Les cavernomes sont des malformations vasculaires le plus souvent localisées dans le système nerveux central mais également dans la rétine, le foie, les reins, etc.. et sont caractérisés par des cavités capillaires anormalement élargies sans intervention du parenchyme cérébral (Russell et al.). Les symptômes cliniques comprennent des céphalées, des hémorragies, des crises d'épilepsie et des déficits neurologiques focaux. La prévalence des angiomes caverneux est proche de 0,5 % dans la population générale (Otten et al.). Ces angiomes peuvent être transmis de façon héréditaire sous une forme autosomique dominante dans près de 50 % des cas (Rigamonti et al.). 3 localisations (ou loci) de malformations caverneuses cérébrales (CCM) ont été identifiées sur le bras long du chromosome 7, le bras court du chromosome 7 et le bras long du chromosome 3 (7q, 7p et 3q respectivement). Un important effet fondateur a été observé dans la population hispano-américaine, dans laquelle <BR> <BR> <BR> <BR> toutes les familles étaient liées au locus CCM7 localisé sur 7q (Rigamonti et al. ; Dubovsky et al. ; Giinel et al. ; et Craig et al.).

Les inventeurs ont récemment établi les caractéristiques génétiques et cliniques des cavernomes, ainsi que les caractéitiques héréditiares dans une séire de 57 familles franùaises (Labauget et al.). Des investigatons de nuer- imagerie ont confirmé la grande fréquence de lésions multiples dans les cavernomes héréditaires. Une corrélation hautement significative a également été mise en évidence entre le nombre de lésions et l'âge du patient, ce qui suggère fortement la nature dynamique de ces malformations vasculaires appelées également hamartomes. L'analyse de liaison génétique conduite dans 36 de ces familles a montré que 65 % d'entre elles étaient liées au locus CCM1 avec aucun effet fondateur (Laberge et al.).

La taille de l'intervalle génétique contenant le locus CCM1 avait été réduite en 1995 à 4 centimorgans, le locus CCM/étant encadré par D7S2410 et D7S689 (Johnson et al.). Au moyen essentiellement d'une approche in silico, les inventeurs ont établi une carte physique et transcriptionnelle de l'intervalle de CCM1. Parmi les 53 unités transcriptionnelles cartographiées à l'intérieur de la région critique, l'une d'elles correspondait à Kritl, un gène dont le produit interagit avec RaplA (également appelé Krevl), un membre de la famille des gènes Ras impliqués dans la prolifération cellulaire, la différentiation et la morphogenèse (Bos et al.). En utilisant en combinaison la technique SSCP et le séquençage, les inventeurs ont identifié dans 8 familles CCM/non apparentées des mutations conduisant très probablement à une protéine Kritl tronquée. La coségrégation de ces mutations avec le phénotype affecté suggère fortement que Kritl est la protéine mutée dans les familles atteintes de cavernomes liés au locus CCMI et suggère l'implication de la voie de transduction du signal de RaplA dans la vasculogénèse et/ou l'angiogénèse.

En utilisant un contig de YAC préalablement publié, et les bases de données de séquences publiques (The Washington University Chromosome 7 Project), les inventeurs ont construit des contigs de BAC/PAC couvrant 90 % de l'intervalle CCM1, estimé à 1 600 Kb (Figure 1). 20 familles comprenant 179 méioses potentiellement informatives et dont il avait été précédemment montré qu'elles. evaient une probabilit6 a posteriori d'8tre liées supérieure à 90 % ont été utilisées pour cartographier finement ce locus avec des marqueurs polymorphes identifiés au moyen des séquences BAC/PAC (Figure 1). Un événement de recombinaison observé chez un individu affecté (famille 27 dans Labauge et al.) a permis aux inventeurs de réduire légèrement cet intervalle qui est maintenant encadré par M2456 (limite centromérique) et D7S689 (limite télomérique). Le criblage de banques de données publiques telles que Gene Map du Human Genome, Unigene et dBEST a permis aux inventeurs de cartographier à l'intérieur de cet intervalle 574 Expressed Sequence Tags (EST) qui ont ensuite été regroupées en 53 unités transcriptionnelles putatives comprenant 6 gènes déjà connus : CDK6, HUMI. D14, KRITl, PEX-1, mMTERF et Yotiao.

Kritl avait été identifié lors d'un criblage destiné à identifier les protéines interagissant avec RaplA/Krevl, un membre de la famille des gènes Ras (Serebriiski et al.). Il code pour une protéine de 529 acides aminés qui comprend 4 domaines ankyrines et interagit avec RaplA/Krevl au moyen de sa région carboxyterminale. Il a déjà été indiqué que l'ARN messager de Kritl était exprimé à des niveaux faibles dans de nombreux tissus y compris le cerveau.

Bien que la fonction exacte de Kritl soit encore inconnue, les inventeurs ont considéré qu'il était un bon gène candidat pour CCM1, et ceci pour plusieurs raisons. RaplA/KrevlA a été identifié sur la base de son homologie avec

Dras3, un homologue de Ras chez la drosophile, ainsi que sur la base de son activité anti-mitogène dans des fibroblastes transformés par K-ras (Pizon et al., 1988/Kitayama et al., 1989). Bien que la pertinence physiologique de cet effet anti-mitogène observé in vitro n'ait pas encore été établie in vivo, ceci a conduit à considérer que cette protéine était un antagoniste de Ras. Un rôle de la voie de signalisation de Ras dans la vasculogenèse et l'angiogenèse a été fortement suggéré par les anomalies vasculaires observées dans les modèles murins invalidés pour les protéines impliquées dans cette voie, par exemple les protéines raf ou GAP120 (Henkemeyer et al., 1995 ; Wojnowski et al., 1997). En plus de ce rôle putatif en tant qu'antagoniste de Ras, RaplA/Krevl a été impliqué dans la différentiation cellulaire et la morphogenèse (Asha et al., 1999 ; Quarck et al., 1996 ; Pizon et al., 1988).

En d'autres termes, dans la mesure où la protéine Kritl tronquée donne lieu à une anomalie de l'angiogenèse s'accompagnant d'une prolifération des cellules endothéliales, il est raisonnable d'en déduire que le gène Kritl pourrait avoir un rôle de contrôle de l'angiogenèse.

Ainsi, dans le cadre de la présente invention, les inventeurs ont montré que des mutations dans le gène Kritl susceptibles de donner lieu à une protéine Kritl tronquée sont responsables de l'apparition d'anomalies vasculaires. Ces anomalies vasculaires peuvent affecter différents territoires incluant le cerveau et la peau et prendre différentes formes (cavernomes, angiomes capillaro-veineux).

Le type des lésions observées (développement de maladies vasculaires anormales combiné à la nature des mutations observées (mutations entraînant une troncation de la protéine) suggèrent fortement que cette protéine exerce un contrôle de l'angiogenèse qui pourrait être susceptible d'applications

thérapeutiques dans le domaine de l'antiangiogenèse, en particulier dans le domaine tumoral.

L'alignement de 1'ADNc de Kritl avec le BAC AC000020, l'un des BAC localisé dans l'intervalle, a permis aux inventeurs de déterminer la structure gnomique de Kritl. Ce gène est codé par 12 exons qui sont tous compris dans le BAC AC000020. Les inventeurs ont dessiné les amorces oligonucléotidiques introniques destinées à amplifier les exons (Tableau n° 1) ainsi que les séquences de jonction (Tableau n° 2). Ces amorces ont été particulièrement délicates à mettre au point en raison de la richesse en bases A et T de Kritl et sont très spécifiques de Kritl. Ainsi, la présente invention a pour objet une séquence nucléotidique choisie dans le groupe comprenant SEQ ID N° 1, SEQ ID N° 2, SEQ ID N° 3, SEQ ID N° 4, SEQ ID N° 5, SEQ ID N° 6, SEQ ID N° 7, SEQ ID SEQIDN°9,SEQIDN°10,SEQIDN°11,SEQIDN°12,8, SEQ ID SEQIDN°14,SEQIDN°15,SEQIDN°16,SEQIDN°17,13, SEQ ID N° 18, SEQ ID N° 19, SEQ ID N° 20, SEQ ID N° 21, SEQ ID N° 22, SEQ ID SEQIDN°24,SEQIDN°25,SEQIDN°26,SEQIDN°26,SEQ,IDN°27,23, SEQ ID N° 28.

Au moyen de ces amorces, les inventeurs ont pu amplifier tous les exons.

Un ensemble de 20 patients CCM non apparentés appartenant à des familles dans lesquelles l'analyse HOMOG a montré une probabilité a posteriori d'être liée au locus CCM/supérieure à 90 % a permis de procéder à des criblages de mutations par une analyse combinant une approche de type Single Strand Conformation Polymorphism (SSCP), dans 4 conditions distinctes, et une approche de séquençage.

Les produits amplifiés de 8 de ces patients ont montré des variants de conformation anormaux qui n'ont été observés dans aucun des 50 sujets

contrôles. L'analyse de la séquence de ces amplimères a révélé des mutations hétérozygotes dans ces 8 patients (Tableau 3 et Figure 3). Ces mutations coségrégeaient avec le phénotype malade dans les 8 familles de ces patients.

La présente invention a également pour objet l'utilisation d'au moins une séquence nucléotidique telle que définie ci-dessus pour la détection, à partir d'un prélèvement oiologique, de la présence d'une mutation dans le gène Kritl ; de préférence une mutation liée à la survenue d'anomalies vasculaires telles que définies précédemment. De manière préférentielle, le prélèvement biologique est du sang.

Plus particulièrement, le pedigree 6 présente une délétion d'un A au nucléotide 1342, dans 1'exon 10. Cette délétion conduit à un changement du cadre de lecture et ainsi à un codon stop prématuré. Dans le pedigree 10, une substitution de C par T au nucléotide 1283 dans 1'exon 10 conduit au remplacement d'une glutamine par un codon stop. Le pedigree 58 montre quant à lui l'insertion d'un C après le nucléotide 1271, également dans 1'exon 10, ce qui entraîne un changement du cadre de lecture et un codon stop prématuré. Le pedigree 41 montre une substitution de G par A au nucléotide 615 ce qui conduit au remplacement d'un tryptophane par un codon stop prématuré dans 1'exon 5. Le pedigree 42 présente une délétion de 4 pb (nucléotides 681-684) dans 1'exon 6 donnant lieu à un codon stop prématuré. Le pedigree 35 présente une délétion de 26 pb (nucléotides 1012-1037) à l'intérieur de 1'exon 8 ; cette délétion causant un changement du cadre de lecture et un codon stop prématuré au codon 332. Le pedigree 18 présente une insertion d'un C à l'intérieur de 1'exon 2 après le nucléotide 247 ; cette insertion conduit à un changement du cadre de lecture et à un codon stop prématuré. Le pedigree 19 montre une substitution d'un G par un A au nucléotide 261 ; celle-ci entraîne un changement de cadre de lecture ainsi qu'un codon stop prématuré au codon 79.

Les analyses SSCP des membres affectés et non affectés ont montré la coségrégation parfaite des mutations avec le phénotype affecté dans chacun de ces 8 pedigrees (Figure 3).

Ainsi, les séquences nucléotidiques conformes à la présente invention sont utilisées pour procéder à la détection d'une mutation dans au moins un exon du gène Kritl. Plus particulièrement, ces séquences nucléotidiques peuvent être utilisées par couple compte tenu de leur spécificité d'un exon selon la répartition suivante : -SEQ ID N° 1 / SEQ ID N° 2 pour 1'exon 1, -SEQ I N° 3/SEQ I N° 4 pour lexon 2, -SEQ m N° 5/SEQ Il7 N° 6 pour l'exon 3, -SEQ ID N° 7/SEQ ID N° 8 pour 1'exon 4, -SEQID N°9/SEQID N°10 pour l'exon 5, -SEQ ID ? 11/SEQ ID ? 12 pour 1'exon 6, N°13/SEQIDN°14pourl'exon7,-SEQID N°15/SEQIDN°16pourl'exon8,-SEQID N°17/SEQIDN°18pourl'exon9,-SEQID N°19/SEQIDN°20pourl'exon10,-SEQID -SEQ N° 21/SEQID N° 22 pour l'exon 10, -SEQ ID ? 23/SEQ ID ? 24 pour l'exon 11, -SEQ ID ? 25/SEQ ID ? 26 pour l'exon 12, N°27/SEQIDN°28pourl'exon12.-SEQID Avantageusement, la détection d'une mutation dans Kritl est précédée de l'amplification de l'exon dans lequel la mutation est recherchée et cette amplification peut être réalisée par PCR ou PCR-like.

La nature tronquante de ces mutations, leur absence chez les contrôles sains et leur conségrégation avec le phénotype affecté suggère fortement qu'il s'agit de mutations délétères dans ces familles.

Les inventeurs n'ont pas détecté de variants de conformation anormaux de SSCP dans 12 des 20 familles testées. Plusieurs hypothèses peuvent être émises pour expliquer ceci. La sensibilité de SSCP n'est pas de 100 % même lorsqu'on utilise plusieurs types de conditions comme cela a été le cas ici. De façon intéressante, aucun de ces variants de conformation anormaux n'a été observé dans le premier criblage qui a été réalisé à 20°C sans glycérol. De plus, les délétions qui emporteraient les régions contenant les séquences hybridant avec les amorces n'auraient pu être détectées par cette approche. Enfin, certaines de ces familles, bien que montrant une forte probabilité d'être liées au locus CCM7, pourraient en fait être liées à l'un des autres loci CCM.

La présente invention a également pour objet une méthode de diagnostic génotypique d'anomalies vasculaires chez un individu comprenant le prélèvement d'un échantillon biologique dudit individu ainsi que la détection de la présence d'une mutation dans le gène Kritl par analyse de la séquence d'acides nucléiques présents dans ledit échantillon, une telle mutation étant liée à la survenue d'anomalies vasculaires. La séquence d'acides nucléiques analysée peut être indifféremment de l'ADN gnomique, de 1'ADNc ou de l'ARNm.

L'analyse peut être réalisée par hybridation, par séquençage ou par migration électrophorétique, en particulier par SSCP ou DGGE (Electrophorèse en gel en gradient dénaturant). La détection de ces mutations pourrait également être réalisée à l'aide d'une méthodologie permettant de détecter directement la présence de la protéine tronquée, par exemple les méthodes dites de Protein Truncation Test (traduction in vitro de transcrits reverse d'ADNc suivie d'une

révélation de la protéine par anticorps ou après marquage de la protéine à l'aide d'un acide aminé marqué). Enfin, la recherche de mutations peut être faite par analyse directe du transcrit reverse d'ADNc préparé à partir des ARN totaux (en particulier provenant de cellules transformées par le virus EBV, cellules dans lesquelles les auteurs ont montré 1'expression du transcrit de Kritl).

Avantageusement, tout ou partie de la séquence d'acides nucléiques correspondant au gène Kritl est amplifiée préalablement à la détection de la présence d'une mutation, cette amplification pouvant être réalisée par PCR ou PCR-like. De façon tout à fait préférentielle, cette amplification peut être réalisée au moyen d'amorces choisies parmi les séquences d'acides nucléiques conformes à la présente invention, par exemple utilisées selon la répartition ci- dessus mentionnée.

La question principale est donc de comprendre comment ces mutations ont pu conduire aux cavernomes. Peu de choses sont connues en réalité sur la nature de ces lésions qui sont considérées comme des malformations vasculaires ou hamartomes. Il semblerait que la période d'apparition de ces malformations pendant la vie embryonnaire n'est pas tout à fait claire. De plus, dans certains cas, particulièrement dans les cas familiaux, l'extension évolutive de ces hamartomes a été décrite : il a été suggéré que ces lésions peuvent exprimer des facteurs et/ou des récepteurs impliqués dans l'angiogenèse (Rothbart et al., 1996 ; Notelet et al., 1997).

Il convient d'indiquer que les inventeurs ont observé dans quatre familles (Labauge et al., 1999) que des malformations cutanées (également appelées angiomes) pouvaient ségréger avec les cavernomes cérébraux.

Toutes les mutations rapportées ici conduiraient, si elles étaient traduites, à des protéines Kritl tronquées qui seraient délétées de la région interagissant avec RaplA/Krevl.

Les fonctions exactes de RaplA/Krevl ne sont pas tout à fait élucidées.

Ce membre de la famille des Ras GTPase est exprimé de façon ubiquitaire particulièrement dans les neutrophiles, les plaquettes et le cerveau ; il est localisé dans les compartiments endocytiques/lysosomiaux. RaplA a été décrit comme interagissant avec B-Raf, ce qui est tout à fait intéressant au vu de l'apoptose massive endothéliale observée chez les souris déficientes pour B-Raf (Wojnowski et al., 1997). In vivo, des études sur les eucaryotes inférieurs tels que les levures et la drosophile ont récemment donné quelques indications sur les fonctions de RaplA dans la différentiation et la morphogenèse (Asha et al.).

L'interaction de Kritl et de RaplA suggère que Kritl pourrait soit réguler RaplA soit être un effecteur de RaplA (Bos et al.). Les mutations rapportées ici pourraient résulter soit d'un effet dominant négatif soit d'une perte de fonction. L'observation des familles présentant des délétions complètes de Kritl serait un argument fort en faveur de cette hypothèse. Par ailleurs le fait que les formes sporadiques de cavernomes se manifestent principalement par une lésion unique et que les formes familiales se manifestent pas des lésions multiples suggère fortement que ces lésions suivent la règle du « double hit de Knudson » (Knudson 1971) et qu'une perte complète de fonction de Kritl pourrait être nécessaire à l'apparition des cavernomes.

En d'autres termes, dans les formes dominantes de la maladie, une première mutation, présente dans toutes les cellules de l'organisme à l'état hétérozygote, serait présente. L'apparition des lésions cavernomateuses serait conditionnée par la survenue d'une deuxième mutation touchant l'autre allèle de ce gène, mutation qui surviendrait de façon somatique. Dans les formes sporadiques les plus étudiées à ce jour, 1'individu ne présente aucune mutation germinale et la lésion unique résulterait de deux mutations survenues dans la même cellule.

Cependant, il existerait des formes sporadiques de cavernomes différentes de celles ci-dessus décrites. Les Inventeurs ont en effet mis en

évidence une forme sporadique se manifestant par des lésions multiples et résultant d'une mutation de novo dans le gène Kritl vraisemblablement dans une cellule germinale d'un des deux parents du patient atteint (données non montrées).

En résumé, les données reportées ici, suggèrent fortement que les mutations tronquantes de Kritl sont responsables de l'apparition des cavernomes cérébraux observés dans les familles CCM7 mais également dans certaines formes sporadiques, mettant en exergue le rôle putatif de la voie de signalisation de RaplA dans ces mécanismes.

Parmi les applications thérapeutiques concernées par la présente invention, pourraient être concernées différents types de malformations vasculaires, dysplasies vasculaires, angiomes et/ou toute situation où existe une angiogenèse anormale.

Ainsi, la présente invention a également pour objet l'utilisation du gène Kritl ou d'une séquence dérivée de ce gène pour la préparation d'un médicament ou son utilisation dans une approche de type thérapie génique destiné à contrôler ou inhiber l'angiogenèse notamment par surexpression in situ du gène Kritl ou d'une séquence dérivée de ce gène.

Par « séquence dérivée de ce gène », on entend toute séquence ou partie de séquence normale ou mutée du gène Kritl et présentant une activité similaire et comparable à la séquence totale fonctionnelle de référence.

La présente invention a également pour objet un vecteur d'expression dans une cellule hôte appropriée comportant la séquence du gène kritl ou une séquence dérivée de ce gène (la séquence dérivée est définie ci-dessus). Dans le cas où l'on souhaiterait réprimer une angiogenèse anormale, il pourrait être intéressant de surexprimer la séquence en question et c'est la raison pour laquelle le vecteur conforme à l'invention comprend, avantageusement, les éléments nécessaires à cette surexpression.

En particulier, le vecteur conforme à l'invention peut être destiné à la thérapie génique et dans le cas où l'on souhaiterait limiter son site d'action, ce

vecteur peut comporter une séquence assurant le ciblage et/ou 1'expression tissu spécifique des séquences qu'il comprend.

Enfin, la présente invention a pour objet une composition thérapeutique comportant à titre de principe actif tout ou partie de la protéine Kritl normale ou modifiée, de façon à se substituer par exemple à une protéine tronquée et pallier la déficience Le principe actif peut également être un vecteur tel que décrit précédemment.

La Figure 1 représente la carte génétique, physique et transcriptionnelle du locus CCM1.

La Figure la représente la carte génétique du locus CCM1. Ce locus était précédemment défini par l'intervalle D7S2410-D7S689. Les intervalles génétiques réduits MS2456-D7S689 sont indiqués par des crochets horizontaux.

Les microsatellites déjà publiés sont encadrés. Les nouveaux microsatellites sont identifiés par des caractères gras. Certains des STS sont également montrés. Le STS sWSS 1703 correspond aux nucléotides 393-658 de Kritl. Les marqueurs entre les crochets verticaux sont espacés de moins de 1 kb.

La Figure lb représente la carte physique et transcriptionnelle du locus CCM1. Des contigs de BAC sont répartis sur l'intervalle CCM1. Le BAC AC000120 est représenté par le trait le plus épais. Les chevauchements avec soit les STS, soit les marqueurs microsatellites sont indiqués par des petites barres verticales. La flèche noire correspond à Kritl, les flèches blanches correspondent à des gènes humains bien caractérisés et les flèches vides correspondent à des gènes présentant de fortes homologies avec des gènes d'autres espèces (non caractérisés chez les humains).

La Figure 2 représente la coségrégation des variants de conformation avec le phénotype malade au sein de 8 pedigrees (SSCP).

Les symboles vides désignent les sujets dont l'examen du cerveau par IRM est normal, les symboles noirs à moitié pleins correspondent à des patients asymptomatiques présentant des cavernomes sur l'examen par IRM, les symboles noirs pleins correspondent à des patients symptomatiques et présentant des cavernomes sur 1'IRM ; le signe « ? » correspond aux correspond ayant sujets statut inconnu et le signe « \ » correspond à des patients décédés. Les patients décédés ou avec un statut inconnu n'ont pas été testés pour la mutation mais sont représentés pour une meilleure compréhension des structures familiales. Les bandes anormales sont indiquées par une flèche.

La Figure 3 illustre les mutations de Kritl.

La Figure 3a représente la structure du gène Kritl et de la protéine putative correspondante. « ns » signifie non-sens, « del » signifie délétion et « ins » signifie insertion. Pour les insertions, le numéro de nucléotide correspond au nucléotide précédant l'insertion. L'expression « Krev Interacting Region » correspond à la région (acides aminés 483-529) dont la délétion abolit l'interaction avec Krev lors du test en double hybride dans la levure.

La Figure 3b représente les mutations de Kritl, identifiées dans les 8 pedigrees mentionnés plus haut. Les flèches indiquent les sites de mutation. WT signifie séquence de type sauvage et MT signifie séquence mutante. Dans le pedigree 42, le chromatogramme et la séquence présentés correspondent au brin négatif ; le brin positif a montré une superposition complète des séquences normales et anormales et ne permettaient pas d'avoir une bonne visualisation du site du début de la délétion.

EXEMPLES MATERIELS ET METHODES Patients 20 patients non apparentés appartenant à des familles dont on savait qu'elles présentaient de façon héréditaire des cave-. lómes ont fait partie de l'étude avec leur libre consentement (Labauge et al.).

L'analyse de ce panel de familles avec le test HOMOG a montré que ces familles avaient une probabilité a posteriori d'être liées au locus CCM1 supérieure à 90 % (Laberge et al.).

Une approche combinant biologie moléculaire et bio informatique a été utilisée pour établir la carte physique et transcriptionnelle du locus CCM1. Après validation d'un contig de YACs préalablement publiée par Johnson et al. (1995), les auteurs ont positionné dans l'intervalle par PCR et par une approche in silico 574 EST (Expressed Sequence Tags) qu'ils ont regroupés en 53 groupes.

Réduction de l'intervalle génétique 12 marqueurs microsatellites polymorphes recouvrant l'intervalle D7S2410-D7S689 ont été sélectionnés pour les analyses de liaison. 7 d'entre eux étaient préalablement connus : D7S2410, D7S2409, D7S1813, D7S1789, D7S646, D7S689 et D7S558, et ont été utilisés par plusieurs équipes (Giinel et al. dans Neurosurgery, Craig et al., Labauge et al., Laberge et al.). Les derniers MS65, MS2453A, MS2456A, MS119 et MS120 ont été identifiés par les inventeurs sur la base des données de séquence des BAC cartographiés dans l'intervalle.

Détection des mutations et identification Sur la base de la comparaison des séquences de 1'ADNc de Kritl et du BAC AC 00000120, les inventeurs ont déterminé 14 jeux d'amorces pour amplifier les 12 exons et les sites de jonction exon/intron de Kritl à partir de l'ADN gnomique. Des réactions de PCR ont été mises en oeuvre comme suit : après une première étape initiale de dénaturation à 94°C (4 min), 30 cycles d'amplification consistant en des étapes à 94°C (15 s), une température d'hybridation optimisée comprise entre 45°C et 55°C (15s) et 72°C (15s) suivie par une étape d'extension finale à 72°C (10 min). Les produits de PCR ont été soumis à une électrophorèse dans 4 types de conditions (acrylamide à 10 % avec ou sans glycérol à 4°C et 20°C) sur un appareil Mighty Small II (Pharmacia- Biogen) utilisé en condition de courant constant de 35 mA. Des variants de conformation ont été révélés à l'argent (Silver Stain Plus kit, Biorad). Des amplimères montrant un pattern de bandes SSCP atypiques ont été séquences (AB1377, Perkin Elmer). Toutes les mutations décelées lors du séquençage ont été testées pour leur coségrégation avec le phénotype malade par une approche SSCP.

TABLEAU 1 : AMORCES EXON AMORCE SENS AMORCE REVERSE TAILLE DE L'AMPLI- MERE 1 GAGCGGATAAAAACTAAT GAGCTAAAATTCATTCAA 205 (SEQID N°1) (SEQID N°2) 2 GCTCTTAATGGGTTTTTG AGCAATGTGGAGTAAAAC 183 N°3)(SEQIDN°4SEQIN 3 TTTGGAATGAGAACAGTC GTCCTGTTGTATTTTTCA 265 N°5)(SEQIDN°6SEQID 4 GTTGTTGTTTTTTGTTTG ACCTGGAAAATAACTTAC 208 N°7)(SEQIDN°8SEQID 5 ATGTAATGCCTTTTTTCC ATGCCTGGCTCTAACTAT 181 (SEQ ID N°) (SEQ m N°10) 6 TTGTTAGATTGTGATGTA AACATAATAAAAACTTTC 257 N°11)(SEQIDN°12SEQID 7 TTTATAAAAGGAATGATG TCAACTCAAACCATATCA 335 N°13)(SEQIDN°14SEQID 8 TGTAGCCTAATAACCAAA AGCATAGCACAAGACCAT 243 (SEQID N° 15) (SEQID N°16) 9 GGTGAAGTTTTTAATATG CAATAGTTTATGAAGTCC 213 (SEQ ID ? 17) (SEQ ID ? 18) 10 ATATTTACAAAGGCAAGC TGACATGATTGGTAAAAA 180 (SEQ ID ? 19) (SEQ ID ? 20) TGGTACATTTTCCTTTCA CTTTATGATTGCTGGGGC 201 N°21)(SEQIDN°22SEQID 11 GGTGAAGTTTTTAATATG CAATAGTTTATGAAGTCC 205 N°23)(SEQIDN°24SEQID 12 AATAGATAGGGAACTGCC GTGGCTTGAGTAACAGTT 234 (SEQ ID ? 25) (SEQ ID ? 26) TAATGCCCACTGAAAGAA GGCTGGTCTTGAACTCTG 199 (SEQ ID ? 27) (SEQ ID ? 28) TABLEAU 2 : SEQUENCES DES JONCTIONS INTRON-EXON EXON POSION SUR TAILLE SEQUENCE POSION SUR B L'ADNc AC000120 1 8-133 126 atcaggtcag ACAGAAACT ... TACAAATCGG gtaaagatta 127165-127040 (SEQ IN N° 29) (SEQ IN N° 30) 2 134-249 116 ccctttctag GTAGATAAAG ... GAGAAGACAA gtactgtttc 126561-126445 (SEQ IN N° 31) (SEQ IN N° 32) taatgattag GGAACGACAG ... ATGCATGCTG gtaaatggaa 126228-126086 (SEQ IN N° 33) (SEQ IN N° 34) 4 394-550 157 TTTATACAG GTATGGAAAAA ... AACGGATAGA gtaafgtaatt 118319-118163 (SEQ IN N° 35) (SEQ IN N° 36) 5 551-657 107 acattctag CATATAACAG ... TAACAAACCA gtaaagaata 117464-117357 (SEQ IN N° 37) (SEQ IN N° 38) 6 658-815 157 tttcttgag TATGAAAAAG ... GAAACCTCA gtaagaaagt 116515-114459 (SEQ IN N° 39) (SEQ IN N° 40) 7 816-967 152 tgtttcag GCCTTCAACT ... TGAAAAACAG gtttgcttgg 113690-113539 (SEQ IN N° 41) (SEQ IN N° 42) 8 968-1134 168 ttcctttaag ATTGAGGACCC ... GTTTCCTTAAA gtaagtattt 106414-106248 (SEQ IN N° 43) (SEQ IN N°44) 9 1135-1222 88 gtgcttacag TGAAGAAAT ... TGAATACAAG gattagtgtt 105616-105529 (SEQ IN N° 45) (SEQ IN N° 46) 10 1223-1429 207 ttgttttag AATCTCAGTA ... GGAAACTAAG gtagatttc 105038-104832 (SEQ IN N° 47) (SEQ IN N° 48) 11 1430-1546 117 TATGTTGACA GCTTTACTCA ... TAAAACAG gtaataca 93060-92942 (SEQ IN N° 49) (SEQ IN N° 50) 12 1547-2004* 458* taccgtag GCTCTGGTCG .. 92441-91984* (SEQ IN N° 51) *Exon 12 non entièrement détermin6 car contient des sésqences Alu TABEAU 3 ; MUTATIONS DANS KRIT1 PEDIGREE MUTATINS DANS MUTATIONS DES ACTIONES AMTIONES L'AND GENOMIQUE 6 Délétion (A) Changements en acides Normal (WT): IF (438) TKASPSNHKVIPVIV nt 1342 aminés après AA 438 Mutant (MT): IF (438) TIRTAPRIAIKSSILM Exon 10 codon 10 Fux-sen (C # T) Changements en acides WT : FL (420) QN ... nt 1283 aminés apriès AA 420 MT : FL (420)* stop codon Exon 10 18 Insertion (c) Changements en acides WT : EN (74) KERQUEDD ... après nt 247 aminés apriè AA 74 MT ; ED (74) QGTTIVER* stop codon Exon 2 19 Faux-sens (G #A) Changements en acides WT : RO (79) WVDD ... nt 261 aminés après AA 79 MT : RO (79) * stop codon Exon 3 35 Délétion (26 pb) Changements en acides WT : EA (328) RYNLKGFYTAPDAKL ... nt 1012 aninés apriès AA 328 MT : EA (328) SSS* stop codon Exon 8 41 Faux-sens (G#A) Changements en acides WT : NN (197) WEEAA ... nt 615 aminés aprèsAA 197 MT : NN (197)* stop codon EXon 5 42 Délétion (GAAT) Changements en acides WT : IY (217) RMDGSYRSVELK .... nt 681-684 aminés après AA 217 MT : IY (217) RMGHIVLLN* stop codon EXon 6 58 Insetion (C) Changements en acides WT : LQ (415) RMLFLOQUCOFITKASPNSINK aprèsn not 1271 aminés après AA 415 MT : LQ(415) HVLTOLTDIKGYKPQQS* stop co EXon 10

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