以下、本発明を実施例によりさらに詳しく� ��明するが、本発明はこれらの実施例のみに� ��定されるものではない。特に記載のない限� ��全ての操作は25℃の環境下で行った。
 <高圧ホモジナイザーによる分散処理>
 マイクロフルイディックス社製油圧式超高� ��ホモジナイザーM-110-E/Hを用いた。その際の� ��理圧力は50MPaであり、高圧部であるチャン� �ーを10回通す操作を行った。

 <平均粒径の測定>
 必要な倍率に応じて次の2種類の電子顕微鏡 を用い、セルロース微粒子の観察を行った。 日本電子株式社製透過型電子顕微鏡JEM2000EX(10 0kVの加速電圧および5万倍または10万倍の倍率 で観察)、日本電子株式会社製走査型電子顕� �鏡JSM-6380(10kVの加速電圧および2万倍の倍率で 観察)を用いた。セルロース誘導体微粒子分� �液から粉末状セルロース誘導体微粒子への� �燥は、特に記載のない限り、セルロース誘� �体微粒子分散液を液体窒素で急速凍結し減� �させることで凍結減圧乾燥を行った。
 上記のようにして得られた画像を、マウン� ��ック社製画像解析式粒度分布測定ソフトウ� ��アMac-View,Ver.3を用いて解析した。その測定� �数は正確性を確保するために100個以上とし� �一枚の画像に映る粒子が100個に満たない場� �は2枚以上の画像を解析した。

 <セルロース微粒子のカルボキシル化の確 認>
 上記と同様の方法で粉末状カルボキシル化� ��ルロース微粒子を調整し、日本電子製核磁� ��共鳴測定装置JNM-ECA400を用いて1H-核磁気共鳴 スペクトルを測定した。スペクトルよりセル ロース骨格のC1に結合しているプロトンと、� ��ルボキシルメチル基のメチレンプロトンの� ��分値比を読み取り置換度を算出した。以下� ��条件にて測定を行った。
 測定溶媒:11wt%重苛性ソーダ溶液(重水および 重苛性ソーダより調整)
 C1プロトン出現位置:4.13ppm
 メチレンプロトン出現位置:3.37ppm、3.65ppm
 <セルロース微粒子のアミノ化の確認>
 従来公知の方法でケルダール法による分析� ��行い、アミノ化セルロース微粒子中に含ま� ��る窒素量を定量しアミノ化セルロースの分� ��量から置換度を算出した。ただし架橋構造� ��含み分子量が定義できないものに関しては� ��換度の算出が不可能なので行わなかった。
<セルロース微粒子のその他誘導体化の確� �>
 上記カルボキシル化の確認同様に、それぞ� ��の置換基に応じた出現位置とC1プロトン出� �位置の積分値を比較する事で置換度の算出� �行った。
<セルロース微粒子の架橋化の確認>
 架橋前のセルロース微粒子重量と架橋後の� ��ルロース微粒子重量を測定し、重量の増量� ��より架橋の置換度の算出を行った。

 <診断薬としての性能評価>
 紫外可視分光光度計(日本分光株式会社製、 V-630)を用いて測定を行った。以下の条件にて 測定を行った。
 検体:3.0μl
 希釈液:160μl
 診断薬量:40μl
 測定波長:600nm
 測定ポイント:検体と混合直後と5分後の吸� �度変化値を測定
 反応温度:37℃

 <実施例中に用いた試薬等の説明>
 アセトン:和光純薬工業株式会社製、特級
 イソプロピルアルコール:キシダ化学株式会 社製、特級
 ジメチルスルホキシド:和光純薬工業株式会 社製、特級
 テトラヒドロフラン:和光純薬工業株式会社 製、特級
 クロロ酢酸ナトリウム:和光純薬工業株式会 社製
 2-クロロエチルアミン塩酸塩:和光純薬工業� ��式会社製
 エピクロルヒドリン:和光純薬工業株式会社 製
 2-モルホリノエタンスルホン酸(MES緩衝液用) :株式会社同仁化学研究所製
 リン酸二ナトリウム12水和物(リン酸緩衝液� ��):和光純薬工業株式会社製
 リン酸二水素カリウム(リン酸緩衝液用):和� ��純薬工業株式会社製
 2-アミノ-2-(ヒドロキシメチル)プロパン-1,3-� ��オール塩酸塩(Tris緩衝液用):Merck社製
 1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カル� ��ジイミド塩酸塩(EDC):株式会社同仁化学研究� ��製
 抗CRP抗体:和光純薬工業株式会社製、Anti Hum an CRP モノクローナル抗体
 CRP抗原:和光純薬工業株式会社製、LT・CRP-HS� ��ャリブレーターセットT
    (抗原濃度5種類:0.4、1.2、3.5、16.0、35.0mg /dl)
 その他実施例中に特に記載のない限り、和� ��純薬工業株式会社製の試薬を用いた。

 [実施例1]
 従来公知の方法で、セルロース濃度0.37wt%、 銅濃度0.13wt%、アンモニア濃度1.00wt%の銅アン� ��ニアセルロース溶液を調製した。さらにテ� ��ラヒドロフラン濃度89.0wt%、水濃度11.0wt%の� �固液を調製した。
 マグネティックスターラーを用い凝固液5000 gをゆっくり攪拌しながら、調製しておいた� �アンモニアセルロース溶液500gを添加した。5 秒程度攪拌を継続したのちに10wt%の硫酸1000g� �加え中和、再生を行い、セルロース微粒子� �含有したスラリー6500gを得た。
 得られたスラリーを10000rpmの速度で10分間遠 心分離した。沈殿物をデカンテーションによ り取り出し、脱イオン水を注入して攪拌し、 再び遠心分離した。PHが6.0~7.0になるまでこの 操作を数回繰り返し、その後高圧ホモジナイ ザーによる分散処理を行い、セルロース微粒 子分散液150gを得た。得られたセルロース微� �子の平均粒径を測定した結果、261nmであった 。またそのCV値は18%であった。

 得られたセルロース微粒子分散液の一部� ��純水、イソプロピルアルコールを加え、分� ��媒体のイソプロピルアルコール:水の比が85: 15となり、かつ分散媒体中の粒子濃度が0.20wt% になるように調整し、100g(うちセルロース分� ��0.2g)のセルロース微粒子分散液を用意した� �セルロース微粒子分散液を回転子と共にナ� �型ガラスフラスコに入れ、ガラス製還流管� �取り付けた。約10℃の水道水を還流させ冷却 しながら、セルロース微粒子分散液が50℃と� ��るようウォーターバスにて30分間加熱した� �なお加熱はマグネティックスターラーを用� �て緩やかに攪拌させながら行った。さらに11 %の苛性ソーダ溶液を調整し、0.54g(セルロー� �:苛性ソーダのモル比が1.0:1.2)をセルロース� �粒子分散液に攪拌しながら加えた。さらに30 分間攪拌を継続し、アルカリセルロースを調 整した。アルカリセルロースの調整後、さら に攪拌を継続しながらクロロ酢酸ナトリウム を70mg(セルロース:クロロ酢酸ナトリウムのモ ル比が1.0:0.5)を加えた。

 3時間の間、攪拌、および還流を継続し、 セルロースのカルボキシル化を行った。3時� �経過後、ウォーターバスによる加熱を止め� �ナス型フラスコを氷水で冷やし、反応後ス� �リーの温度が20℃になるまで冷却した。冷却 後に攪拌を継続しながら、10%塩酸を5.0g加え� �反応後スラリーのPHを酸性にした。前記と同 様に遠心分離機を用いて、デカンテーション -脱イオン水による希釈を数回繰り返し、PHを 6.0~7.0とし、さらに高圧ホモジナイザーによ� �分散処理を行い、カルボキシル化セルロー� �微粒子分散液100gを得た。得られたカルボキ� ��ル化セルロース微粒子の平均粒径を測定し� ��結果、264nmだった。またそのCV値は19%であっ た。電子顕微鏡写真を図1に示す。さらに核� �気共鳴測定装置を用いて置換度を算出した� �ころ、置換度は、0.078であった。

 [実施例2]
 実施例1で調整した平均粒径261nmのセルロー� ��微粒子分散液を用い、加えるクロロ酢酸ナ� ��リウムの量が140mg(セルロース:クロロ酢酸ナ トリウムのモル比が1.0:1.0)であること以外は� ��施例1と同様の方法でセルロースのカルボキ シル化を行った。得られたカルボキシル化セ ルロース微粒子の平均粒径を測定した結果、 263nmだった。またそのCV値は21%であった。置� �度は、0.157であった。

 [実施例3]
 実施例1で調整した平均粒径261nmのセルロー� ��微粒子分散液を用い、加えるクロロ酢酸ナ� ��リウムの量が280mg(セルロース:クロロ酢酸ナ トリウムのモル比が1.0:2.0)であること以外は� ��施例1と同様の方法でセルロースのカルボキ シル化を行った。得られたカルボキシル化セ ルロース微粒子の平均粒径を測定した結果、 266nmだった。またそのCV値は22%であった。置� �度は、0.312であった。

 [実施例4]
 実施例1で調整した平均粒径261nmのセルロー� ��微粒子分散液を用い、加えるクロロ酢酸ナ� ��リウムの量が560mg(セルロース:クロロ酢酸ナ トリウムのモル比が1.0:4.0)であること以外は� ��施例1と同様の方法でセルロースのカルボキ シル化を行った。得られたカルボキシル化セ ルロース微粒子の平均粒径を測定した結果、 269nmだった。またそのCV値は22%であった。置� �度は、0.486であった。

 [比較例1]
 実施例1で調整した平均粒径261nmのセルロー� ��微粒子分散液を用い、加えるクロロ酢酸ナ� ��リウムの量が700mg(セルロース:クロロ酢酸ナ トリウムのモル比が1.0:5.0)であること以外は� ��施例1と同様の方法でセルロースのカルボキ シル化を行った。得られたカルボキシル化セ ルロース微粒子の平均粒径を測定するために 電子顕微鏡画像を撮影したところ、網目状の 構造になっていることが確認された。なお置 換度は、0.540であった。
 セルロース誘導体がカルボキシル化セルロ� ��スの場合、置換度が0.54になると水に溶解し やすくなり、粒子形状を保てなかった。

 [比較例2]
 実施例1で調整した平均粒径261nmのセルロー� ��微粒子分散液を用い、加える11%苛性ソーダ� ��量が4.50g(セルロース:苛性ソーダのモル比が 1.0:10.0)、クロロ酢酸ナトリウムの量が7.0g(セ� ��ロース:クロロ酢酸ナトリウムのモル比が1.0 :50.0)であること以外は実施例1と同様の方法� �セルロースのカルボキシル化を行った。反� �終了後に遠心分離機を用いた水洗を試みた� �、生成したカルボキシル化セルロースが反� �溶媒である85%イソプロピルアルコール(15%は� ��)に溶解してしまっており回収する事はでき なかった。

 [実施例5]
 銅アンモニアセルロース溶液のアンモニア� ��度が6.3wt%、凝固液がイソプロピルアルコー� ��であること以外は実施例1と同様の方法で、 平均粒径が9.2nm、CV値が20%のセルロース微粒� �を得た。さらに実施例3と同様の方法でセル� ��ースのカルボキシル化を行い、平均粒径が9 .8nm、CV値が20%、置換度が0.320のカルボキシル� ��セルロース微粒子を得た。

 [実施例6]
 銅アンモニアセルロース溶液のアンモニア� ��度が8.5%、凝固液がテトラヒドロフラン90.0wt %、水10.0wt%であること以外は実施例1と同様の 方法で、平均粒径が521nm、CV値が26%のセルロ� �ス微粒子を得た。さらに実施例1と同様の方� ��でセルロースのカルボキシル化を行い、平� ��粒径が524nm、CV値が28%、置換度が0.151のカル� ��キシル化セルロース微粒子を得た。

 [比較例3]
 従来公知の方法でスプレードライ法により� ��均粒子径5121nm、CV値10%のセルロース微粒子� �得た。さらに実施例3と同様の方法でセルロ� ��スのカルボキシル化を行い、平均粒径が5020 nm、CV値が11%、置換度が0.325のカルボキシル化 セルロース微粒子を得た。

 実施例1~6及び比較例1~3から明らかなよう� ��、カルボキシル化の置換度は実施例1<実� �例2<実施例3<実施例4<比較例1<比較例 2であり、用いる苛性ソーダの量と反応剤の� �に応じて置換度をコントロールすることが� �きた。また用いるセルロース微粒子の大き� �を変えても同様に誘導体化が可能であった� �

 [実施例7]
 実施例1で調整した平均粒径261nmのセルロー� ��微粒子分散液を純水に分散し、水中の粒子� ��度が1.0wt%になるように調整し、20g(内、セル ロース分は0.2g)のセルロース微粒子分散液を� ��意した。次いで、実施例1同様に温度を50℃� ��調整し、攪拌しながら苛性ソーダを加え、� ��中の苛性ソーダ濃度が9.0wt%になるよう調整� ��、30分攪拌を継続した。更に2-クロロエチル アミン塩酸塩430mg(セルロース:2-クロロエチル アミン塩酸塩のモル比が1.0:3.0)を加えた。3時 間の間、攪拌および還流を継続し、セルロー スの1級アミノ化を行った。3時間経過後に、� ��施例1と同様にして、1級アミノ化セルロー� �微粒子分散液100gを得た。得られた1級アミノ 化セルロース微粒子は平均粒径259nm、CV値19%� �置換度0.099であった。

 [実施例8]
 用いる2-クロロエチルアミン塩酸塩の量を1. 43g(セルロース:2-クロロエチルアミン塩酸塩� �モル比が1.0:10.0)としたこと以外は、実施例7� ��同様の方法で1級アミノ化セルロース微粒子 分散液100gを得た。得られた1級アミノ化セル� ��ース微粒子は平均粒径270nm、CV値18%、置換度 0.209であった。

 [実施例9]
 用いる2-クロロエチルアミン塩酸塩の量を7. 16g(セルロース:2-クロロエチルアミン塩酸塩� �モル比が1.0:30.0)としたこと以外は、実施例7� ��同様の方法で1級アミノ化セルロース微粒子 分散液100gを得た。得られた1級アミノ化セル� ��ース微粒子は平均粒径268nm、CV値21%、置換度 0.323であった。

 [実施例10]
 用いる反応剤を2-クロロエチルトリメチル� �ンモニウムクロリド9.56g(セルロース:2-クロ� �エチルトリメチルアンモニウムクロリドの� �ル比が1.0:50.0)としたこと以外は実施例7と同� ��の方法で4級アミノ化セルロース微粒子を得 た。得られた4級アミノ化セルロース微粒子� �平均粒径265nm、CV値22%であり、置換度0.178で� �った。また実施例7~9と同様に、用いる反応� �の量を変えたところ、用いる反応剤の量に� �じて置換度をコントロール可能であること� �確認した。

 [実施例11]
 用いる反応剤を2-クロロエタノール4.97g(セ� �ロース:2-クロロエタノールのモル比が1.0:50.0 )としたこと以外は実施例7と同様の方法でヒ� ��ロキシエチル化セルロース微粒子を得た。� ��られたヒドロキシエチル化セルロース微粒� ��は平均粒径263nm、CV値24%であり、置換度0.257� ��あった。なお置換度の算出はNMRにより行っ� ��。また実施例7~9と同様に、用いる反応剤の� ��を変えたところ、用いる反応剤の量に応じ� ��置換度をコントロール可能であることを確� ��した。

 [実施例12]
 実施例1で調整した261nmのセルロース微粒子� ��散液を用い、加える11%苛性ソーダ溶液の量� ��2.25g(セルロース:苛性ソーダのモル比が1.0:5. 0)にしたこと、反応剤としてクロロ酢酸ナト� ��ウムの代わりに沃化メチル17.5g(セルロース: 沃化メチルのモル比が1.0:100.0)を用いたこと� �外は実施例1と同様の方法でメチル化セルロ� ��ス微粒子分散液100gを得た。得られたメチル 化セルロースは平均粒径264nm、CV値20%、置換� �0.972であった。なお置換度の算出はNMRにより 行った。また、実施例7~9と同様に、用いる反 応剤の量を変えたところ、用いる反応剤の量 に応じて置換度をコントロール可能であるこ とを確認した。

 [実施例13]
 用いる反応剤をブロモエタン6.73g(セルロー� ��:ブロモエタンのモル比が1.0:50.0)としたこと 以外は実施例12と同様の方法でエチル化セル� ��ース微粒子分散液を得た。得られたエチル� ��セルロース微粒子は平均粒径251nm、CV値20%で あり、置換度0.745であった。なお置換度の算� ��はNMRにより行った。また実施例7~9と同様に� ��用いる反応剤の量を変えたところ、用いる� ��応剤の量に応じて置換度をコントロール可� ��であることを確認した。
 実施例7~13で明らかなように、用いる反応剤 を変えることで置換基の種類を変えることが 出来た。

 [実施例14]
 実施例1で調整した平均粒径261nmのセルロー� ��微粒子分散液を純水に分散し、水中の粒子� ��度が10.0wt%になるように調整し、100gのセル� �ース微粒子分散液を調整した(セルロース分1 0g)。分散液をマグネティックスターラーで攪 拌させ、80℃の環境下で還流を行いながら、� ��リオキザール系レジン加工剤「ベッカミンL F-X」(大日本インキ化学工業社製)を50g、塩化� ��グネシウム系触媒「カタリストM」(大日本� �ンキ化学工業社製)を15g加え、30分攪拌を継� �しセルロース微粒子の架橋を行った。得ら� �た架橋セルロース微粒子分散液を実施例1と� ��様に遠心分離機を用いて、デカンテーショ� ��-脱イオン水による希釈を3回繰り返し、架� �セルロース微粒子分散液を得た。セルロー� �の重量変化より、架橋された置換基の割合� �計算した。架橋された水酸基の割合を置換� �で表すと0.32であった。得られた架橋セルロ� ��ス微粒子を比較例2と同様の方法でカルボキ シル化を行ったところ、遠心分離機による処 理で微粒子の回収ができ、カルボキシル化及 び架橋化セルロース誘導体微粒子を得た。得 られたカルボキシル化及び架橋化セルロース 誘導体微粒子の平均粒径は275nm、CV値は23%で� �った。また得られたカルボキシル化及び架� �化セルロース誘導体微粒子は11%重苛性ソー� �溶液に溶解させることができなかったため� �0.1%苛性ソーダ溶液にて中和滴定を行い、溶� ��のPHが7.0になった時の0.1%苛性ソーダ溶液の� ��用量よりカルボキシル化置換度を産出した� ��ころ、カルボキシル化置換度は2.13であった 。
 比較例2と実施例の比較により、カルボキシ ル化に架橋構造を加えることで高いカルボキ シル化置換度を持ちながらも水に不要な微粒 子を得る事に成功した。

 [実施例15]
 実施例7と同様に、セルロースの粒子濃度が 1.0wt%、苛性ソーダ濃度が9.0wt%になるように調 整し、反応剤としてエピクロルヒドリン2.28g( セルロース:エピクロルヒドリンのモル比が1. 0:20.0)を加えた。
 3時間の間、攪拌および還流を継続し、セル ロースの水酸基のエポキシ活性化を行った。 3時間経過後、さらに23wt%アンモニア水を9.14g( セルロース:アンモニアのモル比が1.0:100.0)を� ��えてエポキシ基をアンモニアで開裂させ1級 アミノ化と架橋を行った。反応終了後は実施 例7と同様にして水洗を行い、アミノ化セル� �ース微粒子分散液100gを得た。得られたアミ� ��化セルロース微粒子の平均粒径を測定した� ��果、270nmだった。またそのCV値は20%であった 。さらにケルダール法により、アミノ化セル ロース中に含まれる窒素分を定量したところ 、1.21%であった。また実施例7~9と同様に、用� ��る反応剤の量を変えたところ、用いる反応� ��の量に応じて窒素分のコントロールが可能� ��あることを確認した。このようにエピクロ� ��ヒドリンを用いることで、架橋とアミノ化� ��同時に行う事ができることを確認した。

 以上の実施例1~15と比較例1~3で得られたセ ルロース誘導体微粒子の置換基の種類、置換 度、平均粒径、CV値、電子顕微鏡画像より分� ��る微粒子の形状をまとめて表1に示す。また 実施例1、5、6の途中で得られている誘導体化 を行う前のセルロース微粒子を、それぞれ比 較例4~6とし、平均粒径、CV値、微粒子の形状� ��表1に併せて示す。

 得られたセルロース誘導体微粒子およびセ� ��ロース微粒子の分散安定性を評価したとこ� ��、比較例3を除きいずれも界面活性剤など添 加することなく、安定な分散状態を保ってい た。比較例3は粒径が大きいため、数時間の� �置後に沈降が生じていた。

 [実施例16]
 <緩衝液の作製>
 以下3種類の緩衝液を作製した。作製方法は 従来公知の方法で行い、MESおよびTris緩衝液� �PH調整は塩酸と苛性ソーダを用い、リン酸緩 衝液はリン酸二ナトリウム12水和物とリン酸� ��水素カリウムの量を調整しPH調整を行った� �また水は全て脱イオン水を用いた。
 (1)MES緩衝液:PH=5.0、MES濃度50mM
 (2)リン酸緩衝液:PH=7.2、リン酸濃度50mM
 (3)Tris緩衝液:PH=8.0、Tris濃度10mM

 <カルボキシル化セルロース微粒子のカル ボジイミド活性化>
 実施例1で得られたカルボキシル化セルロー ス微粒子分散液2.5gを15,000rpmの速度で30分間遠 心分離を行った。沈殿物をデカンテーション により取り出し、MES緩衝液を0.5g加えて攪拌� �、カルボキシル化セルロース微粒子をMES緩� �液に分散させた。
 1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カル� ��ジイミド塩酸塩(以下カルボジイミドと言う )をMES緩衝液に溶解させ、カルボジイミド濃� �が20wt%となるよう調整し、そのうちの0.5gを� �ルボキシル化セルロース微粒子分散液に加� �た。恒温振盪槽を用い25度の環境下で1時間� �応させカルボジイミド活性化セルロース微� �子を調整した。反応終了後に15,000rpmの速度� �30分間遠心分離を行った。沈殿物をデカンテ ーションにより取り出し、リン酸緩衝液を0.6 7g加えて攪拌し、カルボジイミド活性化セル� ��ース微粒子をリン酸緩衝液に分散させた。

 <カルボジイミド活性化セルロース微粒子 への抗CRP抗体結合>
 さらに抗CRP抗体水溶液75μlをカルボジイミ� �活性化セルロース微粒子分散液に加え、恒� �振盪槽を用い25℃の環境下で20時間反応させ� ��抗CRP抗体結合セルロース微粒子を調整した� ��反応終了後に15,000rpmの速度で30分間遠心分� �を行った。沈殿物をデカンテーションによ� �取り出し、Tris緩衝液を2g加えた。15,000rpmの� �度で30分間遠心分離を行い、沈殿物をデカン テーションにより取り出す作業を2回行い、� �終的に粒子濃度が0.40wt%になるようTris緩衝液 を加えた。得られた分散液を超音波分散機(� �式会社エスエムテー社製、UH-50)によって処� �し、抗CRP抗体担持セルロース微粒子分散液� �調整した。

 <微粒子への抗体結合量算出>
 上記とは別に、抗CRP抗体をリン酸緩衝液に� ��え数種類の濃度のものを作製し、分光光度� ��(日本分光社製、V-630)を用いて280nmの固定波� ��で吸光度を測定し、抗CRP抗体の検量線を作� ��した。上記抗CRP抗体との反応後にデカンテ� ��ションした際の上澄み液を同じく分光光度� ��で測定し、微粒子に担持されなかった抗CRP� ��体量を計量し、そこから逆算して微粒子に� ��持された抗CRP抗体量を計算すると、粒子1mg� ��りの抗CRP抗体担持量は180μgであった。

 <ラテックスイノムアッセイ>
 得られた抗CRP抗体担持セルロース微粒子分� ��液を用いて診断薬としての性能評価を行っ� ��。抗原濃度既知の5種類の検体に加え、Tris� �衝液のみと混合した検体(抗原濃度0mg/dlに相� ��)の合計6種類の検体の測定を行った。その� �果を図2に示す。
 図2から明らかなように、抗CRP抗体担持セル ロース微粒子はCRP抗原の量によって凝集度合 いが変化し、診断薬としての利用が可能であ った。

 [実施例17]
 抗CRP抗体担持後に微粒子濃度5.0wt%の水分散� ��とすること以外は実施例16と同様の方法で� �CRP抗体担持セルロース微粒子分散液を調整� �た。得られた分散液をスライドグラス(松浪� ��子工業社製、MASコートスライドグラス)上に 滴下し、25℃の環境下で24時間静置乾燥させ� �。滴下した部分を電子顕微鏡で観察したと� �ろ、CRP抗体担持セルロース微粒子が表面に� �定されていることが確認できた。