In Nahrungsmitteln, Kosmetika, Textilien, Werkstoffen, Chemikalien sowie anderen künstlichen Erzeugnissen, aber auch in der Natur, kommen eine Vielzahl bisher unbekannter Substanzen mit kanzerogenem Gefährdungspotential vor, deren Zahl sich durch ständige Neuentwicklungen erhöht. Darüber hinaus kön- nen auch physikalische Agenzien (z. B. Röntgenstrahlen, UV-Strahlung) Krebs ausiösen. Zur Identifikation dieser Stoffe und Abschätzung ihres kanzerogenen Potentials wurden bisher verschiedene in-vivo und in-vitro Tests durchgeführt.

Der sehr weit verbreitete Ames-Test, auch Salmonella-typhimurium-Test ge- nannt, beruht auf der Mutagenität von Substanzen in Bakterien (Clonfero et al., Med. Lav. 81, S. 3-10 (1990)). Ein ebenso bekannter in-vitro Test ist der SOS- Chromotest (Quillardet et al., Mutat. Res. 297, S. 235-279 (1993)), der auf der Induktion des bakteriellen SOS-Systems durch genotoxische Agenzien beruht. Beide Tests sind in ihrer Sensitivität vergleichbar, haben aber den grundsätzli- chen Nachteil, daß die genotoxische Wirkungen von Substanzen in Bakterien und höheren Organismen unterschiedlich sein können und somit die Ergebnisse nicht auf den Säugetierorganismus übertragbar sind. Daher wurden vor wenigen Jahren der Micronucleus-Test (Miller et al., Environ. Mol. Mutagen. 26, S. 240- 247 (1995)), der Einzel-Zell-Geltest (SCG-Test, auch Kometen-Assay genannt) und der Test auf Schwester-Chromosomen-Austausch (Hartmann et al., Mutat.

Res. 346, S. 49-56 (1995) entwickelt, die alle auf eukaryontischen Zellsyste- men basieren.

Zur Untersuchung der mutagenen Wirkung von Substanzen oder physikalischen Agenzien in lebenden Organismen (in vivo) wurden Assays entwickelt, die auf der Mutation bakterielier Reportergene (Lacl-oder lac Z-Gen) beruhen, welche als Transgen in Mäuse eingebracht wurden (Gossen et al., Mutat. Res. 307, S.

451-459 (1994). Daraus entstanden die sog. Muta-Maus sowie die Big-Blue- Maus.

Da die Tumorentstehung ein multifaktorieller und in allen Einzelheiten bisher nicht aufgeklärter Vorgang ist, sind Verfahren unzureichend, die nur einzelne Aspekte (z. B. Mutationserzeugung) der Tumorentstehung analysieren. Im Falle eines negativen Ergebnisses kann damit a priori die Kanzerogenität eines Stoffes oder physikalischen Agens nicht ausgeschlossen werden. Zudem sind die für den Genotoxizitätsnachweis von chemischen und physikalischen Agenzien zumeist verwendeten bakteriellen Systeme nur mit Einschränkungen auf höhere Organis- men übertragbar. Es gilt daher festzuhalten, daß nach heutigem Stand der Technik nur die Tumorentstehung selbst ein sicherer Parameter ist, um das kanzerogene Gefährdungspotential eines chemischen oder physikalischen Agens zu ermitteln. Aus diesem Grund wurden schon vor vielen Jahren direkte Kanze- rogenitäts-Tests an Nagetieren eingeführt. Bei diesen in vielen Ländern für die Zulassung neuer Substanzen vorgeschriebenen Tests müssen jedoch oft sehr hohe Dosen der betreffenden Substanz appliziert werden, um keine falsch negativen Ergebnisse zu erhalten. Es wurde daher der wichtige Einwand erho- ben, daß die erzielten positiven Ergebisse nicht durch eine echte Kanzerogenität der Substanzen ausgelöst werden, sondern daß lediglich eine unspezifische Stimulierung der Zellteilung infolge der Überdosierung vorliegt. Erst durch diese mitogene Aktivierung würden Mutationen und in der Folge Krebs entstehen, so daß auch mit diesen Tests, die falsch positive Ergebnisse liefern, keine verläss- lichen Ergebnisse über die Kanzerogenität von Substanzen erhalten werden.

Die Aufgabe der vorliegenden Erfindung besteht deshalb darin, ein Verfahren bereitzustellen, mit dem kanzerogene Agenzien zuverlässig identifiziert werden können.

Gelost wird diese Aufgabe durch die Gegenstände der Patentansprüche.

Das erfindungsgemäße Verfahren wird unter Verwendung eines Säugetiers, bevorzugt eines Nagetiers, besonders bevorzugt unter Verwendung einer Maus, durchgeführt, bei welchem eine Störung in der DNA-Reparatur vorliegt. Die Störung in der DNA-Reparatur basiert auf der trans-dominanten Hemmung der Poly (ADP-Ribose)-Polymerase (abgekürzt PARP), einem an DNA-Reparaturvor- gängen beteiligten Enzym. Die Hemmung der PARP beruht bevorzugt auf Expres- sion einer dominant negativen Mutante der Poly (ADP-Ribose)-Polymerase, bevorzugt der transgenen Expression einer solchen Mutante in einem Säugetier, wodurch ein transgenes Tier entsteht, das auch Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist. Die PARP besitzt eine DNA-Bindungsdomäne (abgekürzt DBD), welche die Bindung an DNA-Strangbrüche ermöglicht und zu einer Enzymaktivi- tät der PARP führt, wodurch eine Reparatur der Strangbrüche ermöglicht wird.- Bei der dominant negativen PARP-Mutante liegt jedoch eine Deletion vor, so daß nur die DNA-Bindungsdomäne der PARP exprimiert wird. Dies bewirkt eine Hem- mung der PARP-Enzymfunktion und damit der DNA-Reparatur. Die Expression dieser PARP-Mutante hat keinen Einfluß auf Zellteilung und Zellvitalität in Ab- wesenheit von genotoxischem Stress. Werden aber genotoxische (chemische oder physikalische) Agenzien appliziert, führt die PARP-Hemmung zu einer erheblichen Steigerung der Sensitivität der Zellen gegen diese Behandlungen. Die Anwesenheit der PARP-Mutante führt dann zu einer gesteigerten genetischen Instabilität nach Kanzerogenbehandlung, die sich in erhöhter Rekombination sowie verstärkter Genamplifikation äußert. Außerdem führt die Störung der PARP-Funktion zu einer gesteigerten Mutagenität genotoxischer Agentien. Damit führt die Störung der zellulären PARP-Funktion zu einer erhöhten Rate verschie- dener genetischer Veränderungen (Mutationen, Rekombinationen, Genamplifika- tion) nach Behandlung mit einem Kanzerogen. Diese verschiedenen genetischen Veränderungen lassen, in Abhängigkeit von der Natur des kanzerogenen Agens und der Art seiner Applikation, verschiedene Wege der Tumorentstehung zu (z. B. Onkogenamplifikation, Tumorsuppressorgen-Mutation oder Kombinationen davon).

Das bei dem erfindungsgemäßen Verfahren eingesetzte Säugetier, bevorzugt die transgene Maus, hat vorteilhafterweise eine Haut-spezifische Expression der dominant-negativen PARP-Mutante, wobei selbstverständlich auch jede andere organspezifische Expression möglich ist. Die Haut ist aber wegen der guten Er- reichbarkeit und Kontrollierbarkeit das bevorzugte Organ für Kanzerogenese- Untersuchungen. Zur Steuerung des Transgens kann jeder dem Fachmann bekannte Promotor, der eine gewebespezifische Expression, bevorzugt in der Haut, erlaubt, verwendet werden ; bevorzugt wird der Zytokeratin-14-Promotor verwendet, der eine Expression in der zellteilungsaktiven Basalschicht gestattet, aus welcher bevorzugt Hauttumoren entstehen (Vassar et al., Proc. Natl. Acad.

Sci USA 86, S. 1563-1567 (1989)).

In bevorzugter Weise wird zur Herstellung des transgenen Säugetiers ein Frag- ment verwendet, das folgenden Aufbau hat (s. Fig. 1) : 1,946 kB Aval-Fragment des humanen Zytokeratinpromotors (Vas- sar et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86, S. 1563-1567 (1989)) 1,156 kB DBD-Fragment von Position-29 bis zur internen Nla IV- Stelle bei 1127 der humanen Poly (ADP-Ribose)-Polymerase (Cher- ney et al., Proc. natl. Acad. Sci. USA 84, S. 8370-8374 (1987)) -0,486 kB des Polyadenylierungssignals des humanen Zytokeratin- promotors (Vassar et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86, S. 1563- 1567 (1989)) Ein dieses Fragment enthaltender Vektor (pKDinoDBD) wurde am 11. Juni 1997 unter der Nummer DSM 11594 bei der DSMZ (Deutsche Sammlung von Mikroor- ganismen und Zellkulturen, Braunschweig) hinterlegt.

Das transgene Säugetier wird nach der von Hogan et al. ("Manipulating the mouse embryo : A laboratory manual", Cold Spring Habor Laboratory, New York (1986)) aligemein beschriebenen Methode hergestellt. Dazu eignet sich beson- ders die Mikroinjektion eines entsprechenden DNA-Fragments in befruchtete Maus-Oozyten und nachfolgende Implantation in scheinträchtige Weibchen. Es entstehen Nachkommen, die das Transgen enthalten und an ihre Nachkommen weitergegeben (DBD-Linie).

Das erfindungsgemäße Verfahren wird in Form eines in-vivo-Assays durchge- führt. Es werden 10-15 Wochen alte transgene Tiere der DBD-Linie ausgesucht und für den Test entsprechend akklimatisiert. Für jede Behandlung werden 10- 15 Tiere (weiblich oder männlich) benötigt. Da ein wichtiges Zielorgan der Kanzerogenesestudien die Haut ist, werden die potentiel kanzerogenen chemi- schen Agenzien in jeweils 50-200, ul Lösungsmittel, z. B. Wasser, physiologische Kochsalziösung, Aceton oder Ethanol) zweimal pro Woche topisch aufgetragen.

Zur Untersuchung von potentiel karzinogenen physikalischen Agenzien werden entsprechende Applikationen ebenfalls zweimal pro Woche durchgeführt. Diese Behandlungen können bis zu 20 Wochen dauern. Um Tumorwachstum zu ermöglichen, wird eine zusätzliche Zeit von bis zu 40-80 Wochen nach der letzten Applikation veranschlagt. Als Positivkontrolle für die Tumorerzeugung kann 5-50, ug 7,12-Dimethylbenzanthracen (DMBA) in derselben Versuchsanord- nung verwendet werden. Als Negativkontrolle kann das entsprechende Lösungs- mittel, das auch zur Auflösung der Testsubstanz verwendet worden war, aufge- tragen werden. Die Tiere werden während der gesamten Versuchszeit regelmä- ßig gewogen und die Applikationsstelle untersucht. Entstehende Papillome bzw. andere Hauttumoren werden einmal pro Woche makroskopisch untersucht und ggf. vermessen. Wenn Tumore eine kritische Größe erreicht haben (hängt von Tierart, Lage des Tumors und den nationalen Tierschutzbedingungen ab), werden die Tiere getötet und Tumorgewebe wird zur histologischen und molekularbiolo- gischen Charakterisierung entnommen. Außerdem können Primärkulturen der Tumoren angelegt werden. Die Ergebnisse des Kanzerogenitätsversuche werden statistisch ausgewertet, wobei Dosis-Wirkungs-Beziehungen ermittelt werden können. Zur weiteren Analyse können Unterschiede der Turmorentstehung in den Geschlechtern sowie zu Wildtyp-Mäusen ermittelt werden. Weitere Einzel- heiten zu in-vivo Kanzerogenitätsassays finden sich in Tennant et al., Environ.

Health Perspect. 103, S. 942-950 (1995).

Im Vergleich zu allen in-vitro-Modellen, welche einzelne Vorgange der Tumorent- stehung herausgreifen (z. B. DNA-Schädigung, Mutationserzeugung) ist ein in- vivo-Assay aussagekräftiger, dessen biologischer Endpunkt die Tumorentstehung selbst ist. Im Vergleich zu dem oben beschriebenen direkten Kanzerogenitäts- Modela mit Nagetieren kann mit dem erfindungsgemäßen Verfahren unter Ver- wendung des transgenen Säugetiers, das eine Störung in der DNA-Reparatur durch trans-dominante Hemmung der PARP-Aktivität aufweist, ein Sensitivitäts- gewinn erzielt werden, wodurch das Problem der Überdosierung und Erzeugung falsch positiver Ergebnisse verringert wird. Im Gegensatz zu den bekannten transgenen Mausmodellen umgeht das Verfahren der vorliegenden Erfindung das Problem der Bahnung in Richtung einer vorgegebenen Tumorgenese. Die PARP- Hemmung führt zu einer grundlegenden Störung der DNA-Reparatur mit der Konsequenz einer Verstärkung der genetischen Instabilität (Mutations-, Rekom- binations-, Genamplifikationsrate) nach Kanzerogenbehandlung, wodurch dann über verschiedene Wege die Tumorentstehung begünstigt wird.

Die Erfindung wird weiter anhand der Figuren beschrieben.

Fig. 1 zeigt das Expressionsfragment aus pKDinoDBD K14-Prom. = Promotor des humanen Zytokeratin-14- Gens DBD = kodierende Sequenz der DNA-Bindungs- domäne der humanen Poly (ADP-Ribose)- Polymerase (EC 2.4.2.30) p-A Polyadenylierungssignal des humanen Zytokeratin-14-Gens Die Erfindung wird weiter anhand der nachfolgenden Beispiele beschrieben.

BEISPIEL 1 : Herstellung der transgenen Mauslinie DBD # 354 Das Plasmid pKDinoDBD (s. Fig. 1) wurde mit dem Restriktionsenzym Not I ge- schnitten. Nach Auftrennung der Restriktionsfragmente auf einem 1 % igen Agarosegel wurde ein 3,6 kB großes Fragment, welches die Expressionskassette von pKDinoDBD enthielt, isoliert und mittels eines kommerziell erhaltlichen Kits (z. B."Gene Clean"R ; Dianova, Hamburg) nach den Angaben des Herstellers präpariert. Dieses Fragment wurde auf eine Konzentration von 2 ng/, ul in 10 mM Tris-HCI (pH 7,6), 0,25 mM EDTA eingestellt. F1-Weibchen aus der Kreuzung der Mäusestämme C57BL/6 x DBA2 wurden durch Hormongaben einer Supero- vulation unterzogen. Nach der Verpaarung mit F1-Männchen (ebenfalls durch Kreuzung von C57BL/6 x DBA2) wurden befruchtete Eizellen aus den Weibchen präpariert, in die das vorstehend beschriebene DNA-Fragment mikroinjiziert wurde. Die Embryonen wurden in die Eileiter scheinträchtiger NMRI-Mäuse (Ammenmütter ; zuvor verpaart mit vasektomierten Männchen) implantiert. Die nach ca. 21 Tagen geborenen Tiere wurden anhand von DNA-Material aus Schwanz-Biopsien auf Anwesenheit des Transgens überprüft. Dazu wurde die Technik der Polymerase-Kettenreaktion (PCR) mit folgenden Primern aus der kodierenden Sequenz der humanen PARP (Cherney et al., Proc. Natl. Acad. Sci.

USA 84, S. 8370-8374 (1987)) eingesetzt : 5'-ATG GCG GAG TCT TCG GAT AAG CTC TA-3' (Primer 1, # 1-26) 5'-GCC AGG CGT GGC CGC CAC GGA GG-3' (Primer 2, # 1110-1088) Es wurden 22 PCR-Zyklen mit jeweils 200 ng genomischer DNA durchgeführt, wobei jeweils 300 sec. bei 95°C denaturiert, 60 sec. bei 60°C angelagert und 120 sec. bei 72°C polymerisiert wurde.

Ein positives Weibchen (Ohrmarke #354) wurde identifiziert. Aus der Schwanz- Biopsie dieses Tieres wurde Protein-Material gewonnen und mittels Western Blot auf Expression des Transgens untersucht. Dabei wurden sowohl der monoklona- le anti-DBD-Antikörper C 110 (Lamarre et al., Biochim. Biophys. Acta 950, S.

147-160 (1988)) als auch das gegen die DBD gerichtete anti-FII-Kaninchenserum (Küpper et al., J. Biol. Chem. 265, S. 18721-18724 (1990)) eingesetzt. Mit beiden Antikörpern war die 45 kDa große DNA-Bindungsdomäne (DBD) im Western Blot nachweisbar, so daß der Beweis für die Expression des Transgens erbracht wurde. Die Founder-DBD-Maus #354 wurde mit DBA2-Männchen verpaart und die Nachkommenschaft analysiert. Das Transgen wird an die Nachkommen weitergegeben, so daß die Linie DBD #354 stabil vorhanden ist.

BEISPIEL 2 : Identifizierung des kanzerogenen Potentials von fünf ver- schiedenen Chemikalien 12 Wochen alte Tiere der in Beispiel 1 beschriebenen Maus-DBD-Linie #354 werden über drei Wochen einer Akklimatisation an den Versuchsort unterzogen.

Weibliche Tiere werden in Gruppen zu jeweils 5 Tieren/Käfig, männliche Tiere werden einzeln unter spezifisch pathogenfreien (SPF)-Bedingungen gehalten. Die Ernährung der Tiere erfolgt nach Standard (#D10010 Futter von Research Diets, New Brunswick, New Jersey, USA sowie Wasser ad libitum). Für jede Behand- lung werden 10-15 Tiere (männlich oder weiblich) benötigt. Die zu testenden putativ karzinogenen Chemikalien werden in mehreren Verdünnungsstufen in physiologischer Kochsalzlösung bzw. Aceton aufgenommen und 100 NI jeder Verdünnung jeweils zweimal pro Woche topisch aufgetragen. Als Positivkontrolle werden 20, ug 7,12-Dimethylbenzanthracen (DMBA) in 100, ul Aceton verwen- det. Als Negativkontrolle wird Aceton appliziert. Die Behandlung wird für 15 Wochen durchgeführt. Die Tiere werden wöchentfich gewogen und an der Applikationsstelle untersucht. 12 Wochen nach Ende der Behandlungen kann in der Gruppe der Positivkontrolle mit einem sichtbaren Tumorwachstum gerechnet werden, wobei erfahrungsgemäß die Tumoren rasch (innerhalb weiterer 12 Wochen) an Größe zunehmen. Nach Erreichen einer kritischen Tumorgröße werden die Tiere jeweils durch zervikale Dislokation getötet und der Tumor entnommen. Erwartungsgemäß zeigt sich in der Gruppe der mit Lösungsmittel- behandelten Tiere auch nach 60 Wochen kein Tumorwachstum.

Alternativ kann ein sogenanntes Initiations-Promotionsprotokoll zur Anwendung kommen. Im Prinzip wird hierbei einmalig eine sehr niedrige Dosis eines initiieren- den (zumeist DNA-schädigenden) Karzinogens verabreicht, gefolgt von wie- derholten Anwendungen eines für sich allein nicht-karzinogenen Tumorpromotors (Becker et al., Cancer Res. 56, S. 3244-3249,1996). Hier wird als Positiv- kontrolle beispielsweise Methyinitrosoharnstoff (20/mol in 100, ul Aceton ; einmalig topisch appliziert) verwendet. Sieben Tage später wird dann mit dem Tumorpromotor Tetradecanoyl-Phorbol-Acetat (TPA) zweimal wöchentlich über einen Zeitraum von 22 Wochen weiterbehandelt (je 10 mmol in 100, u1 Aceton).

Negativkontrollen sind hier Tiere, die anstelle des Methyinitrosoharnstoff le- diglich Aceton erhalten haben, dann jedoch gefolgt von der üblichen TPA-Be- handlung. Die auf Kanzerogenität zu testenden Chemikalien werden ebenfalls anstelle des Methylnitrosoharnstoffs appliziert, wiederum gefolgt von der übli- chen TPA-Behandlung. Bei diesem Protokoll ist bei der Positivkontrolle nach spätestens 9 Wochen mit einem sichtbaren Tumorwachstum bei in Beispiel 1 be- schriebenen Maus der DBD-Linie #354 zu rechnen.