Verfahren zur Identifizierung von Markerproteinen zur Diagnose und Risikostratifizierung von Störungen der Blutgerinnung

Besehreibung

Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Identifizierung von Markerproteinen zwecks Diagnose und Risikostratifizierung von Störungen der Blutgerinnung.

Zwecks einer geeigneten Therapie, bedarf es einer frühen

Diagnose und Differenzierung von Störungen der Blutgerinnung in Verbindung mit der Notwendigkeit klinische Entscheidungen zu treffen, insbesondere in der Notfallmedizin.

Durch Einwirken verschiedener Substanzen (Kollagen, Thrombin, Immunkomplexe u. a.) sezernieren Thrombozyten in Granula gespeicherte Plättchenfaktoren (Degranulation) , die vor allem die Aktivierung des endogenen Systems der Blutgerinnung bzw. Hämostase unter Ausbildung eines Thrombus bewirken. Jedoch kann die Aktivierung der Thrombozyten, insbesondere aus genetischen oder krankhaften Gründen gestört sein. Dies geht zumeist mit einem erhöhten Risiko von schweren

kardiovaskulären oder sekundären Effekten einher. Daher ist es erforderlich, den Aktivierungsgrad und Aktivierbarkeit (AuA) von Thrombozyten zu bestimmen. Diese ist mit dem Phosphorylisierungsgrad von Proteinen in Thrombozyten verknüpft, wie z.B. VASP und unterliegt einer Kinaseaktivität .

Die individuelle Bestimmung von AuA von Thrombozyten soll dazu beitragen, eine genauere Klassifizierung von Patienten in

Risikogruppen zu ermöglichen, eine geeignete personalisierte Therapie (Präparat, Dosierung, Dauer, Kombination)

durchzuführen und diese zudem zu steuern. Im Stand der Technik werden AuA von Thrombozyten in

zahlreichen Thrombozyten-Funktionstests analysiert, wobei Thrombozyten mit Agonisten oder über Scherkräfte aktiviert werden, und z.B. die Aggregation zu bestimmen, um eine Aussage über die Aktivierbarkeit (synonym: engl. Response) von

Thrombozyten zu erhalten, wie z.B. nach Behandlung mit

Medikamenten, wie Clopidogrel.

Diese Funktionstests umfassen vor allem drei Haupttypen: (i) Aggregations-basierte Tests wie z.B. LTA (engl, light

transmission aggregometry) , (ii) Scherkraft-abhängige Tests und (iii) Durchflusszytometrie . Generell zeigt sich, dass aufgrund der großen Anzahl verschiedener Verfahren und der geringen Standardisierung der Tests (sowie Präanalytik) zum einen die Korrelation zwischen verschiedenen Tests gering ist, und zum anderen die Aussagekraft der einzelnen Tests bezüglich Vorhersage von Medikamenten-Response und Therapiesteuerung in der Praxis unbefriedigend ist (Krisha et al . , Circulation 2012, 1288-1303). Auch die Therapiesteuerung mittels Gen- Typisierung wird diskutiert - so dass beide Verfahren derzeit kritisch gesehen werden (Krisha et al . , Circulation 2012, 1288-1303) . Der VASP Assay (Testsystem zum Nachweis der

Aktivität von cyclo-Nulceotid-abhängigen Proteinkinasen, DE 100 29 210 AI), welcher den Phosphorylierungsgrad des VASP Proteins über phosphospezifische Antikörper bestimmt, ist derzeit einer der Goldstandards um aus geringen Blutmengen die Thrombozyten-Funktionsstatus/Aktivierungsstatus zu überprüfen.

Es scheint, dass die Messung eines einzelnen Kinasesubstrats bzw. Parameters, wie in den meisten Tests verwendet, nicht ausreicht um die AuA von Thrombozyten eindeutig zu bestimmen - vor allem im Kontext verschiedener Aktivierungs- sowie

Inhibierungssignalwege, die in Thrombozyten bekannt sind.

Nachteilig an den bekannten Diagnoseverfahren ist daher, dass eine frühzeitige und vollständige Erfassung von

Risikopatienten nicht ausreichend gelingt und daher eine

Risikostratifizierung als auch Therapiesteuerung nicht

ausreichend erfolgt. Eine der Erfindung zugrunde liegende Aufgabe besteht daher darin, ein Verfahren zur Risikostratifizierung von Störungen der Blutgerinnung zu entwickeln, das eine verbesserte Erfassung von Risikopatienten ermöglicht als auch in einer weiteren Aufgabe entsprechende Markerproteine zu identifizieren.

Ferner ist nachteilig, dass im Stand der Technik zumeist keine hinreichende Sensitivität und/oder Spezifität der

Markerproteine erreicht wird.

Daher ist es Aufgabe der vorliegenden Erfindung ein Verfahren zur Identifizierung von Markerproteinen zwecks Diagnose und Risikostratifizierung von Störungen der Blutgerinnung

bereitzustellen als auch ein Verfahren zur Bestimmung der Aktivierungsgrad und Aktivierbarkeit von Thrombozyten, welches aus Blut von einem Patienten (synonym: Proband) durchgeführt wird .

Die Aufgabe wird durch ein Verfahren gemäß Anspruch 1 gelöst, mit den folgenden Schritten:

i. ) Bereitstellung von Blut, Vollblut, Blutserum oder

Blutplasma enthaltend Thrombozyten,

ii. ) Aliquotierung in mindestens zwei Aliquote,

iii. ) A. Zugabe eines Thrombozyten-Aktivators in mindestens ein erstes Aliquot und B. Zugabe eines Thrombozyten-Inhibitors in mindestens ein zweites Aliquot, und ein oder mehrmalige

Wiederholung der jeweiligen Zugabe, und optional

C. Zugabe eines Thrombozyten-Aktivators und Zugabe eines Thrombozyten-Inhibitors in mindestens ein drittes

Aliquot oder umgekehrt, und ggfs. ein oder mehrmalige Wiederholung der jeweiligen Zugabe,

iv. ) Lyse der Zellen, insbesondere Thrombozyten aus iii.) A.

B. und C. im jeweiligen Aliquot,

v. ) Extraktion der Proteine und Verdau zu Peptiden mittels

Proteasen,

vi. ) Anreicherung und Abtrennung der phosphorylierten

Peptide,

vii. ) Analyse mittels quantitativer Massenspektrometrie und

Auswertung,

wobei solche phosphorylierte Peptide ausgewählt werden, die zugleich eine erhöhte oder erniedrigte

Phosphorylierung aus iii.) A in der Zeit zeigen und eine gegenläufige erniedrigte oder erhöhte Phosphorylierung aus iii.) B in der Zeit zeigen und optional im Vergleich gegen phosphorylierten Peptiden aus iii.) C eine

erniedrigte oder erhöhte Phosphorylierung zeigen,

(nachstehend: erfindungsgemäßes Verfahren)

Die Schritte iii.) bis vii.) können einzeln oder gemeinsam beliebig oft wiederholt werden. Die Zugaben in iii.) C. können z.B. zeitversetzt in 30 Sekunden erfolgen. Ferner sind die Schritte allesamt oder einzeln automatisierbar. Zur Diagnose oder Risikostratifizierung ist lediglich

erforderlich, dass ein oder mehrere Markerproteine

identifiziert werden, die relativ zueinander gemäß iii.) A und iii.) B eine unterschiedliche und zwar entgegengesetzte

Phosphorylierung zeigen, und zwar entweder eine jeweils erhöhte (erniedrigte) Phosphorylierung in iii.) A (Gegenwart eines Thrombozyten-Aktivator) und erniedrigte (erhöhte)

Phosphorylierung in iii.) B (Gegenwart eines Thrombozyten- Inhibitor) oder umgekehrt (in Klammern, kursiv) . In einer Probe zeigt erfindungsgemäß jeweils ca. 1% der Gesamtproteine dieses Verhalten.

Zu Schritt i.) : Bevorzugt ist Blut in Form von Frischblut einer Probe eines Patienten oder Probanden, z.B. im Wege der Blutentnahme (Fingerbeere etc.).

Zu Schritt ii.) : Die Aliquotierung (Aufteilung der Probe) kann in beliebig viele Aliquots (Tubes) erfolgen (z.B. 360 oder mehr) . In Schritt iii.) sind geeignete Thrombozyten-Aktivatoren solche wie ADP, Kollagen, Thrombin, Immunkomplexe,

Thrombozytenaggregationshemmer u.a. Clopidogrel, Prasugrel oder Acetylsalicylsäure.

In Schritt iii.) sind geeignete Thrombozyten-Inhibitoren solche wie Iloprost (Prostazyklin-Analogon) sowie NO

( Stickstoffmonoxid) -Donatoren wie Molsidomin oder

Nitroprussid .

Das dritte Aliquot iii.) C. dient zur weiteren Absicherung der Ergebnisse und kann optional hinzugezogen werden.

Des Weiteren kann optional eine Blindprobe D. (Aliquot aus ii.)) zur Kontrolle beibehalten werden, indem keine Zugabe von Thrombozyten-Aktivatoren oder Thrombozyten-Inhibitoren im Schritt iii.) erfolgt, jedoch die Schritte iv.) bis vii.) durchgeführt werden.

In Schritt iv.) kann die Lyse mit beliebigen Methoden

erfolgen, insbesondere vorzugsweise mit einem Lysepuffer (2% SDS samt Phosphataseinhibitoren) , genaue Zusammensetzung nach Beck et al . , Blood 2014, 123(5) :el-el0. Die Lyse bewirkt ein Stoppen der zellulären Signalantwort oder „Einfrieren" der Thrombozytenaktivität . In Schritt v.) kann die Extraktion mit beliebigen Methoden erfolgen, insbesondere vorzugsweise mit Hilfe einer Ethanol- Präzipitation oder Filter-aided sample preparation (Wisniewski et al., Nat Meth, 6 (2009) 359-362)). Ein proteolytischer

Verdau kann z.B. mittels Trypsin erfolgen, (Dickhut et al . , J Proteome Res 2014 , 6 ; 13 ( 6 ) : 2761-70 ) , wodurch Peptide mit einer durchschnittlichen Länge von 14 Aminosäuren erhalten werden, die gut massenspektrometrisch detektier- und quantifizierbar sind (bevorzugter Bereich zwischen 7 und 35 Aminosäuren) .

Zur Anreicherung der erhaltenen Peptide zwecks quantitativer Massenspektrometrie in Schritt vi.) können die Peptide

gelabelt oder labelfrei verwendet werden. Eine geeignete

Markierung (Label) , insbesondere Isotopenmarkierung kann beispielsweise mittels iTRAQ (Ross et al . , Mol Cell

Proteomics. 2004;3:1154-1169), ICPL (Kellermann J et al . , Methods Mol Biol. 2012;893:143-53), oder Dimethyl-Markierung (Hsu et al., Anal Chem. 2003;75:6843-6852)) erfolgen.

Selbstredend können die Aliquots ebenfalls einzeln

quantifiziert werden. Die Abtrennung der phosphorylierten Peptide, markiert oder nicht-markiert, erfolgt mittels

Titandioxid (Dickhut et al . , Methods Mol Biol. 2014; 1156 : 417- 30) - alternativ können auch andere Verfahren der Phospopeptidanreicherung wie ERLIC (Loroch et al, Anal Chem, 2015, 3; 87 (3) : 1596-604) oder Ti4+-IMAC (De Graaf, Mol Cell Proteomics. 2014 ; 13 ( 9) : 2426-34 ) verwendet werden. Die auf diese Weise abgetrennten phosphorylierten Peptide werden einer quantitativer Massenspektrometrie, vorzugsweise mittels LC-MS/MS zugeführt.

Im Rahmen dieser Erfindung wird unter dem Begriff

„quantitativer Massenspektrometrie" eine solche verstanden, wobei „MS/MS" (auch: Tandem-Massenspektrometrie) zur Anwendung kommt. Hierbei werden im Massenspektrometer zunächst MSI Scans akquiriert, welche die Masse/Ladungsverhältnisse (m/z) der vorhandenen Peptidionen aufzeichnen, und anschließend diese Peptidionen durch Energietransfer z.B. durch Kollision mit Inertgasmolekülen (N2 oder Ar) fragmentiert. Daraufhin

zerfallen die Ionen sehr spezifisch zu anderen (leichteren) Ionen, welche im MS/MS Scan ausgelesen werden

Viele Kombinationen der Analysatoren sind verwendbar, solche wie Triplequads (QqQ) , QqTOF (Quadropol-Quadrupol-TOF) , TOF- TOF als auch TRAP-Orbitrap und weitere

Hybdridmassenspektrometer . Neben klassischem MS/MS und MS ³ (Ting et al, Nat Meth, 8(11), 937-940 (2011) können MRM

(Multiple Reaction Monitoring) und PRM (Parallel Reaction Monitoring) verwendet werden. Weiterhin ist erfindungsgemäß die Kopplung mit einer Flüssigchromatographie (LC) bevorzugt, insbesondere in Form der LC-MS/MS. Insbesondere die LC-MS/MS erlaubt eine zeitaufgelöste quantitative Massenspektrometrie der phosphorylierten Peptide aus Schritt vi.)

Aufgrund der großen Datenmengen (lO.OOOe Spektren, lOOOe quantifizierte phosphorylierte Peptide) muss die Auswertung bioinformatisch erfolgen. Hierzu werden die Daten einerseits qualitativ ausgewertet, um die detektierten Peptidsequenzen zu identifizieren (d.h. Aminosäuresequenz bestimmen und

Ursprungsprotein zuweisen, Phosphorylierungsstelle innerhalb der Sequenz lokalisieren) , und anderseits quantitativ

(Auslesen der Signalintensitäten im Massenspektrometer als Maß für die Menge an Peptid) . Die Identifizierung erfolgt mit Hilfe von Suchalgorithmen wie Mascot (Perkins DN et al . , Electrophoresis . 1999; 20 : 3551) , die Lokalisierung der

Phosphorylierungsstelle mit Algorithmen wie phosphoRS (Taus et al . , J Proteome Res. 2011 ; 10 ( 12 ): 5354-62. ) Hierbei werden die Informationen aus den MS und MS/MS Scans mit den

Sequenzinformationen aus Proteinsequenzdatenbanken (z.B.

erhältlich von www.uniprot.org) abgeglichen. Die

Quantifizierung erfolgt abhängig vom letztlich verwendeten Verfahren. Bei Reporter-Ion abhängigen Verfahren (iTRAQ, TMT) werden die aufgrund der Labels generierten Reporter-Signale im MS/MS Spektrum als Maß für die relativen Mengen des Peptids in den unterschiedlichen Proben verwendet (Abbildung 1). Bei nicht-isobaren Labelingverfahren (ICPL, Dimethyl) sowie der labelfreien Quantifizierung erfolgt das Auslesen der

quantitativen Information auf Ebene der MS Scans (Abbildung 1). Die Signale werden bioninformatisch in Intensitätswerte umgewandelt (z.B. mit Hilfe der Software Proteome Discoverer von Thermo Scientific) und so können Veränderungen zwischen den Proben quantifiziert werden.

Der erfindungsgemäße Begriff „Störungen der Blutgerinnung" umfasst sämtliche Vorgänge und Prozesse, die insbesondere auf einer nicht-intakten Hämostase beruhen und zu einer

verringerten oder erhöhten Blutgerinnung führen. Insbesondere können bei operativen Eingriffen solche Störungen der

Blutgerinnung zu lebensbedrohlichen Komplikationen führen. „Störungen der Blutgerinnung" umfasst erfindungsgemäß

Krankheiten und Zustände als auch Folgeerkrankungen, wie

Thrombose, Schlaganfall, Herzinfarkt, Durchblutungsstörungen sowie kardiovaskuläre Erkrankungen.

Alle genannten Indikationen werden zudem z.B. im Pschyrembel, De Gruyter, 266. Auflage, Berlin 2015 beschrieben.

Der Begriff „Risikostratifizierung" umfasst erfindungsgemäß das Auffinden von Patienten, insbesondere Notfallpatienten und Risikopatienten, mit der schlechteren Prognose, zwecks intensiverer Diagnostik und Therapie/Behandlung von Störungen der Blutgerinnung und verbundenen Erkrankungen als auch

Folgeerkrankungen, insbesondere Thrombose, Schlaganfall, Herzinfarkt, Durchblutungsstörungen, kardiovaskuläre

Erkrankungen mit dem Ziel einen möglichst günstigen Verlauf dieser Krankheiten zu ermöglichen. Eine erfindungsgemäße

Risikostratifizierung erlaubt in Folge ein effektives

Behandlungsverfahren, das beispielsweise in eine gezielte Therapiesteuerung münden kann.

Daher betrifft die Erfindung ebenfalls die Identifizierung von Patienten mit erhöhtem Risiko oder/und einer ungünstigen

Prognose von Störungen der Blutgerinnung und zwar bei

symptomatischen und / oder asymptomatischen Patienten, insbesondere Notfallpatienten .

Besonders vorteilhaft kann insbesondere in Fällen der Notfall- und /oder Intensivmedizin mittels des erfindungsgemäßen

Verfahren eine sichere Stratifizierung erfolgen. Das

erfindungsgemäße Verfahren ermöglicht daher klinische

Entscheidungen, die zu einem schnellen Therapieerfolg und zur Vermeidung von Todesfällen führen. Solche klinischen Entscheidungen umfassen ebenfalls weiterführende Behandlung mittels Arzneimitteln zur Behandlung oder Therapie von

Störungen der Blutgerinnung, insbesondere von

Thrombozytenaggregationshemmer (TAH) , solche wie Abciximab, Acetylsalicylsäure, eine Kombination aus Acetylsalicylsäure und Dipyridamol, Clopidogrel, Eptifibatid, Ilomedin,

Prasugrel, Ticagrelor, Ticlopidin, Tirofiban.

Daher betrifft die Erfindung ebenfalls ein Verfahren zur Diagnose und / oder Risikostratifizierung von Patienten von Störungen der Blutgerinnung zur Durchführung von klinischen Entscheidungen, wie weiterführende Behandlung und Therapie mittels Arzneimitteln, vorzugsweise in der zeitlich kritischen Intensivmedizin oder Notfallmedizin, einschließlich der

Entscheidung zur Hospitalisierung des Patienten.

In einer weiteren bevorzugten Ausführungsform betrifft das erfindungsgemäße Verfahren daher die Therapiesteuerung von Störungen der Blutgerinnung.

In einer weiteren bevorzugten Ausführungsform des

erfindungsgemäßen Verfahrens erfolgt diese zur Diagnose und / oder Risikostratifizierung zur Prognose, zur

differentialdiagnostischen Früherkennung und Erkennung, zur Beurteilung des Schweregrades und zur therapiebegleitenden Verlaufsbeurteilung .

In einer weiteren bevorzugten Ausführungsform betrifft die Erfindung ein Verfahren zur in-vitro Diagnostik zur Früh- oder Differentialdiagnose oder Prognose von Störungen der

Blutgerinnung an oder von einem zu untersuchenden Patienten.

In einer Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens wird dem zu untersuchenden Patienten Blut entnommen, wahlweise

Vollblut oder Serum oder erhältliches Plasma und die Diagnose erfolgt in vitro/ ex vivo, d.h. außerhalb des menschlichen oder tierischen Körpers. Aufgrund der Bestimmung der phosphorylierten Peptide gemäß dem erfindungsgemäßen Verfahren, wird eine hohe Sensitivität und Spezifität erzielt (siehe Beispiele und Abbildungen) und anhand der vorhandenen Menge entsprechender phosphorylierter Proteine in mindestens einer Patientenprobe gemäß dem

erfindungsgemäßen Verfahren kann die Diagnose oder

Risikostratifizierung erfolgen.

Beispiele und Abbildungen:

Nachfolgende Beispiele und Abbildungen dienen zur Erläuterung der Erfindung, ohne diese zu beschränken.

Zunächst werden nach Frischblutentnahme Thrombozyten mittels differentieller Zentrifugation isoliert (Beck et al . , Blood 2014, 123(5) :el-el0) . Die Probe wird anschließend in Aliquots unterteilt, von denen (i) eines als unbehandelte Kontrolle dient, während (ii-iv) drei mit einem aktivierenden Agonisten wie ADP oder Thrombin für 10 s, 30 s, und 60 s stimuliert werden, bzw. (v-vii) drei inhibiert werden, z.B. durch Zugabe von Iloprost oder Diethylamin-NONOate, ebenso für 10 s, 30 s, 60 s, (viii) eine Probe für 30 s aktiviert und anschließend für 30 s inhibiert wird.

Für die systematische Suche nach geeigneten Markerproteinen sollten verschiedene Konzentrationen, Aktivatoren/ Inhbitoren sowie Zeitpunkte gewählt werden. Jede Probe wird direkt im Anschluss an die Stimulation mit einem Lysepuffer (z.B. 2% SDS, Phosphataseinhibitorcocktail ) schnell lysiert. Nach der erfolgten Lyse werden die Proteine mittels Ethanol- Präzipitation oder Filter-aided sample preparation (Wisniewski et al., Nat Meth, 6 (2009) 359-362) extrahiert. Es folgt ein proteolytischer Verdau mittels Trypsin (Dickhut et al . , J Proteome Res 2014, 6 ; 13 ( 6 ) : 2761-70 )

Die generierten Peptidproben werden nun entweder mittels stabil-Isotopenmarkierung chemisch gelabelt (z.B. iTRAQ Label von AB Sciex) und anschließend vereint, oder für eine sogenannte markierungsfreie (engl, label free) Analyse einzeln behandelt und analysiert. Um die für die Analyse wichtigen phosphorylierten Peptide vom großen Überschuss an nicht- phosphorylierten Peptiden abzutrennen und der

Massenspektrometrie zugänglich zu machen, werden

phosphorylierte Peptide mittels Titandioxid angereichert

(Dickhut et al . , Methods Mol Biol. 2014;1156:417-30).

Anschließend werden die Phosphopeptidproben entweder einzeln (labelfreie Analyse) oder die vereinte Probe (iTRAQ) mittels nano-LC-MS/MS analysiert (siehe Abbildung 1).

Abbildung 1: Experimenteller Ablauf nach Isolation und

Stimulation (Aktivierung) der Thrombozyten.

Die phosphorylierten Peptide und folglich die Signalantwort der Thrombozyten auf die Aktivierung bzw. Inhibition zeigt sich letztlich bei der Quantifizierung (unten links:

Quantifizierung mittels Reporterionen aus den chemischen

Labels; unten rechts: „labelfreie" Quantifizierung anhand der Signalintensität des Phosphopeptids in den jeweiligen Proben) . (A) Exemplarisches Beispiel für ein potentielles neues

Markerprotein. Der Anstieg der Signale ADP 1, ADP2 und ADP3 im Vergleich zur Kontrolle zeigt eine Zunahme der

Phosphorylierung nach ADP Stimulation, während die Signale Ilo 1, Ilo 2, Ilo 3 auf eine Abnahme der Phosphorylierung nach Inhibition hindeuten. Die Zunahme durch ADP Stimulation kann letztlich durch Zugabe von Iloprost kompensiert werden (ADP / Ilo) . Grundsätzlich ist auch gegensätzlicher Fall möglich, dass ADP zu einer Verringerung und Iloprost zu einem Anstieg führt .

Abbildung 2: Erläuterung des erfindungsgemäßen Verfahrens, (i) Thrombozyten nehmen eine Schlüsselrolle im physiologischen Prozess der Hämöstase ein. D.h. wenn ein Blutgefäß verletzt ist, erkennen Thrombozyten dies, werden dadurch „aktiviert", aggregieren und bilden so einen stabilen Thrombus, der die Wunde verschließt, somit den Blutverlust stoppt und auch das Eindringen von Pathogenen und Fremdstoffen verhindert. Dieser Prozess läuft innerhalb weniger Sekunden bis Minuten ab. Im Blutfluss sind u.a. inhibitorisch wirkende Verbindungen vorhanden, die verhindern sollen, dass diese

Thrombozytenaktivierung spontan stattfindet. Ist dieses sensible System gestört, kann es z.B. zu Thrombosen kommen, welche Blutgefäße verschließen, damit die Blutversorgung des Gewebes unterbrechen und schließlich zu einem Infarkt führen können, (ii) Die Aktivierung von Thrombozyten läuft über sogenannte Phosphorylierungskaskaden ab. Aktivierende bzw. inhibierende Komponenten aus dem Blutsystem binden hierbei an Membranrezeptoren, und lösen dadurch ein „Downstream- Signaling" aus. D.h. Enzyme binden gezielt Phosphatreste über kovalente Bindungen an Proteine (Kinasen) bzw. entfernen diese (Phosphatasen) . Die Phosphatgruppen führen zu einer

Ladungsveränderung an der Oberfläche von Proteinen und somit zu einer Veränderung ihrer dreidimensionalen Struktur. Letzter wiederum definiert, (a) welche Proteine miteinander

interagieren, bzw. (b) welche Funktion und (c) Aktivität das Protein letztlich hat. Somit ist die Phosphorylierung ein reversibles und fein- justiertes System zur schnellen

Regulation zellulärer Prozesse, (iii) Mittels quantitativer Massenspektrometrie (MS) können nun Veränderungen der

Proteinphosphorylierung hunderter bis tausender Proteine gemessen werden. Hierzu werden Thrombozyten von gesunden

Spendern vorzugsweise aus Frischblut isoliert, die ca. 4000- 5000 vorhandenen Proteine aufgereinigt und proteolytisch in kleinere Fragmente, sogenannte Peptide, gespalten. Diese

Peptide werden einer Anreicherung unterzogen, damit nur solche, die einen oder mehrere Phosphatreste enthalten, der Analyse zugeführt werden. Schließlich wird die quantitative MS dazu genutzt Unterschiede in der Phosphorylierung nach

Stimulation von Thrombozyten mit aktivierenden (ADP) bzw.

inhibierenden (Iloprost) Verbindungen zu detektieren. Die zeitaufgelösten quantitativen Daten werden bioinformatisch ausgewertet, um Erkenntnisse über das „Netzwerk" (Gesamtheit der Signalwege) zu erhalten, (iv) Die zeitaufgelösten quantitativen Massenspektrometriedaten werden genutzt, um deutlich unterschiedliche (d.h. gegenläufige) Verläufe der Phosphorylierung an bestimmten Proteinen zu detektieren. Selbst wenn die genaue Funktion einer bestimmten

Phosphorylierungsstelle an einem Protein nicht bekannt ist, deuten gegensätzliche Verläufe auf eine zentrale Rolle im Gleichgewicht (Homöostase) der Thrombozyten hin. Eine

Phosphorylierungsstelle, die bei Aktivierung zunimmt und bei Inhibition abnimmt und vice versa, deutet auf eine zentrale Rolle in beiden Prozessen hin - und stellt damit einen potentiellen Kandidaten (Target) für diagnostische sowie therapeutische Zwecke dar und kann zur Risikostratifizierung von Störungen der Blutgerinnung als auch zur Bestimmung der Aktivierungsgrad und Aktivierbarkeit von Thrombozyten herangezogen werden.