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Title:
DNA CHIP SUITABLE FOR HIGH-THROUGHPUT DETECTION OF TRANSGENIC PRODUCT
Document Type and Number:
WIPO Patent Application WO/2015/067025
Kind Code:
A1
Abstract:
The present invention provides a DNA chip suitable for high-throughput detection of a transgenic product. A specific DNA probe capable of detecting 97 transgenic targets is fixed on a carrier of the DNA chip, and the nucleic acid sequences of the DNA probe are shown by SEQ ID NO. 1 to SEQ ID NO. 97.

Inventors:
YANG LITAO (CN)
TAO SHENGCE (CN)
ZHANG DABING (CN)
SHAO NING (CN)
JIANG SHIMENG (CN)
Application Number:
PCT/CN2014/077945
Publication Date:
May 14, 2015
Filing Date:
May 21, 2014
Export Citation:
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Assignee:
UNIV SHANGHAI JIAOTONG (CN)
International Classes:
C12Q1/68; C40B40/06
Domestic Patent References:
WO2003000898A12003-01-03
WO2010080829A12010-07-15
Foreign References:
US20020144307A12002-10-03
CN102965442A2013-03-13
CN102115783A2011-07-06
CN103667450A2014-03-26
Attorney, Agent or Firm:
SHANGHAI HANGSOME INTELLECTUAL PROPERTY LTD. (CN)
上海汉声知识产权代理有限公司 (CN)
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Claims:
权 利 要 求 书

1、 一种适用于转基因产品高通量检测的 DNA芯片, 其特征在于, 所述 DNA芯片的载体 上固定有可检测 97个转基因靶标的特异性 DNA探针,所述 DNA探针为 SEQ ID NO. 1〜SEQ ID NO. 97所示的核酸序列。

2、 如权利要求 1所述的适用于转基因产品高通量检测的 DNA芯片, 其特征在于, 在所 述 DNA探针核心碱基的 5 ' 端连接了 10〜30个 T碱基的氨基连接臂。

3、 如权利要求 2所述的适用于转基因产品高通量检测的 DNA芯片, 其特征在于, 在所 述 DNA探针核心碱基的 5 ' 端连接了 15个 T碱基的氨基连接臂。

4、 如权利要求 1所述的适用于转基因产品高通量检测的 DNA芯片, 其特征在于, 所述 DNA探针可与含有转基因成分的 PCR扩增产物特异性互补结合。

5、 如权利要求 1所述的适用于转基因产品高通量检测的 DNA芯片, 其特征在于, 所述 载体为载玻片、 硅片、 硝酸纤维素膜、 尼龙膜或聚苯乙烯。

6、 一种用于高通量检测转基因农产品的试剂盒, 其特征在于, 所述试剂盒包括权利要 求 1所述的 DNA芯片。

Description:
适用于转基因产品高通量检测的 DNA芯片 技术领域

本发明涉及生物工程技术领域的检测方法, 具体涉及一种适用于转基因产品高通量检 测的 DNA芯片。 转基因生物 (Genetical ly Modified Organisms, GMOs) 是指一类生物有机体, 其遗 传物质的改变不是通过自然条件下的相互杂交 或自然整合方式实现的。 转基因生物本身必 须是一个可进行繁殖或传递遗传物质的生物学 个体。 广义上 GM0包括所有生命形式在内的 转基因生物, 狭义上指转基因植物和转基因动物, 又因为转基因动物除了观赏鱼和宠物外 还没有商品化, 所以严格意义上是指转基因植物 (李全芬等, 2011, 中国畜牧兽医, 38, 152 )。

自从 1994年, 第一例转基因事件一转基因番茄 FLAVR SAVR的出现, 到 1996年孟山都 的转基因大豆 Roundup Ready被商业化以来, 全球转基因植物面积每年以两位数的百分比 迅速增加。据 ISAAA数据统计, 截止 2012年底, 全球转基因作物种植面积达到 1. 703亿公 顷, 比 2011年的 1. 6亿公顷增长了 6%, 即 1030万公顷。 从 1996年至 2011年, 转基因作 物通过以下方式为粮食安全、 可持续性以及气候变化做出贡献: 增加价值 982亿美元的农 作物产量; 节省 4. 73亿公斤的杀虫剂, 更好地维护了环境; 通过节省 1. 087亿公顷土地, 保护了生物多样性; 改善了超过 1500万小型农户即超过 5000万人口的生计。 美国仍是转 基因作物种植国中的领先者, 而加拿大的转基因油菜种植面积最大, 近几年巴西的转基因 种植发展也十分迅速, 种植 3660万公顷, 同比增长 21%。 2012年 28个种植转基因作物的 国家中, 20个发展中国家转基因作物的种植面积 (占全球的 52% ) 超过了 8个发达国家的 转基因作物种植面积 (占全球的 48%)

截止 2012年, 中国的转基因作物种植面积位居全球第六, 我国目前商业化种植的转基 因作物仅有用于纺织材料的 Bt棉花, 种植面积达 400万公顷, 采用率为 80%, 平均每个农 民种植 0. 5公顷的 Bt棉花。 有关专家预测, Bt水稻和转基因植酸酶玉米可能成为继 Bt棉 花的商业化品种, 并对中国市场产生重大影响。这两个品种在 2009年就获得了农业部颁发 的生物安全证书, 并正在开展田间试验。 种植 Bt水稻将增加 8%的产量, 既可以增补国内 粮食也可以带来近 40亿美元的经济收入目前约 75%的水稻受到虫害影响, 而转基因品种能 避免虫害。 总部位于北京的 Origin Agritech公司希望将转基因植酸酶玉米商业化, 而是 抗草甘膦玉米和 Bt玉米, 目前转基因植酸酶玉米环境田间测试已经进入 第三阶段。 目前, 抗黄色花叶病毒品种的转基因小麦正处在田间 试验阶段, 距上一个未被批准的转基因小麦 已有 7年, 其他特性的品种也处于发展阶段。

随着转基因作物的进一步推广和普及, 其生物安全问题已成为全球关注的热点。 有关 安全性的问题主要分为生态环境安全和食品安 全性两个方面, 其中转基因食品的安全性至 今也没有定论。 公众的焦点忧虑有: 表型性状的改变; 营养成分的变化及抗营养因子的出 现(如蛋白酶抑制剂、 脂肪氧化酶的产生或含量的变化); 出现新的过敏原; 天然有毒物的 产生(如茄碱、 葫芦素、 a-番茄素等); 致病性, 即转基因植物产品食用后是否会治病; 标 记基因和报告基因的安全性等 (聂呈荣等, 2003, 生态学杂志, 22, 43-44)。 我国目前虽 然尚未发生严重的转基因食品安全性事件, 但在转基因安全性, 以及生物安全性问题上确 实存在着诸多不稳定因素亟待解决。。而对众 多转基因事件和元件的快速, 高效检测则是转 基因作物安全监控的关键一步。 目前, 转基因产品的检测方法主要有蛋白质检测方法 (主要 是免疫分析法)和碰检测方法(主要是 PCR技术)。

蛋白质检测方法: 转基因产品可应用免疫和物理化学技术进行检 测, 其中酶联免疫吸 附法应用最广泛, 它是依赖特异性抗体结合显色系统对目的蛋白 (抗原)进行检测。 该方法 最大的局限就是只能针对初步加工或未经加工 、成分单一蛋白质转基因产品进行检测(van Dui jn G; et al , 2002, AOAC Int, 85, 787-791 ), 且与 DNA检测方法相比发展较为缓慢, 原因有 2个方面: ①制作特异性抗体的成本高; ②特异性抗体的制备比寡核苷酸要复杂。 近年来, 蛋白检测方法逐步发展了一些其他方法, 如还有免疫磁性电化学传感器测定法 (Volpe G, et al , 2006, Anal Lett, 39, 1599-1601)、 二维电泳测定法(Kim V H, et al , 2006, Microbio Biotechnol , 16, 26-30)、 质谱测定法(Ocana M F, et al , 2007, Rapid Commun Mass Spectrom, 21 , 321-326)等, 但这些方法设备昂贵, 检测成本较高。

DNA检测方法:主要是应用 PCR技术进行检测。 PCR在转基因产品检测中占据主导地位, 被全球贸易商、 食品加工企业和执法机关广泛采用。 GM0的遗传修饰主要是 DNA修饰, 所 以相对于转录水平 (RNA)、翻译水平(蛋白)和表型水平(生物学 定法)的检测方法来说, DNA 检测是检测 GM0的最高水平。 PCR检测的主要过程包括: ①检测样品中 DNA的提取; ② PCR 扩增; ③扩增产物检测。 但是随着商业化转基因作物的多样性不断增加 , 传统的单重 PCR 已不能满足全球范围内 GM0数量和复杂度不断增加的检测要求, 同时也促进了新方法的诞 生。 如实时荧光 PCR多靶分析方法、 多重 PCR—毛细管电泳法、液相、 固相芯片技术等(李 全芬等, 2011, 中国畜牧兽医, 38, 154-155 )。

实时荧光 PCR多靶分析方法, 是在定性 PCR基础上加入一种荧光物质, 模板每扩增一 次, 收集一次荧光信号, 荧光信号随着扩增次数成比例地增加, 通过累积的荧光实时监测 整个 PCR过程, 最后通过标准曲线对模板进行定量分析, 无需进行琼脂糖凝胶电泳鉴定。 实时荧光定量 PCR包括 SYBR Green荧光染料法和 TaqMan探针法等, 其中 TaqMan探针法更 为常用 ( Querci M, et al, 2009, Food Anal. Methods , 2, 238-335 )。 此种检测方法的 缺点是需要配套仪器且未大规模应用。

多重 PCR—毛细管电泳法, 多重 PCR是在一个 PCR反应管中同时加 2对以上引物和 2 种以上 DNA模板进行扩增的 PCR反应, 能同时检测多种靶基因。 毛细管电泳是在毛细管中 填入凝胶或缓冲液, 以高压电场为驱动力, 以毛细管为分离通道, 依据样品中各组分之间 淌度和分配行为上的差异而实现分离的一类液 相分离技术。二者并用是 GM0检测的新趋势, 但多次实验发现, 待检样品超过 10种时易出现假阳性结果 ( Chaouachi M, et al , 2008, Agric. Food Chem. , 56, 11596-11606 ), 方法有待进一步完善。

液相芯片技术, 结合了流式细胞技术和酶标检测技术, 通过调配 2种荧光染料的比例 获得 100多种荧光组合的小球, 每个荧光组合小球都标记有一种和靶 DNA序列进行结合的 探针 (Fantozzi A, et al , 2008 , Food Anal. Methods, 1, 10-17 ), 在探针与样品结合 后检测微球的荧光信号和样品信号即可得到检 测结果。 理论上微球可以结合任何引物 /探 针组合来更好地适应高通量检测的需求, 但液相芯片的缺点是还在进一步的研究中, 且需 要购买昂贵的液相芯片仪器。

固相芯片技术, 是一种高度集成的 DNA检测技术。 采用专用自动化设备将已知 DNA寡 核苷酸探针排列在玻片或硅片上, 然后将待测样品即 DNA与芯片探针杂交, 有相对应靶标 的 DNA就会出现相应的杂交信号, 这样就可以一次实验检测多个靶标 DNA的目的, 具有高 通量、 灵敏性高、 自动化程度高等特点。 本发明为固相 DNA芯片技术, 相比较上述几种方法, 有其特有的优点如, 实验原理、 操作简单, 所需时间短、 成本低廉, 对昂贵设备依赖性小; 随着转基因产品的不断增加, 可以有效地解决了大量转基因靶标同时检测的 问题。

发明内容

本发明的目的在于提供一种提高检测效率和检 测准确性, 降低检测成本, 缩短检测时 间的适用于转基因产品高通量检测的 DNA芯片。 该 DNA芯片适用于全球转基因产品高通量 检测, 可以检测目前涵盖约 97%的转基因靶标序列。

本发明的目的是通过以下技术方案来实现的:

本发明涉及一种适用于转基因产品高通量检测 的 DNA芯片,所述 DNA芯片的载体 上固 定有可检测 97个转基因靶标的特异性碰探针,所述 DNA探针为 SEQ ID NO. 1〜SEQ ID NO. 97 所示的核酸序列。

优选地, 在所述 DNA探针核心碱基的 5 ' 端连接了 10〜30个 T碱基的氨基连接臂。 这 样连接目的是为了有效地将探针连接和固定在 载体上,

进一步优选地, 在所述 DNA探针核心碱基的 5 ' 端连接了 15个 T碱基的氨基连接臂。 优选地, 所述 DNA探针可与含有转基因成分的 PCR扩增产物特异性互补结合。

优选地, 所述载体为载玻片、 硅片、 硝酸纤维素膜、 尼龙膜或聚苯乙烯。

本发明还涉及一种用于高通量检测转基因农产 品的试剂盒,所述试剂盒包括上述的 DNA 心片。

本发明具有的有益效果为: 可提高检测效率和检测准确性, 降低检测成本, 缩短检测 时间, 能与多种转基因靶标序列的扩增产物进行特异 性杂交, 本发明可同时检测 97种转基 因靶标序列, 基本涵盖了约 97%的转基因产品的靶标序列, 可适用于各种转基因产品的检 测和标识, 以及作为转基因成分定量实验、 制定转基因产品安全管理的重要技术支持。 附图说明

通过阅读参照以下附图对非限制性实施例所作 的详细描述, 本发明的其它特征、 目的和优点将会变得更明显:

图 1为 97种转基因靶标检测碰芯片的探针分布模式图

图 2 为实验室自配的 4种转基因大豆混合样品的杂交结果示意图;

图 3 为实验室自配的 8种转基因水稻混合样品的杂交结果示意图。 具体实施方式

下面结合附图和具体实施例对本发明进行详细 说明。 以下实施例将有助于本领域的技 术人员进一步理解本发明, 但不以任何形式限制本发明。 应当指出的是, 对本领域的普通 技术人员来说, 在不脱离本发明构思的前提下, 还可以做出若干调整和改进。 这些都属于 本发明的保护范围。

本发明利用生物芯片技术在一种载体, 如载玻片、 硅片、 膜或高分子材料上固定可检 测 97个转基因靶标的特异性 DNA探针, 形成较大密度 (200/microscope slide ) 的 DNA探 针阵列。 用载体表面的特异性碰探针杂交方法来检测转 基因产品中可能存在的绝大多数 外源插入片段。 具体步骤如下:

1、 常用转基因靶标序列的分析整理

通过 GMDD (GMO detection database , GMDD) , GM Crop Database和国内外的专利数 据库等, 分析整理出了目前广泛存在于全球种植的转基 因事件和其常用的转基因元件共计 97个靶标序列, 其中事件 55种, 元件 44种, 内源基因 8种, 并整理出 55个事件靶标序 列中含有的上述 44种元件的详细信息, 用于后续探针杂交结果的分析验证。

1、 DNA芯片的设计和制备

( 1 ) 探针设计、 筛选和制备

针对上述 97个靶标序列的扩增产物, 设计特异性的寡核苷酸探针, 其中, 事件序列的 产物由于是品系特异性的引物扩增产物, 只设计了一种探针, 对于元件和内源基因的探针, 分别设计了 2-4对, 探针片段大小为 (25 ± 5 ) bp, 探针合成时在核心碱基的 5 ' 端连接了 15个 T碱基的氨基连接臂, 即 5 ' -NH 2 - (T ) 15 -核心碱基。 合成后用反向柱纯化, 紫外定 探针筛选: 利用靶标序列的基因组模板进行一轮常规 PCR, 扩增后将产物稀释 1000倍 再利用通用引物进行二轮 PCR, 扩增产物与所设计的寡核苷酸探针进行杂交, 筛选出信号 与特异性强的探针。

探针制备: 寡核苷酸探针用 50%的 DMS0点样液溶解到 lOumol/L, 用基因芯片点样仪将 寡核苷酸探针点到经醛基化处理的载玻片上, 每个探针重复点样 4次, 以验证检测结果的 可重复性, 点样方式见附图 1, 图中, 玻片上有 97 X 2 X 2 (每个点重复 4次, 每一排的两 个点为同一个探针) 靶标序列探针, 上半部分, 从左到右, 按顺序排列; 下半部分, 为从 右到左按顺序排列。 白点即为探针, 灰点带圈为空白, 外围灰点为 landmark

( 2 ) 探针芯片前处理

制备好的探针芯片在 37°C湿盒中过夜固定, 固定后用 0. 2%SDS洗 3min, 去离子水清洗 后用封闭液(新配置的 0. 3%NaBH 4 溶液 +1 X PBS+25%无水乙醇)封闭 5min, 以去除自由醛基, 再用水充分冲洗, 最后离心干燥或氮气吹干。 制备好的 DNA芯片位于常温、 干燥处保存。

( 3 ) 杂交与杂交后处理

30uL杂交反应体系中加入 3uL荧光标记的 PCR产物。杂交缓冲液的组分包括: 20 x SSC, 50 X Denhardt ' s reagent (生工,上海)和 0. 2%SDS (w/v)。将杂交液于 95 °C变性处理 5 min, 然后即刻置于冰上骤冷, 冰浴 3 mir!。使用晶芯多样品芯片盖片(北京博奧生 物有限公司), 并通过加样孔将 30uL处理好的样品加入到 DNA微阵列, 然后置于湿盒, 55 °C反应 3h。

反应完毕, 将芯片分别使用清洗液 I和清洗液 I I进行清洗, 每次 5 min, 缓慢晃 动。 其中, 清洗液 I为 20 X SSC, 2%SDS, 42°C预热。 清洗液 II为 0. 2%SDS。 然后用去离子 清洗, 再离心干燥或氮气吹干。

( 4) 扫描和结果分析

使用芯片扫描仪 GenePix TM 4200A Scanner (Molecular Devices, USA)获得图像和数据, 扫描通道使用 635 nm和 532 nm, 扫描分辨率为 5um, PMT分别为 350和 300, power均为 100%, 扫描 1-2次。 将芯片扫描结果与先前整理的事件、 元件包含详细信息进行比较, 判 断芯片检测。

2、 结合实施例对本发明的探针芯片进行进一步说 明:

实施例 1

设计合适的引物和探针是准确进行 GM0检测的关键。 针对目前转基因产品中主要含有 的 97种靶标序列(41种常用插入元件, 48种常见事件和 8种内源基因), 设计特异性的引 物和探针, 设计的引物用常规 PCR进行特异性验证, 设计的多个探针用基因组模板进行筛 选, 最终确定了最为准确的引物和探针。

将实验室已有的 4种转基因大豆事件(A2704-12 , A5547-127, GTS40-3-2和 M0N89788 ) 的种子粉末, 利用商业化的 DNA提取试剂盒进行 DNA的提取和纯化, 再利用 NanoDrop 1000 测出碰的浓度, 并统一稀释到 10ng/ul, 4种模板各取 lOul充分混合作为待测样品。

利用亲疏水微孔芯片技术进行芯片 PCR反应。 即事先用基因芯片点样仪将设计好的 97 对引物点入芯片微孔中, 引流法加入 PCR反应体系, 从而进行第一轮的芯片 PCR反应。 待 反应结束后通过离心方式收集微孔中扩增产物 (离心前加入 50ul 去离子水便于取出部分 PCR产物), 取出 2ul加入到第二轮的普通 PCR体系, 该轮扩增的引物为通用引物, 目的是 对各目标片段进行平行地再放大, 以便于检测和分析。

探针芯片检测, 利用芯片上寡核苷酸探针与扩增产物进行杂交 检测。 配置杂交体系, 包括杂交缓冲液、 扩增产物等, 杂交液于 95 °C变性处理 5 min, 然后即刻置于冰上骤冷, 冰浴 3 mir!。 使用晶芯多样品芯片盖片 (北京博奧生物有限公司), 并通过加样孔将 20uL 处理好的杂交样品加入到 DNA微阵列, 然后置于湿盒, 55 °C反应 3h。 反应完毕, 将芯片分 别使用清洗液 I和清洗液 II进行清洗,每次 5 min,缓慢晃动。其中,清洗液 I为 20 X SSC, 2%SDS, 42°C预热。 清洗液 II为 0. 2%SDS。 然后用去离子清洗, 再离心干燥或氮气吹干。

扫描和结果分析, 使用芯片扫描仪 GenePix TM 4200A Scanner (Molecular Devices, USA) 获得图像和数据, 扫描通道使用 635 nm和 532 nm, 扫描分辨率为 5um, PMT分别为 350 和 300, power均为 100%, 扫描 1_2次。 将芯片扫描结果如附图 2。 由图 2, 并结合模式图 1可知, 杂交图中有探针信号的分别是序号: 1、 3、 6、 8、 11、 12、 29、 30、 34、 74、 75、 76、 77、 78和 92, 其对应的靶标名称分别是: P- CaMV35s、 bla、 T- nos、 Pat、 CP4 epsps, CTP2 、 CMoVb、 E9、 P-FMV/TSFU A2704-12 , A5547-127, GTS40-3-2的 5 ' 和 3 ' 端、 M0N89788 以及大豆内源基因 Z eC i /7。 根据已知的 4种转基因大豆事件, 并査找相关数据库和文献得 出, 理论上的 4种事件和大豆内源信号完全检测出, 所含元件信号也完全符合, 除信号 3、 29和 30杂交信号较弱, 探针图调整为灰度图后显示不明显外。 对于一个样品的两次重复, 杂交结果高度吻合, 且与理论值比较, 所含事件和内源信息 100%准确, 所含元件信息也有 极高的特异性和准确性。

实施例 2

利用上述实验过程对 8种转基因水稻(TT51-1、 Kefeng NO. 6、 Kefeng NO. 8、 T2A- 1、 KMD1、 Bar68_l、 tlc_19和 RJ5)混合样进行检测, 芯片扫描结果如附图 3; 由图 3并结合 模式图 1可知, 杂交图中有探针信号的分别是: 1、 2、 3、 6、 8、 15、 19、 20、 21、 24、 26、 28、 29、 33、 39、 81、 82、 83、 84、 85、 86、 87、 88和 95,对应的靶标名称分别是: P- CaMV35s、 bar、 bla、 T_nos、 Pat 、 nptl l、 Pact、 P_Ubi、 P0rbcs、 crylAb/c、 CpTI、 crylC、 CMoVb 、 uidA、 Gus、 TT51-1、 Kefeng NO. 6、 Kefeng NO. 8、 T2A_1、 KMD1、 Bar68_l、 tlc_19、 RJ5 和水稻内源基因 S P s。 根据已知的 8种转基因大豆事件, 并査找相关数据库和文献得出, 理论上的 8个事件和水稻内源信号完全检测出, 元件信号除理论信号完全符合外只多出 8 和 29两个元件信号, 故可以判定该基因芯片具有极高的特异性和准 确性。

以上对本发明的具体实施例进行了描述。 需要理解的是, 本发明并不局限于上述特定 实施方式, 本领域技术人员可以在权利要求的范围内做出 各种变形或修改, 这并不影响本 发明的实质内容。




 
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