_Λ La présente invention concerne une composition

5 protéinique obtenue comme produit secondaire dans la production d'albumine à partir de plasma sanguin humain, son procédé d'obtention, la glycoprotéine qu'elle contient et l'utilisation de ladite glycoprotéine dans des agents de stabilisation de l'albumine et comme agent permettant la détection et/ou le dosage d'anticorps.

10 On sait que, dans l'état de la technique, on effectue, pour obtenir des solutions d'albumine humaine, un fractionnement du plasma sanguin soit par la méthode de COHN (voir Cohn J. et Al, J. Amer. Chem. Soc, 72, 465-474-Q950)), soit par une méthode dérivée dans laquelle on effectue des traitements thermiques et éthanoliques

15 successifs ou une méthode analogue dans laquelle on utilise un agent de précipitation autre que l'éthanol (notamment éther, sulfate d'ammonium, polyéthylène glycol ou acide caprylique). Selon la méthode de Cohn, qui est, en pratique, la plus utilisée, le plasma est refroidi à - 30° C puis réchauffé à - 2° C d'où il résulte un

20 cryoprécipité contenant le facteur VIII antihémophilique, le fibrinogène et la fibronectine. Le surnageant, dit "surnageant I" , est séparé du précipité susmentionné ; on abaisse son pH à 5,85 ± 0,05 et on ajoute de l'éthanol jusqu'à ce que la concentration éthanolique soit de 19 % en volume, la température étant abaissée, au fur et à mesure de l'addition

25 d'éthanol, jusqu'à - 5° C. On obtient ainsi un précipité, dit "précipité (II + III)" , contenant notamment les gamma-globulines et un surnageant, dit "surnageant (II + III)" contenant l'albumine et des impuretés. On reprend le surnageant ainsi obtenu et on augmente le taux d'alcool jusqu'à obtenir une concentration éthanolique de 40 % en

30 volume, la température étant abaissée à environ - 8° C. On obtient ainsi un précipité, dit "précipité IV" , et un surnageant, dit "surnageant

IV", qui contient l'albumine à un degré de pureté d'environ 94 à 97 %

^ en poids. Le surnageant IV sert de matière première pour les solutions d'albumine désirées, mais il contient une grande quantité d'éthanol ;

35 selon une première technique, on peut dialyser directement le surnageant IV contre du sérum physiologique mais il faut alors utiliser une très grande quantité d'eau et le procédé est donc lent et coûteux ; selon une autre technique, on abaisse le pH du surnageant IV à

4,80 ± 0,05 ce qui fait précipiter l'albumine : on sépare ce précipité, dit "précipité V" , et on le remet en solution dans du sérum physiologique, le reste de l'éthanol étant extrait par dialyse.

Les solutions aqueuses obtenues après dialyse du "surnageant IV" ou du "précipité V" remis en solution contiennent de l'albumine et environ 4 % en poids, par rapport au poids total de matières protéiniques, d'autres protéines dites secondaires ou contaminantes et/ou de polymères.

Selon FR-A-2 690 444, on sépare l'albumine des autres protéines par un procédé chromatographique en phase liquide dans lequel on fait passer après dialyse la solution aqueuse contenant l'albumine dans au moins une colonne de chromatographie dite "hydrophobe" remplie d'un matériau particulaire apte à retenir une partie des protéines autres que l'albumine ; pour compléter là ... séparation, on propose également de faire passer la solution aqueuse d'albumine dans au moins une colonne de chromatographie d'affinité contenant un support particulaire neutre ou voisin de la neutralité chargé d'un composé poly sulfaté. L'effluent obtenu par ce procédé est constitué par une solution d'albumine purifiée, la majeure partie des protéines secondaires étant fixées, soit sur la (les) colonne(s) de chromatographie hydrophobe, soit sur la (les) colonne(s) de chromatographie d'affinité.

Selon un mode préféré de mise en oeuvre de ce procédé, on soumet à la chromatographie une solution aqueuse d'albumine à un pH compris entre 6,5 et 7,8 et à une concentration supérieure à 1 g/1 et inférieure à 400 g/1.

On choisit avantageusement, comme matériau particulaire apte à retenir les protéines contaminantes dans la chromatographie hydrophobe, un support particulaire neutre, dont les particules sont chargées d'un composé comportant des radicaux alkyle C-3-Cg hydrophobes ; on peut choisir notamment, comme composé chargeant les particules du support, un composé comportant des radicaux butyle : le lit de remplissage est,, par... exemple,, constitué, du produit , commercialisé par la société "MERCK" sous la dénomination commerciale "FRACTOGEL TSK BUTYL-650" . La chromatographie d'affinité se fait, de préférence, sur gel de dextran sulfate. On choisit, de préférence, pour effectuer la chromatographie d'affinité et la

chromatographie hydrophobe un matériau particulaire ayant une granulométrie de dimension moyenne inférieure à 300 μm. Le débit de chromatographie est généralement compris entre 10 et 20 cm/heure et la température entre 2 et 25 °C. La chromatographie d'affinité peut être effectuée après ou, de préférence, avant la chromatographie hydrophobe.

On a constaté, selon la présente invention, que l'on pouvait éluer les protéines secondaires fixées sur les lits de remplissage des colonnes de chromatographie susmentionnées et obtenir ainsi des compositions protéiniques utiles, notamment dans le domaine pharmaceutique.

La présente invention a, par conséquent, pour premier objet un procédé d'obtention d'une composition aqueuse protéinique à partir du plasma sanguin humain dans lequel on soumet le plasma à des traitements successifs par action de la température et par action d'un agent de précipitation pour aboutir, après séparation au moins partielle des facteurs VIII et IX et des gamma globulines, à des solutions d'albumine contenant l'agent de précipitation, puis on sépare, notamment par dialyse, l'agent de précipitation des solutions obtenues pour obtenir une solution aqueuse brute d'albumine et on soumet ladite solution aqueuse brute d'albumine à au moins une chromatographie en phase liquide pour retenir au moins une partie des protéines secondaires autres que l'albumine, ladite chromatographie en phase liquide comportant une chromatographie d'affinité sur un support particulaire constitué de particules chargées d'au moins un composé comportant des groupes sulfates, caractérisé par le fait qu'après passage de la solution d'albumine, on soumet le support particulaire de la chromatographie d'affinité précité à une élution et que l'on recueille en élution la composition protéinique désirée. L' élution est, de préférence, effectuée en augmentant la force ionique par passage d'une solution saline. La solution saline est, de préférence, une solution de NaCl, à une concentration au moins égale à 0,3 M, avantageusement de 2 M ; elle est avantageusement précédée d'une opération de lavage. Le lavage du support de chromatographie d'affinité est effectué, notamment, à l'aide d'un tampon salin, de molarité égale à 0,16 mole/1, de préférence un tampon phosphaté constitué de phosphates mono- et disodique, notamment à

0,01 mole/1, et de chlorure de sodium, notamment à 0,15 mole/1, dans des proportions donnant un pH de 7,00 ± 0,05. Le lavage est maintenu tant que la densité optique de l'effluent est supérieure à une valeur prédéterminée, par exemple 0, 1 UDO (unité de densité optique). La solution obtenue par élution de la (des) colonne(s) de chromatographie d'affinité contient un mélange de protéines. La présente invention a aussi pour objet la composition protéinique ainsi obtenue. Cette composition contient une glycoprotéine qui a un poids moléculaire de 50 000 ± 3 000 dalton après ou sans réduction par le 2-mercaptoéthanol. La glycoprotéine constitue de 5 à 100 % en poids du contenu protéinique total de la composition obtenue selon le mode de préparation ; généralement, l' élution permet d'obtenir une concentration pondérale comprise entre 0,05 g et 30 g de glycoprotéine ^' par litre d'éluat mais cette concentration peut être réduite par dilution ou augmentée par concentration de l'éluat.

La glycoprotéine isolée selon l'invention présente les caractéristiques et propriétés données ci-après.

Les 20 premiers acides aminés de sa région N-terminale ont été déterminés en particulier par microséquençage en phase gazeuse à l'aide d'un appareil "Applied Biosystems Inc, modèle 470" couplé à un analyseur de phénylrhéohydantoïne modèle 120 A (ABI) : Gly-Arg-Thr-Cys-Pro-Lys-Pro-Asp-Asp-Leu-Pro-Phe-Ser-Thre-Val - Val-Pro-Leu-Lys-Thre. Cette séquence de 20 premiers acides aminés correspond à celle d'une β2-glycoprotéine plasmatique décrite (1) dans l'article de J. LOZIER et coll. Proc. Natl. Acad. Sci. ISA Vol. 81 , pages 3640-3644, Juin 1984 et (2) dans l'article T. KRISTENSEN et coll. FEBS Letters, Vol. 289, 1991 , pages 183-186.

La composition en acides aminés de la glycoprotéine isolée selon l'invention a été déterminée sur deux préparations différentes par deux laboratoires différents : a) la première préparation A a été traitée par hydrolyse acide dans HC1 5,7 M pendant 24 heures à 110° C avec un analyseur d'acides aminés "BECKMAN 6 300" relié à un système "GOLD" pour interprétation,

b) la seconde prépration B a également été analysée avec un analyseur d'acides aminés "BECKMAN 6 300" après hydrolyse par HC1 6 N pendant 24 heures et 72 heures.

Les résultats obtenus sont donnés dans le tableau I ci- après, où ils sont comparés avec les résultats publiés par J. LOZIER et coll. (1) et T. KRISTENSEN et coll. (2). Ces résultats montrent que la glycoprotéine est une B2' -glycoprotéine I voisine de la β2-glycoprotéine I décrite par J. LOZIER et coll. et T. KRISTENSEN et coll. Cependant, cette glycoprotéine diffère de la β2-glycoprotéine I. En effet, après purification, précipitation de la glycoprotéine selon l'invention à l'acétone et dialyse contre de l'eau distillée, le séquençage donne lieu à l'identification de 14 acides aminés, sortant 2 à 2, et correspondant à la région N-terminale de la protéine. Ceci correspond, étant donné le degré de pureté de la préparation protéique, au clivage de la protéine de départ. En effet, 7 de ces acides aminés correspondent à la région N-terminale. Il s'agit de la séquence :

Gly-Arg-Thr-Cys-Pro-Lys-Pro Les autres 7 acides aminés, par déduction correspondent au peptide :

Phe-Trp-Lys-Ser-Asp-Ala-Ser Ce peptide correspond à la région comprise entre les acides aminés 315 et 321 qui a été décrite par J. LOZIER pour la β2-glycoprotéine I mais une différence d'un acide aminé apparaît. Il s'agit d'une serine à la place d'une thréonine. La glycoprotéine isolée selon l'invention est donc un allotype de la β2-glycoprotéine I que l'on appellera par la suite β2' -glycoprotéine I.

Après clivage de la protéine au bromure de cyanogène, séparation des peptides obtenus et analyse dans chaque peptide des trois premiers acides aminés, on retrouve les résultats décrits par J. LOZIER et coll.

La présente invention a donc pour second objet la composition protéinique obtenue par élution de la (des) colonne(s) de chromatographie d'affinité dans le procédé décrit ci-dessus et la β2' -glycoprotéine I, telle que définie ci-dessus.

On a trouvé que la composition protéinique ainsi que la ^β 2' -glycoprotéine sont antigéniques, c'est-à-dire détectées par la méthode ELISA ou par inmuno-empreinte, par des anticorps de sujets humains, par exemple pour des sujets infectés par HBV, HIV, du syndrome de Gougerot-Sjôgren ; elles sont également reconnues dans certaines conditions, en ELISA, par des anticorps monoclonaux spécifiques de la p 25/p 55 gag du virus HIV1 (Ac. Mo. RL4.72.1) et de la protéine antioncogène p 53 (Ac. Mo. 122) ; on peut donc utiliser la composition et la β2 '-glycoprotéine I pour la caractérisation et le dosage des anticorps contre cette protéine chez des malades atteints de SIDA, d'hépatite B, de leucémies, du syndrome de Gougerot-Sjôgren, ou de myélomes. La méthode ELISA est, par exemple, décrite dans l'article de ENGVALL et coll. Immunochemistry 1971 , 8, pages 871 à ^' 879 et la méthode par immuno-empreinte est décrite, par exemple, dans TOWBIN et coll Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1979, 76, pages 4350- 4354.

La composition protéinique et la β2' -glycoprotéine I inhibent la dénaturation de l'albumine à 60° C observée en turbidimétrie, de façon "dose dépendante" ; on peut donc l'utiliser pour stabiliser l'albumine, notamment lors de la tyndallisation.

La β2' -glycoprotéine I peut être séparée des protéines secondaires avec lesquelles elle est mélangée dans la composition protéinique obtenue par élution de la colonne de chromatographie d'affinité, de la façon décrite ci-après : la composition est éluée du gel de dextran sulfate par une solution de NaCl au moins égale à 0,3 M, avantageusement voisine de 2 moles par litre ; l'éluat obtenu est dilué dans un tampon salin de façon à abaisser sa force ionique à moins de 0,2 ; la solution obtenue est soumise à une chromatographie sur gel phosphaté, puis la glycoprotéine fixée sur le gel phosphaté est éluée en augmentant la force ionique avec un tampon salin ayant, de préférence, une force ionique supérieure à 0,4. Le débit de la chromatographie sur gel phosphaté est, de préférence, compris entre 10 et 20 cm/heure et la température est, de préférence, comprise entre 0 et 40° C, de préférence 2 et 25 °C, en conditions usuelles. L'invention a également pour objet un agent de stabilisation de l'albumine lors de la tyndallisation contenant la

composition protéinique ou la β2' -glycoprotéine I définie ci-dessus et un agent permettant la détection et/ou le dosage d'anticorps de sujets humains infectés par HBV, HIV, du syndrome de Gougerot-Sjôgren ou de myélomes, par la méthode ELISA ou par Immuno-empreinte caractérisé par le fait qu'il contient la composition protéinique ou la β2' -glycoprotéine I définie ci-dessus.

Pour mieux faire comprendre l'invention, on va décrire ci- après, à titre d'exemple purement illustratif et non limitatif, un mode de préparation de la β2' -glycoprotéine I selon l'invention. On utilise, comme matière première de départ, un plasma humain fractionné selon le procédé décrit par KISTLER et NITSCHMAN (Vox Sang. 7, 414-424 (1962)), qui est une méthode dérivée de celle de COHN, les fractions de départ contenant l'albumine étant soit le surnageant IV, soit le précipité V. Lorsque l'on part du surnageant IV, qui comprend 40 %

(en volume) d'éthanol et qui a un pH de 5,85 ± 0,05, on dilue de moitié le surnageant avec une solution de NaCl à 7 g/1. Le pH est ajusté à 7,45 ± 0,05 avec une solution de soude IN. On préconcentre l'albumine jusqu'à 90 g/1 dans une cassette d'ultrafiltration de type "Oméga" (Filtron) mise en oeuvre dans un système d'ultrafiltration "Minisette SS Cell NPT Cell" (Filtron Techn. Corp.). Cette cassette a une surface filtrante de 0,07 m ² et un seuil de rétention de 30 KDa. La circulation est assurée par une pompe péristaltique à une pression qui varie de 2 x 10-5 Pa au début de l'opération à 5 x 10-5 Pa vers la fin. Lorsque l'on a atteint la concentration de 90 g/1 en albumine, on ajoute à la solution d'albumine une solution de NaCl à 9 g/1 et on continue à dialyser à volume constant jusqu'à obtenir un taux d'éthanol inférieur à 0, 1 % en volume. Lorsque l'éthanol a été ainsi éliminé, on poursuit la dialyse en concentrant la solution jusqu'à 200 g d'albumine par litre. On ajuste le pH à 7, 10 ± 0,05 avec une solution d'acide chlorhydrique IN.

Lorsque l'on part du précipité V, on remet ledit précipité en suspension dans du sérum physiologique (solution de NaCl à 9 g par litre) en utilisant 4 litres de sérum physiologique par kilogramme de précipité. On filtre pour éliminer les grumeaux de précipité non remis en suspension au cours de l'agitation ; on ajuste le pH à 7,45 ± 0,05 avec une solution de soude IN et on concentre la solution ainsi obtenue jusqu'à 90 g de protéines par litre en utilisant le même système de

dialyse que précédemment décrit pour le surnageant IV. On poursuit alors la dialyse en rajoutant du sérum physiologique et en travaillant à volume constant jusqu'à obtenir un taux final d'éthanol inférieur à 0,1 % en volume. Lorsque l'éthanol a été ainsi éiiminé, on poursuit la dialyse pour concentrer la solution jusqu'à environ 200 g de protéines par litre. On ajuste le pH à 7, 10 ± 0,05 avec une solution d'acide chlorhydrique IN.

La solution d'albumine ainsi préparée à partir du surnageant IV ou du précipité V est alors filtrée stérilement (filtre "Millex-GS" de 0,2 micron (Millipore)).

La solution aqueuse brute d'albumine obtenue subit d'abord une chromatographie d'affinité. Cette chromatographie est réalisée dans une colonne de 50 ml (2,5 cm x 10 cm) (Biorad), chargée avec un matériau particulaire vendu par la société "SIGMA" sous la dénomination commerciale "DEXTRAN BEADS SULFATED" . La colonne est préalablement équilibrée en faisant passer dans le lit 3 volumes de colonne de sérum physiologique. La solution d'albumine est alors envoyée sur cette colonne et l'effluent peut être récupéré pour la production d'albumine. Le déroulement de la chromatographie est suivi en mesurant la densité optique à 280 nm des fractions en sortie de colonne. Le débit de la colonne est de 16 cm/heure ; la chromatographie est effectuée entre 20 et 25° C.

Après passage de l'albumine récupérée comme effluent, la colonne d'affinité est lavée avec un tampon salin, voisin de l'isotonicité, de préférence un tampon constitué de phosphates mono- et disodique, notamment à 0,01 mole/1, et de chlorure de sodium, notamment à 0, 15 mole/1 ayant un pH de 7,00 ± 0,05 jusqu'à ce que la densité optique de l'effluent soit inférieure à 0, 1. Les protéines fixées sur la colonne d'affinité sont alors éluées, en augmentant la force ionique, par passage d'une solution 2 M de NaCl. Le lavage et l'élution sont effectués à température ambiante, les débits de lavage et d'élution étant de 16 cm/h.

On a effectué, sur la solution obtenue, une électrophorèse dénaturante SDS-Page. On a constaté la présence d'une bande diffuse correspondant à la présence d'une protéine ayant un poids moléculaire de 50 000 ± 3 000 daltons après ou sans réduction par le 2-

mercaptoéthanol. La technique de coloration Schiff montre que cette protéine est une glycoprotéine. Après coloration du gel en bleu de Coomassie, dans cette expérience, l'étude de la surface des pics de densité optique montre que la composition contient 55 % en poids de β2' -glycoprotéine I par rapport aux protéines totales.

La β2' -glycoprotéine I est ensuite séparée et purifiée de la façon suivante : la composition protéinique obtenue par élution de la (des) colonne(s) de chromatographie d'affinité à l'aide d'une solution saline de NaCl à 2 moles/litre, est diluée 10 fois dans un tampon constitué de phosphates mono- et disodique, notamment à 0,01 mole/litre, dans des proportions donnant un pH de 6,8 ± 0,05. Elle subit alors une chromatographie sur gel phosphaté. Cette chromatographie est réalisée dans une colonne de 50 ml (2,5 cm x 10 cm) (Biorad), chargée avec un matériau particulaire vendu par la société "BIO-RAD" sous la dénomination commerciale "BIO-GEL HTP" . La colonne est préalablement équilibrée en faisant passer dans le lit 3 volumes de colonne de tampon constitué de phosphates mono- et disodique, notamment à 0,01 mole/litre, dans des proportions donnant un pH de 6,8 ± 0,05. L'éluat protéinique de la précédente chromatographie, dilué, est alors envoyé sur cette colonne. La chromatographie est effectuée avec un débit d'environ 15 cm/heure à une température de 20° C. L'effluent est éliminé et le support chromatographique subit ensuite un lavage effectué à l'aide d'un tampon phosphaté, identique à celui ayant servi à équilibrer la colonne. Le lavage est maintenu tant que la densité optique de l'effluent est supérieure à une valeur prédéterminée, par exemple 0, 1 UDO (unité de densité optique).

La β2' -glycoprotéine I qui, dans ces conditions, se fixe sur le gel phosphaté, est alors éluée en augmentant la force ionique. L'opération d'élution est, de préférence, réalisée au moyen d'une solution de KC1 ayant une concentration voisine de 1M. Cette solution d'élution est constituée de phosphates mono- et disodique, notamment.à 0,01 mole/litre, dans des proportions donnant un pH de 6,8 ± 0,05 et de KC1 1 mole/litre. Le déroulement de la chromatographie est suivi en mesurant la densité optique à 280 nm des fractions en sortie de

colonne. Le débit d'équilibrage de la colonne, de charge, de lavage et d'élution est de 16 cm/h. La chromatographie est effectuée à 20° C.

L'éluat est récupéré, puis dialyse, de préférence dans un tampon isotonique. En suivant le déroulement de la chromatographie, on constate que l'on peut charger au moins 0,5 g de β2' -glycoprotéine I par litre de lit de chromatographie.

On a analysé par électrophorèse dénaturante SDS PAGE l'éluat obtenu du gel d'hydroxyapatite (BIO-GEL HTP). On a constaté la présente d'une seule bande correspondant à la présence d'une protéine ayant un poids moléculaire de 50 000 ± 3 000 et ce, après ou sans réduction par le 2-mercaptoéthanol. La pureté de cette préparation a été testée en chromatographie dite "HPLC" sur "FRACTOGEL TSK 3000 SW" (appareil Tosho) et l'on constate également la présence d'un seul pic protéique. La glycoprotéine ainsi isolée a les caractéristiques de compositions et séquences indiquées précédemment dans la présente description qui montrent que c'est une β2-glycoprotéine I allotype : la β2' -glycoprotéine I.

Les exemples donnés ci-après montrent la stabilisation de l'albumine par la composition contenant la β2' -glycoprotéine I. EXEMPLE 1

On prépare deux solutions d'albumine, A et B, de même concentration protéique (90 mg/ml), de même pH (7, 1), et de même force ionique. La solution A est une solution d'albumine obtenue selon le procédé décrit ci-dessus mais n'ayant pas subi de traitement par chromatographie et la solution B est la solution d'albumine purifiée obtenue après chromatographie par affinité sur un gel de dextran sulfate pour enlever notamment la composition protéinique retenue sur la colonne de chromatographie. Ces deux solutions d'albumine A et B sont incubées à 60°C. A chaque heure d'incubation, et ceci pendant une durée de 5 heures, la turbidité de chaque solution est mesurée à l'aide d'un tubidimètre RATIO XR (HACH 43900).

La courbe 1 de turbidité en fonction du temps montre une turbidité, due à la chaleur, plus grande pour la solution d'albumine B que pour la solution d'albumine A, ce qui montre que l'on a enlevé de

l'albumine A, grâce aux étapes chromatographiques, un inhibiteur de la dénaturation protéique due à la chaleur. EXEMPLE 2

A la solution d'albumine B, décrite dans l'exemple précédent, ayant une concentration protéique de 70 mg/ml, sont rajoutées des quantités croissantes d'éluat de la chromatographie d'affinité sur du dextran sulfate constituant la composition protéinique. La courbe 2 montre que lorsque la concentration de cet éluat augmente, la turbidité de l'albumine après 5 heures de chauffage à 60°C diminue. Cette courbe démontre d'une part que la composition protéinique agit comme inhibiteur de la tyndallisation et d'autre part que cette inhibition est dose dépendante.