技术领域

[0001] 本发明属于辣木叶深加工、 高值化领域， 涉及一种具有降尿酸活性的辣木叶提 取物及其制备方法与应用。

背景技术

[0002] 在正常嘌呤饮食状态下， 非同日两次空腹血尿酸水平男性高于 42(Honol/L， 女 性高于 360 pmol/L即称为高尿酸血症。 痛风是在高尿酸血症的生化基础上发展而 成的一种代谢性疾病， 高尿酸血症是痛风的重要生化基础， 也是引起痛风性关 节炎、 痛风性肾病和痛风石沉积的原因。 除此之外， 高尿酸血症与高血压、 高 血脂、 肥胖病症、 冠状动脉疾病等相关， 是上述病症的关键风险因素。 随着人 民生活水平的进一步提高， 高尿酸血症和痛风的发病率逐渐上升， 发病年龄提 前。 目前， 我国成人高尿酸血症发病率为 18%， 痛风发病率约为 2%， 且正以 9.7 %的年增长率迅速增加。 因此， 开发具有降尿酸活性、 毒副作用低的保健食品与 药品具有显著的社会经济效益。

[0003] H木 ( Moringa oleifera Lam.)， 是一种辣木科辣木属热带落叶木本植物， 在我国 广东、 广西、 海南、 四川和云南等地大规模种植， 已形成了规模化的原料种植 基地。 辣木叶于 2012年被批准为新资源食品， 其营养成分丰富， 蛋白质含量为 2 7%左右， 总糖含量为 15%左右， 除此之外， 还含有多酚， 类固醇， 生物碱等活 性成分， 具有较大的开发潜力。 近年的研究发现， 辣木叶具有抗炎、 抗氧化、 抑菌等作用。

[0004] 然而， 关于具有降尿酸活性的辣木叶提取物的相关报 道较少。 本发明提供了一 种辣木叶提取物的制备方法， 并通过动物模型验证其体内降尿酸活性。

发明概述

技术问题 问题的解决方案

技术解决方案

[0005] 本发明的目的在于提供一种具有降尿酸活性的 辣木叶提取物及其制备方法与应 用， 所述辣木叶提取物具有良好降尿酸活性。 该提取物通过动物实验验证具有 良好的降尿酸功效。 本发明提取工艺简单、 整个工艺流程均可达食品级要求， 可应用于药品、 保健品和食品等领域当中。

[0006] 本发明的目的至少是通过以下技术方案之一实 现的。

[0007] 本发明提供了一种具有降尿酸活性的辣木叶提 取物的制备方法， 采用微波干燥 ， 碎粉过筛， 水-乙醇回流提取， 离心， 上清液减压浓缩得醇提取物； 剩余残渣 烘干后， 使用碱法热处理、 蛋白酶酶解、 高速离心去渣、 上清液超滤去杂、 二 次蛋白酶酶解、 高速离心、 上清液减压浓缩、 醇沉去杂、 二次减压浓缩， 最后 复配加入醇提取物， 喷雾干燥， 得到一种具有降尿酸活性的辣木叶提取物， 该 提取物酚类物质含量 >10%， 肽类物质含量 > 40%。

[0008] 优选地， 所述方法包括以下具体步骤：

[0009] ( 1) 微波干燥： 将新鲜辣木叶微波干燥， 得到干辣木叶；

[0010] (2) 粉碎过筛： 将步骤 ( 1) 所得干辣木叶粉碎后过筛， 得到辣木叶干粉；

[0011] (3) 水-乙醇回流提取： 将步骤 ⑵ 所得辣木叶干粉与乙醇水溶液混合， 匀 速搅拌， 加热回流提取， 离心， 取上清液得提取液 1， 沉淀烘干得残渣 1 ;

[0012] (4) 减压浓缩： 将提取液 1减压浓缩， 得提取液 2;

[0013] (5) 碱法热处理： 将残渣 1与去离子水混合， 进行第一次搅拌， 加入氢氧化钠 调节 pH， 进行第二次加热搅拌， 得混悬液 1 ;

[0014] (6) 蛋白酶酶解： 在混悬液 1中加入蛋白酶， 恒温搅拌进行酶解， 灭酶， 得混 悬液 2;

[0015] (7) 高速离心： 混悬液 2高速离心后， 取上清液得提取液 3 ;

[0016] (8) 超滤去杂： 采用超滤膜超滤分离提取液 3 , 弃去大分子截留液， 取小分子 滤出液， 得提取液 4, 减压浓缩得提取液 5 ;

[0017] (9) 二次蛋白酶酶解： 在提取液 5中加入蛋白酶， 恒温搅拌进行酶解， 灭酶， 得混悬液 3 ; [0018] （10） 高速离心： 混悬液 3高速离心后， 取上清液得提取液 6;

[0019] （11） 减压浓缩： 将提取液 6减压浓缩， 得提取液 7 ;

[0020] （12） 醇沉去杂： 向提取液 7中加入预冷的无水乙醇， 匀速搅拌后， 离心， 取 上清液得提取液 8 ;

[0021] （13） 二次减压浓缩： 将提取液 8减压浓缩， 得提取液 9;

[0022] （14） 复配： 将步骤 （4） 所得醇提取液 2和步骤 （13） 所得提取液 9混合， 加 热搅拌， 得提取液 10;

[0023] （15） 喷雾干燥： 将提取液 10进行喷雾干燥， 得辣木叶提取物。

[0024] 优选地， 步骤 （1） 中， 微波干燥时间为 l~3min， 功率为 400~600W; 步骤 （2 ） 中， 所述过筛是过 40目筛； 步骤 （3） 中， 乙醇水溶液中乙醇浓度为 60~80 vol % , 辣木叶干粉与乙醇水溶液的料液比为 l:6~10 g/mL， 搅拌速率为 120~180 r/min, 回流温度为 80~90°C， 回流时间为 l~3h， 离心速率为 4000~6000 离心 时间为 20~30min， 烘干温度为 50~60°C; 步骤 （4） 中， 减压浓缩温度为 50~60°C ， 提取液 2中固形物含量为 30~40 wt%。

[0025] 优选地， 步骤 （5） 中， 所述残渣 1与去离子水料液比为 l:8~l: 16 g/mL， 第一次 搅拌时间为 15~25 min， pH值调节至 7.0~8.0， 第一次搅拌和第二次搅拌的速率均 为 120~180 r/min， 第二次搅拌时间为 20~40 min， 第二次搅拌温度为 50~60°C; 步 骤 （6） 所述蛋白酶的加入量为混悬液 1中残渣 1质量的 2~5%， 蛋白酶为碱性蛋白 酶和复合蛋白酶， 碱性蛋白酶的加入量占总酶量的 50~70%， 复合蛋白酶的加入 量占总酶量的 30~50%， 所述碱性蛋白酶为诺维信型号为 NS37071的蛋白酶， 复 合蛋白酶为诺维信公司的复合蛋白酶 Protamex， 酶解温度为 52~58°C， 酶解时间 为 8~16h， 搅拌速率为 120~ 180 r/min， 所述灭酶是在 90~96°C灭酶 20-30 min。

[0026] 优选地， 步骤 （7） 和步骤 （10） 中， 高速离心速率为 6000~8000 离心时间 为 15~25

min； 步骤 （8） 中， 超滤除杂的超滤膜分子量为 lOOOODa， 超滤次数为 4~6次， 所述提取液 4为分子量＜10000Da的超滤滤出液， 减压浓缩温度为 50~60°C， 提取 液 5中固形物含量为 8~10 wt%。

[0027] 优选地， 步骤 （9） 所述蛋白酶的加入量为提取液 5固形物含量的 3~6%， 蛋白 酶为胰酶和复合蛋白酶， 胰酶的加入量占总酶量的 60~80%， 复合蛋白酶的加入 量占总酶量的 20~40%， 所述胰酶为南宁庞博生物工程公司的胰酶， 复合蛋白酶 为诺维信公司的复合蛋白酶 Protamex， 酶解温度为 40~50°C， 酶解时间为 2~4 h， 搅拌速率为 120-180 r/min, 所述灭酶是在 90~96°C灭酶 20~30 min。

[0028] 优选地， 步骤 （11） 和步骤 （13） 中， 减压浓缩温度为 50~60°C， 提取液 7和提 取液 9中固形物含量为 30~40 wt% _; 步骤 （12） 中， 所述预冷的无水乙醇为预冷 至 4~8°C的无水乙醇， 无水乙醇的加入量为提取液 7和无水乙醇二者质量和的 10~ 20 wt% , 匀速搅拌为室温下 120~180

r/min搅拌 3~5h， 所述离心的速率为 6000~8000 离心时间为 20~30min。

[0029] 优选地， 步骤 （14） 中， 搅拌速率为 120~ 180 r/min， 搅拌时间为 30~50 min， 温度为 65~85°C。

[0030] 本发明还提供了所述制备方法制备的辣木叶提 取物。

[0031] 本发明还提供了一种所述的辣木叶提取物在制 备降尿酸保健品和药品中的应用

发明的有益效果

有益效果

[0032] 和现有技术相比， 本发明具有如下优点和效果：

[0033] （1） 本发明的制备方法制备得到一种主要含辣木叶 多酚和多肽的具有良好降 尿酸作用的辣木叶提取物， 该提取物酚类物质含量＞10%， 肽类物质含量＞40%

[0034] （2） 本发明的整个制备工艺流程均可达食品级要求 。

[0035] （3） 本发明所得辣木叶提取物经过高尿酸血症大鼠 动物实验模型验证具有良 好的降尿酸活性， 能够有效地降低高尿酸血症大鼠的血清尿酸含 量。

发明实施例

本发明的实施方式

[0036] 为更好地理解本发明， 下面将具体阐明动物实验的具体操作和具体实 施例对本 发明作进一步说明， 但本发明的实施方式不限于此。

[0037] 实施例 1 [0038] 本实施例提供了一种具有降尿酸活性的辣木叶 提取物的制备方法， 具体包括如 下步骤：

[0039] ( 1) 微波干燥： 微波功率 400W， 将新鲜辣木叶微波干燥 1 min， 得到干辣木叶

[0040] (2) 粉碎过筛： 将步骤 ( 1) 所得干辣木叶粉碎后过 40目筛， 得到辣木叶干粉

[0041] (3) 水-乙醇回流提取： 将步骤 (2) 所得辣木叶干粉与乙醇浓度为 60 vol %的 乙醇水溶液按料液比 1:6 g/mL混合， 120

r/min匀速搅拌条件下， 80°C下回流提取 1 h， 4000 g离心 20 min， 取上清液得提取 液 1， 50°C烘干沉淀得残渣 1。

[0042] (4) 减压浓缩： 将提取液 1在 50°C下减压浓缩至固形物含量为 30 wt%， 得提取 液 2。

[0043] (5) 碱法热处理： 将残渣 1与去离子水按料液比 1:8 g/mL混合， 120 r/min匀速 搅拌 15 min， 加入氢氧化钠调节 pH值至 7.0， 50°C下 120 r/min匀速搅拌 20 min， 得 混悬液 1。

[0044] (6) 蛋白酶酶解： 在混悬液 1中加入蛋白酶， 加入量为混悬液 1中的残渣 1质量 的 2%， 诺维信公司的碱性蛋白酶 NS37071的加入量占总酶量的 50%， 诺维信公司 的复合蛋白酶的加入量占总酶量的 50%， 52°C下 120 r/min匀速搅拌， 酶解 8 h， 90 °C灭酶 20 min， 得混悬液 2。

[0045] (7) 高速离心： 混悬液 2采用 6000 g离心 15 min后， 取上清液得提取液 3。

[0046] (8) 超滤去杂： 采用超滤膜超滤分离提取液 3 , 超滤膜分子量为 lOOOODa,超滤 次数为 4次， 弃去大分子截留液， 取小分子滤出液， 得提取液 4, 50°C减压浓缩， 得固形物含量为 8 wt%的提取液 5。

[0047] (9) 二次蛋白酶酶解： 在提取液 5中加入蛋白酶， 加入量为提取液 5固形物含 量的 3%， 南宁庞博生物工程公司的胰酶的加入量占总酶 量的 60%， 诺维信公司 的复合蛋白酶的加入量占总酶量的 40%， 40°C下 120r/min匀速搅拌， 酶解 2 h， 90 °C灭酶 20 min， 得混悬液 3。

[0048] ( 10) 高速离心： 混悬液 3采用 6000 g离心 15 min后， 取上清液， 得提取液 6。 [0049] ( 11) 减压浓缩： 将提取液 6在 50°C下减压浓缩至固形物含量为 30 wt%， 得提 取液 7。

[0050] ( 12) 醇沉去杂： 向提取液 7中加入预冷至 4。(：的无水乙醇， 使体系中的乙醇含 量达到 10 wt%， 120 r/min匀速搅拌 3h后， 6000 g离心 20

min, 取上清液得提取液 8。

[0051] ( 13) 二次减压浓缩： 将提取液 8在 50°C下减压浓缩至固形物含量为 30 wt%， 得提取液 9。

[0052] ( 14) 复配： 将步骤 (4) 所得提取液 2和步骤 ( 13) 所得提取液 9在 65°C下， 1

20 r/min勻速搅拌 30 min， 得提取液 10。

[0053] ( 15) 喷雾干燥： 将提取液 10进行喷雾干燥， 得辣木叶提取物 1， 酚类化合物 含量为 11.4%， 肽类物质含量为 42.9%。

[0054] 实施例 2

[0055] 一种具有降尿酸活性的辣木叶提取物的制备方 法， 具体包括如下步骤：

[0056] ( 1) 微波干燥： 微波功率 500W下， 将新鲜辣木叶微波干燥 2 min， 得到干辣木 叶。

[0057] (2) 粉碎过筛： 将步骤 ( 1) 所得干辣木叶粉碎后过 40目筛， 得到辣木叶干粉

[0058] (3) 水-乙醇回流提取： 将步骤 ⑵ 所得辣木叶干粉与乙醇浓度为 70 vol %的 乙醇水溶液按料液比 1 : 8 g/mL混合， 150

r/min匀速搅拌条件下， 85°C下回流提取 2 h， 5000 g离心 25 min， 取上清液得提取 液 1， 55°C烘干沉淀得残渣 1。

[0059] (4) 减压浓缩： 将提取液 1在 55°C下减压浓缩至固形物含量为 35 wt%， 得提取 液 2。

[0060] (5) 碱法热处理： 将残渣 1与去离子水按料液比 1: 12 g/mL混合， 150 r/min匀速 搅拌 20 min， 加入氢氧化钠调节 pH值至 7.5， 55°C下 150 r/min匀速搅拌 30 min， 得 混悬液 1。

[0061] (6) 蛋白酶酶解： 在混悬液 1中加入蛋白酶， 加入量为混悬液 1中残渣 1质量的

3.5% , 诺维信公司的碱性蛋白酶 NS37071的加入量占总酶量的 60%， 诺维信公司 的复合蛋白酶的加入量占总酶量的 40%， 55°C下 150 r/min匀速搅拌， 酶解 12 h， 93°C灭酶 25 min， 得混悬液 2。

[0062] (7) 高速离心： 混悬液 2采用 7000 g离心 20 min后， 取上清液得提取液 3。

[0063] (8) 超滤去杂： 采用超滤膜超滤分离提取液 3 , 超滤膜分子量为 lOOOODa,超滤 次数为 5次， 弃去大分子截留液， 取小分子滤出液， 得提取液 4, 55°C减压浓缩， 得固形物含量为 9 wt%的提取液 5。

[0064] (9) 二次蛋白酶酶解： 在提取液 5中加入蛋白酶， 加入量为提取液 5固形物含 量的 4.5%， 南宁庞博生物工程公司的胰酶的加入量占总酶 量的 70%， 诺维信公司 的复合蛋白酶的加入量占总酶量的 30%， 45°C下 150 r/min匀速搅拌， 酶解 3 h， 93 °C灭酶 25 min, 得混悬液 3。

[0065] ( 10) 高速离心： 混悬液 3采用 7000 离心 20 min后， 取上清液， 得提取液 6。

[0066] ( 11) 减压浓缩： 将提取液 6在 55°C下减压浓缩至固形物含量为 35 wt%， 得提 取液 7。

[0067] ( 12) 醇沉去杂： 向提取液 7中加入预冷至 6。(：的无水乙醇， 使体系中的乙醇含 量达到 15 wt%， 150 r/min匀速搅拌 4 h后， 7000 g离心 25

min, 取上清液得提取液 8。

[0068] ( 13) 二次减压浓缩： 将提取液 8在 55°C下减压浓缩至固形物含量为 35 wt%， 得提取液 9。

[0069] ( 14) 复配： 将步骤 (4) 所得提取液 2和步骤 ( 13) 所得提取液 9在 75°C下， 1

50 r/min勻速搅拌 40 min， 得提取液 10。

[0070] ( 15) 喷雾干燥： 将提取液 10进行喷雾干燥， 得辣木叶提取物 2, 酚类化合物 含量为 10.7%， 肽类物质含量为 45.3%。

[0071] 实施例 3

[0072] 一种具有降尿酸活性的辣木叶提取物的制备方 法， 具体包括如下步骤：

[0073] ( 1) 微波干燥： 微波功率 600W下， 将新鲜辣木叶微波干燥 3 min， 得到干辣木 叶。

[0074] ⑵ 粉碎过筛： 将步骤 ( 1) 所得干辣木叶粉碎后过 40目筛， 得到辣木叶干粉 [0075] (3) 水-乙醇回流提取： 将步骤 ⑵ 所得辣木叶干粉与乙醇浓度为 80 vol %的 乙醇水溶液按料液比 1: 10 g/mL混合， 180 r/min匀速搅拌条件下， 90。(：下回流提 取 3 h， 600( ^离心 30 min， 取上清液得提取液 1， 60°C烘干沉淀得残渣 1。

[0076] (4) 减压浓缩： 将提取液 1在 60°C下减压浓缩至固形物含量为 40 wt%， 得提取 液 2。

[0077] (5) 碱法热处理： 将残渣 1与去离子水按料液比 1: 16 g/mL混合， 180 r/min匀速 搅拌 25 min， 加入氢氧化钠调节 pH值至 8.0， 60°C下 180 r/min匀速搅拌 40 min， 得 混悬液 1。

[0078] (6) 蛋白酶酶解： 在混悬液 1中加入蛋白酶， 加入量为混悬液 1中残渣 1质量的

5% , 诺维信公司的碱性蛋白酶 NS37071的加入量占总酶量的 70%， 诺维信公司的 复合蛋白酶的加入量占总酶量的 30%， 58°C下 180 r/min匀速搅拌， 酶解 16 h， 96 °C灭酶 30 min， 得混悬液 2。

[0079] (7) 高速离心： 混悬液 2采用 8000 g离心 25 min后， 取上清液得提取液 3。

[0080] (8) 超滤去杂： 采用超滤膜超滤分离提取液 3 , 超滤膜分子量为 lOOOODa,超滤 次数为 6次， 弃去大分子截留液， 取小分子滤出液， 得提取液 4, 60°C减压浓缩， 得固形物含量为 10 wt%的提取液 5。

[0081] (9) 二次蛋白酶酶解： 在提取液 5中加入蛋白酶， 加入量为提取液 5固形物含 量的 6%， 南宁庞博生物工程公司的胰酶的加入量占总酶 量的 80%， 诺维信公司 的复合蛋白酶的加入量占总酶量的 20%， 50°C下 180 r/min匀速搅拌， 酶解 4 h， 96 °C灭酶 30 min， 得混悬液 3。

[0082] ( 10) 高速离心： 混悬液 3采用 8000 g离心 25 min后， 取上清液， 得提取液 6。

[0083] ( 11) 减压浓缩： 将提取液 6在 60°C下减压浓缩至固形物含量为 40 wt%， 得提 取液 7。

[0084] ( 12) 醇沉去杂： 向提取液 7中加入预冷至 8。(：的无水乙醇， 使体系中的乙醇含 量达到 20 wt%， 180 r/min匀速搅拌 5 h后， 8000 g离心 30

min, 取上清液得提取液 8。

[0085] ( 13) 二次减压浓缩： 将提取液 8在 60°C下减压浓缩至固形物含量为 40 wt%， 得提取液 9。 [0086] ( 14) 复配： 将步骤 (4) 所得提取液 2和步骤 ( 13) 所得提取液 9在 85°C下， 1

80 r/min勻速搅拌 50 min， 得提取液 10。

[0087] ( 15) 喷雾干燥： 将提取液 10进行喷雾干燥， 得辣木叶提取物 3 , 酚类化合物 含量为 10.3%， 肽类物质含量为 44.1%。

[0088] 对比例 4

[0089] 一种具有降尿酸活性的辣木叶提取物的制备方 法， 具体包括如下步骤：

[0090] ( 1) 微波干燥： 微波功率 600W下， 将新鲜辣木叶微波干燥 3 min， 得到干辣木 叶。

[0091] (2) 粉碎过筛： 将步骤 ( 1) 所得干辣木叶粉碎后过 40目筛， 得到辣木叶干粉

[0092] (3) 水-乙醇回流提取： 将步骤 (2) 所得辣木叶干粉与乙醇浓度为 80 vol %的 乙醇水溶液按料液比 1: 10 g/mL混合， 180 r/min匀速搅拌条件下， 90。(：下回流提 取 3 h， 600( ^离心 30 min， 取上清液得提取液 1。

[0093] (4) 减压浓缩： 将提取液 1在 60°C下减压浓缩至固形物含量为 40 wt%， 得提取 液 2。

[0094] (5) 喷雾干燥： 将提取液 2进行喷雾干燥， 得辣木叶提取物 4, 酚类化合物含 量为 23.8%。

[0095] 对比例 5

[0096] 一种具有降尿酸活性的辣木叶提取物的制备方 法， 具体包括如下步骤：

[0097] ( 1) 微波干燥： 微波功率 600W下， 将新鲜辣木叶微波干燥 3 min， 得到干辣木 叶。

[0098] (2) 粉碎过筛： 将步骤 ( 1) 所得干辣木叶粉碎后过 40目筛， 得到辣木叶干粉

[0099] (3) 碱法热处理： 将辣木叶干粉与去离子水按料液比 1: 16 g/mL混合， 180 r/min匀速搅拌 25 min， 加入氢氧化钠调节 pH值至 8.0， 60°C下 180

r/min勻速搅拌 40 min， 得混悬液 C51。

[0100] (4) 蛋白酶酶解： 在混悬液 C51中加入蛋白酶， 加入量为辣木叶干粉质量的 5

% , 诺维信公司的碱性蛋白酶 NS37071的加入量占总酶量的 70%， 诺维信公司的 复合蛋白酶的加入量占总酶量的 30%， 58°C下 180 r/min匀速搅拌， 酶解 16 h， 96 °C灭酶 30 min， 得混悬液 C52。

[0101] (5) 高速离心： 混悬液 C52釆用 8000 g离心 25 min后， 取上清液得提取液 A53

[0102] (6) 超滤去杂： 采用超滤膜超滤分离提取液 A53 , 超滤膜分子量为 lOOOODa,超 滤次数为 6次， 弃去大分子截留液， 取小分子滤出液， 得提取液 A54, 60°C减压 浓缩， 得固形物含量为 10 wt%的提取液 A55。

[0103] (7) 二次蛋白酶酶解： 在提取液 A55中加入蛋白酶， 加入量为提取液 A55固形 物含量的 6%， 南宁庞博生物工程公司的胰酶的加入量占总酶 量的 80%， 诺维信 公司的复合蛋白酶的加入量占总酶量的 20%， 50°C下 180 r/min匀速搅拌， 酶解 4 h ， 96°C灭酶 30 min， 得混悬液 C53。

[0104] (8) 高速离心： 混悬液 C53采用 8000 g离心 ² 5

min后， 取上清液， 得提取液 A56。

[0105] (9) 减压浓缩： 将提取液 A56在 60°C下减压浓缩至固形物含量为 40 wt%， 得 提取液 A57。

[0106] ( 10) 醇沉去杂： 向提取液 A57中加入预冷至 8。(：的无水乙醇， 使体系中的乙醇 含量达到 20 wt%， 180 r/min匀速搅拌 5 h后， 8000 g离心 30 min， 取上清液得提取 液 A58。

[0107] ( 11) 二次减压浓缩： 将提取液 A58在 60°C下减压浓缩至固形物含量为 40 wt%

， 得酶解提取液 A59。

[0108] ( 12) 喷雾干燥： 将混合提取液 A59进行喷雾干燥， 得辣木叶提取物 5 , 酚类化 合物含量为 2.9%， 肽类物质含量为 37.4%。

[0109] 高尿酸血症大鼠模型的实验研究：

[0110] ( 1) 实验动物： 雄性 SD大鼠， 21 d龄， 100-110 g , 购于广东省医学实验动物 中心。

[0111] (2) 动物饲养环境： 室温 22±2°C， 相对湿度 50%~70%， 每日光照黑暗各 12小 时， 饮用水采用反渗透紫外灭菌水。

[0112] (3) 动物实验： 适应性饲养 7天结束后， 随机分为实验组、 正常组 ( 12只) 。 实验组大鼠每天灌胃氧嗪酸钾 （2g/kg） ， 7天后， 腹腔注射 3%戊巴比妥钠 （30 mg/kg体重） 麻醉， 眼眶后静脉丛采血， 4°C、 3000 g离心 15 min取上层血清测定 尿酸含量， 正常组大鼠灌胃等容积的溶媒。 将尿酸含量 的大鼠确定为 造模成功。 将造模成功的大鼠随机分为模型对照组， 别嘌呤醇组 （25 mg/kg） ， 辣木叶提取物 1组 （500 mg/kg） 、 辣木叶提取物 2组 （500 mg/kg） 、 辣木叶提取 物 3组 （500 mg/kg） , 辣木叶提取物 4组 （500 mg/kg） 和辣木叶提取物 5组 （500 mg/kg） ， 每组 12只， 灌胃给药 （给药容积 10mL/kg） ， 模型大鼠给予等容积的 蒸馏水。 连续处理 30天。 药物处理第 15、 30天， 腹腔注射 3%戊巴比妥钠 （30 mg/kg） 麻醉， 眼眶后静脉丛采血， 4°C、 3000 g离心 15 min取上层血清测定尿酸 含量。 血清尿酸严格按照尿酸检测试剂盒 （南京建成生物工程研究所） 说明进 行操作和测定。

[0113] 动物实验结果分析

[0114] 表 1辣木叶提取物对高尿酸血症大鼠血清尿酸水� �的影响

[0115]

尿酸® (umol/L)

❹ 15 3()天

: £常组 0.23 b S75S±13.22ii 模型组 2{6.33 ^. "a 27531土 24:S5a 252 _' 3M3 m 别嚷吟醇组 2iOJ7A2633a 49.H8±10.04e 52Jfc：i2 i0e 練木叶擬取物 I 2I069.t3()I0a I7L69^20,S2c !59.95^iS.41c 辣木叶提取 _ 2 219.43土 3!編 I6758±i9.66c

猶本叶機取 ft 3 222J：fe27.06a I75J3；fc2S94c i5S,5?&2l.31c 諫木時擬觀物 4 2IIJ(&2938JS 225, ⁽ >7^30311> 215.73±24J2i> 嫁:相 !機取物 5 2I9.t(B：3I；03a 239.17*3099b 231.79±27.22{>

[0116] 不同字母表示同一时期组间具有显著性差异 _/? <0.05, 相同字母表示组间没有 显著性差异 0.05 [0117] 由表 1可知， 在造模后， 模型组、 别嘌呤醇组和 5个辣木叶提取物组的大鼠血清 尿酸水平要显著高于正常组 （n=12， ^ < 0.05） , 且四组的血清尿酸水平无显著 性差异 （n=12， ^ > 0.05） 。 在给药 15天和 30天时， 别嘌呤醇组和 5个辣木叶提 取物组的尿酸水平均显著低于模型组 （n=12， ^ < 0.05） , 说明辣木叶提取物能 显著降低高尿酸血症大鼠血清尿酸水平， 其中， 辣木叶提取物 1,2, 3在体内的降 尿酸作用最好。 然而， 辣木叶提取物 4的制备流程中缺少了辣木叶肽的提取及复 合； 辣木叶提取物 5的制备流程中缺少了辣木叶多酚的提取及复� �； 辣木叶提取 物 4， 5组的大鼠血清尿酸水平显著高于辣木叶提取� � 1， 2， 3组 （n=12，

< 0.05） 。

[0118] 本发明实施例可见， 整个制备工艺流程简单、 各环节均可达食品级要求， 制备 成本低。

[0119] 以上实施例仅为本发明较优的实施方式， 仅用于解释本发明， 而非限制本发明 ， 本领域技术人员在未脱离本发明精神实质下所 作的改变、 替换、 修饰等均应 属于本发明的保护范围。