 g离心 10 min, 弃上清液； 加 入一定量冰预冷的 10%甘油（体积）重悬浮菌体， 4°C下 4000 g离心 10 min, 收集沉淀； 用冰预冷的 10%甘油 （体积） 重复洗 3-4次； 加入适量冰预冷的 10%甘油 （体积） 重新 悬浮细菌沉淀， 即制得 LBA4404感受态细胞， 以 40 μΐ/管将其分装， 于 -70°C保存备用。

转化农杆菌： 在冰上融化感受态细胞， 向 40 μΐ的感受态细胞中加入 1 μΐ实施例 3 中所得的阳性 35S-7 )H2-2300 质粒， 混匀后冰浴约 10 min。 将所述感受态细胞和 35S-ThDH2-2300质粒 DNA的混合物用移液枪转移到冰预冷的电击杯（ 购自 bio-rad)中， 轻敲使悬浮液到达电击杯底部， 注意不要有气泡。 将电击杯放到电击室的滑道上， 推动 滑道将电击杯放至电击室基座电极处。 使用 0.1 cm 规格的电击杯， MicroPulser (购自 bio-rad) 的程序设置为 "Agr"， 电击一次 。 立即取出电击杯， 加入 28°C预热的 LB培养 基。 快速而轻柔的用移液枪将感受态细胞打匀。 将悬浮液转入 1.5 ml的离心管， 28°C， 225 rpm摇动培养 1小时。取 100-200 μΐ的菌液涂布于相应的抗性筛选培养基平板� �（LB 固体培养基， 含 50 μ _§ /ιη1利福平、 50 g/ml链霉素和 50 g/ml卡那霉素）， 28°C培养。 筛 选阳性转化克隆， 并将其菌液于 -70°C保存备用。

实施例 5 利用农杆菌介导的转化法获得转基因拟南芥

待转化植株培养： 拟南芥种子 （哥伦比亚型， 来自美国俄亥俄州立大学的拟南芥生 物资源中心） 播种在泥炭土中， 经 4°C低温处理 3天后， 置于 23°C、 16小时光照 /8小时 黑暗的培养箱中发芽。 7-10天后移栽到装有泥炭土和蛭石（体积比 3:1) 的口径为 7.5cm 的塑料钵中， 每钵栽种 6株， 置于 23°C， 16小时光照 /8小时黑暗的培养箱中生长。 移栽 前每钵浇 1/2MS培养基（9.39 mMKN0 ₃ ， 0.625 mMKH ₂ P0 ₄ ， 10.3 mM H ₄ N0 ₃ , 0.75 mM MgS0 ₄ ， 1.5 mMCaCl ₂ , 50 μΜΚΙ, 100μΜΗ ₃ ΒΟ ₃ ， 100 MMnSO ₄ ， 30 MZnSO ₄ ， 1 μΜ Na ₂ Mo0 ₄ ， 0.1 MCoCl ₂ ， 100 μΜΝα ₂ ΕϋΤΑ, 100 MFeSO ₄ ) 40 ml, 移栽后视土壤湿度 及时补充水分。 在生长期间适当浇灌营养液。 按需要每 3-4周一次 （或者时间更长）。 为 了在每个植株上得到较多的花芽， 当大多数植株第一个花序形成后剪去第一个花 序， 解 除顶端优势， 促使多个次生花序的同步出现。 当大多数花序约 1-10 cm高 （剪去第一个 花序后约 4-8天） 时准备浸染。

农杆菌的培养： 取出实施例 4中保种的农杆菌阳性转化克隆的菌液活化后� � 挑取农 杆菌单菌落接种到 10 mL无菌 LB液体培养基 （含 75 mg/L利福平、 100 mg/L链霉素和 100 mg/L卡那霉素）中， 28°C恒温下 250 r/min振摇过夜培养。再将所得到的菌液按 1%-2% 的体积比接种到 200 mL无菌 LB液体培养基（含 75 mg/L利福平、 100 mg/L链霉素和 100 mg/L卡那霉素） 中， 28°C下 250171^^【亘温振摇使农杆菌的浓度达到00 ₆₍₎₍₎ =1.8， 然后在 4°C下 3000 r/min离心 15 min,弃去上清液后用浸染培养基（该浸染培养� �是 1/2MS培养 基里加 5.0% (w/v) 的蔗糖和 0.05% (500 μΙ7ί) 的 SilwetL-77) 重新悬浮农杆菌， 悬浮 至 OD _6QQ 约 0.80。

花序的浸染： 将上述含农杆菌的浸染培养基加入大口容器中 ， 每个口径 9 cm的容器 中加入 200-300 mL所述含农杆菌的浸染培养基用于浸染。 将植株倒置， 使地上组织全部 浸没在农杆菌悬浮液中 3-5 s， 并要轻轻搅动。 浸润后植株上应该有一层液体膜。 浸染过 的植株放在塑料盘中，用干净的塑料或保鲜膜 覆盖以保湿，然后放置在弱光或暗处过夜， 注意小心防止阳光直射植株。 处理后约 12-24 小时去掉覆盖。 正常培养植株， 植株进一 步生长 3-5周， 直至角果变褐变干。 收获种子， 并将种子用离心管在 4 °C下干燥贮存。

转基因种子筛选： 配制含 1/4 MS (4.695 mMKN0 ₃ ， 0.3125 mM KH ₂ P0 ₄ ， 5.15 mM H4NO3, 0.375 mMMgS0 ₄ ， 0.75 mMCaCl ₂ , 25 μΜΚΙ, 50μΜΗ ₃ ΒΟ ₃ ， 50 MMnSO ₄ ， 15 MZnS0 ₄ ， 0.5 μΜΝα ₂ Μο0 ₄ , 0.05 MCoCl ₂ ， 50 μΜ Na ₂ EDTA, 50 MFeSO4)大量 元素的水溶液， 加入 0.8 % (质量体积比） 琼脂粉， 用微波炉加热至琼脂完全溶化， 待冷 却到 50°C左右， 加入所需量的终浓度为 50 mg-L- ¹ 的卡那霉素， 摇匀后每培养皿中倒入 25 mL， 置实验台冷却凝固后即可播种。把称量好的种 子倒在一张普通复印纸上， 用手指 轻敲复印纸， 将种子均匀地播种在上述琼脂胶上， 盖上培养皿盖， 置 4 °C冰箱冷处理 72 小时后， 移至 23 °C、 16小时光照 /8小时黑暗的培养箱中发芽， 定期统计种子发芽和幼苗 生长情况， 将抗性幼苗及时移栽到营养土中。 移栽后视土壤湿度及时补充水分。 在生长 期间适当浇灌营养液。 取生长 20天的拟南芥叶片 0.1 g， 提取 DNA， 用 SEQ ID NO: 11 和 SEQ ID NO: 12扩增 ThDH2， 50 μΐ PCR反应体系： 5 μΐ ΙΟ Εχ Buffer、 3 μΐ 2.5 mM的 dNTP 2.0 μΐ DNA、 1.0 μΐ Ex Taq、 10 μΜ的引物 SEQ ID NO: 11和 SEQ ID NO: 12各 2.0 μ1， 以及 35 μΐ的双蒸水。 PCR反应条件： 94°C预变性 5 min, 33个循环（94°C变性 45 s， 51 °C退火 45 s， 72°C延伸 45 s)， 72°C延伸 7 min), 将 PCR鉴定为阳性的植株进行编号 ( T1B1-T1B12), 并保存。 实施例 6 过表达 ThDH2的转基因拟南芥 T1代植株的耐旱模拟实验及功能鉴定 灭过菌的蛭石用 1/2MS培养基浸透。 T1B1-T1B6及对照拟南芥种子分别播种在蛭石 上，每盆播种 10颗种子，25 °C、10小时光培养 /14小时暗培养循环，每 7天浇一次 1/2MS, 培养 20天之后， 每盆保留大小较一致的 4-5棵苗， 用于干旱实验。 转基因拟南芥、 对照 拟南芥干旱 14天 （不浇水）， 25 °C、 10小时光培养 /14小时暗培养循环。 T1代转基因植 株 （T0代转基因植株的种子长成的植株） 的抗旱性鉴定表明， 对照植株都萎蔫严重， 而 T1B1、 T1B2、 T1B3、 T1B4、 T1B5、 T1B6六个株系共 24棵 （每株系各 4-5棵） 拟南芥 中 21棵能够存活并继续生长， 显现出明显的耐旱性 （参见图 3a和 3b， 以 T1B3为例， T1B1、 T1B2、 T1B4、 T1CB5、 T1B6 的结果与 T1B3类似， 在此未示出）。 实施例 7 在转录水平上验证 ThDH2蛋白表达

分别取对照拟南芥植株、耐旱转基因拟南芥 T1代植株 (分别属于 T1B1、T1B2、T1B3、

T1B4、 T1B5、 T1B6、 T1B7七个株系）和不耐旱转基因拟南芥 T1代植株的干旱 10天的 叶片各 0.05 g， 用植物 RNA提取试剂盒 （Invitrogen)提取总 RNA。 用 HITACHI公司的 紫外分光光度计 U-2001测定总 RNA在 260 nm和 280 nm的吸光度值， 计算各个 RNA 浓度。 依照 Invitrogen反转录试齐 Ll盒 Superscript III Reverse Transcriptase所示方法进行反 转录（2 总 RNA作为模板，反转录引物为 SEQ ID NO: 13 )。通过 SEQ ID NO: l l和 SEQ ID NO: 12扩增 T DH2， 检测 DH2蛋白相对表达情况。 采用 TaKaRa的 PrimeSTAR HS DNA聚合酶，以反转录的 cDNA为模板进行 PCR 反应。 50 μΐ PCR反应体系： 10 μΐ 5xPS Buffer、 3 μΐ 2.5 mM的 dNTP、 2.0 μΐ cDNA 1.0 μΐ PrimeSTAR HS DNA聚合酶、 10 μΜ的引物 SEQ ID NO: 11禾 P SEQ ID NO: 12 各 2.0 μ1， 以及 30 μΐ的双蒸水。 PCR反应条件： 94°C预变性 5 min, 29个循环（94°C 变性 45 s， 5 C退火 45s， 72°C延伸 45s) ， 72°C延伸 10 min。

产物电泳结果如图 4所示： M为 DNA Ladder Marker (DL2000,TakaRa) ， 1-7 为耐旱转基因拟南芥 T1代植株（依次为： T1B1、 T1B2、 T1B3、 T1B4、 T1B5、 T1B6、 T1B7) ， 8-11为不耐旱转基因拟南芥 Tl代植株， 12-15为非转基因拟南芥对照。 图 中所示 PCR产物电泳条带大小与 7¾DH2的大小一致 （约 600bp) 。 结果表明， 对照 拟南芥没有 ThDH2转录， 耐旱转基因拟南芥 T1代植株中 ThDH2的转录较强， 不耐 旱转基因拟南芥 T1代植株中 ThDH2的转录很弱。