技术领域

本发明涉及药物化学领域， 具体而言， 涉及多西环素在制备抗肿瘤药 物中的应用。 背景技术

多西环素 "Doxycycline" (也称为强力霉素） ， 属于四环素类抗生素， 是众所周知且应用广泛的抗生素。 四环素类药物主要作用于细菌核蛋白体 30S亚基， 干扰氨基酸 tRNA与 30S亚基上的作用位点结合， 阻断氨基酰 tRNA与核糖体 -mRNA复合体结合， 抑制蛋白质合成 , 同时也可以改变细 胞膜的通透性， 使胞内重要物质核苷酸等外露， 抑制 DNA合成， 从而达到 抑菌的效果。 多西环素是四环素类药物中药效较强的和应用 较广的一个类 型（Adimora AA., 2002; Kovacova E, et al., 2002)。 关于多西环素目前在临床 上主要是用于治疗上呼吸道感染、胆道感染、 尿路感染,老年慢性支气管炎、 急慢性气管炎、 肺炎、 支气管炎、 蜂窝组织炎等症状。

到目前为止， 多西环素在肝癌、 乳腺癌、 肺癌、 胰腺癌、 结肠癌、 黑 色素瘤等恶性肿瘤中的应用尚无报道。 肝癌、 乳腺癌、 肺癌、 胰腺癌、 结 肠癌、 黑色素瘤等恶性肿瘤是高发性疾病， 由于上述恶性肿瘤普遍具有转 移和侵袭的能力， 因此一旦发生上述疾病， 则难以治愈， 会对人类健康造 成的 4艮大的危害。 而针对肝癌、 乳腺癌、 肺癌、 胰腺癌、 结肠癌、 黑色素 瘤等恶性肿瘤的现有抗肿瘤药物不仅抗肿瘤活 性低， 且价格昂贵， 病人往 往难以承受， 甚至有些病人因为不能承受昂贵的价格而放弃 了治疗机会。 因此， 迫切需要开发新的抗肿瘤生长、 转移或侵袭的药物。 发明内容

针对现有技术中抗肿瘤药物的抗肿瘤活性低且 价格 贵等缺陷， 本发 明的目的在于提供多西环素在制备抗肿瘤药物 中的应用。 为了达成上述目的， 本发明提供了多西环素在制备抗肿瘤药物中的 应 用， 其中， 所述多西环

在制备抗肿瘤药物中的应用中， 所涉及的肿瘤包含： 乳腺癌、 肝癌、 黑色素瘤、 肺癌、 胰腺癌、 结肠 或它们的组合。

在制备抗肿瘤药物中的应用中， 抗肿瘤药物的应用， 包括作为细胞毒 性药物在抗肿瘤生长的抑制剂中的应用、作为 抗肿瘤转移的药物中的应用、 或作为抗肿瘤侵袭的药物中的应用。

在制备抗肿瘤药物中的应用中， 抗肿瘤药物包含有效治疗量的多西环 素， 或其在药学上可接受的盐， 或酯以及辅料。

在制备抗肿瘤药物中的应用中， 抗肿瘤药物的有效治疗量为 100m _g /k _g ~300mg/kg。

在制备抗肿瘤药物中的应用中， 抗肿瘤药物选自片剂、 胶嚢剂、 丸剂、 口月良液体制剂、 颗粒剂、 散剂、 注射剂或它们的组合。

在制备抗肿瘤药物中的应用中， 抗肿瘤药物的给药方式包括口服、 注 射、 植入、 外用、 喷雾、 吸入或它们的组合。

本发明提供的抗肿瘤药物的优势在于， 患者易于接受且便于了解患者 对药物的反应、 价格低廉、 容易获取。 此外， 多西环素将会改变已有肿瘤 化疗药物的市场格局， 成为一种可长期服用， 且有效抑制肿瘤转移、 侵袭 和复发的临床药物。

本发明所使用的多西环素为多西环素盐酸盐， 购自上海生工 （生产批 号 DB0889-25g ) 。 多西环素盐酸盐的化学结构式为： 附图说明

图 1 示出了」 ；西环素对人乳腺癌细胞系 MCF-7的抑制作用； 图 2 示出了」 ''西环素对人肝癌细胞系 HepG-2的抑制作用；

图 3 示出了」 ；西环素多西环素对小鼠黑色素瘤 B-16细胞的抑制作用 图 4 示出了」 ''西环素对人小细胞肺癌细胞 NCI-H446的抑制作用； 图 5 示出了」 ''西环素对胰腺癌细胞 PC-3的抑制作用；

图 6 示出了」 ''西环素对人结肠癌细胞 LOVO的抑制作用；

图 7 示出了」 ''西环素对 MCF-7细胞迁移的影响；

图 8示出了 西环素对 HepG2细胞的迁移的影响；

图 9 示出了」 ；西环素对 B16细胞迁移的影响；

图 10示出了 %西环素对人小细胞肺癌细胞 NCI-H446迁移的影响； 图 11示出了 ^西环素对胰腺癌细胞 PC-3迁移的影响；

图 12示出了 %西环素对人结肠癌细胞 LOVO迁移的影响；

图 13示出了 ^西环素对荷瘤小鼠肿瘤大小的抑制作用；

图 14示出了 ^西环素对荷瘤小鼠肿瘤生长状态的影响。 具体实施方式

下面将结合本发明实施例中的附图， 对本发明实施例中的技术方案进 行清楚、 完整地描述， 显然， 所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例， 而不是全部的实施例。 基于本发明中的实施例， 本领域普通技术人员所获 得的所有其他实施例， 都属于本发明保护的范围。

发明人经过大量的实验研究证实了， 四环素结构的多西环素的抗肿瘤 的活性。 具体实施方式如下。

下述实施例中， 所用的试验材料及其来源包括： 多西环素盐酸盐，购自上海生工（生产批号： DB0889-25g );高糖 DMEM 培养基， RIPM 1640培养基， 胎牛血清 FBS ( Hy clone品牌） 购自 Thermo 公司； 四曱基噻唑蓝 （ MTT ) 购自美国 Sigma公司； 96孔板（ Nunc品牌 ) 购自 Thermo公司； Hochest 33342购自碧云天生物技术有限公司； DMSO 购自美国 Sigma公司； C57/BL小鼠购自上海斯莱克实验动物有限公司。 实施例 1 多西环素对不同肿瘤细胞生长的抑制作用测试

多西环素用 DMSO配置成 30 mM的母液并储存.， 使用时用培养液稀 释至使用浓度。

选用细胞系为：人乳腺癌细胞系 MCF-7(培养基为： RIPM 1640加 10% FBS , 购自北京金紫晶生物医药技术有限公司）； 人肝癌细胞系 HepG-2 (培 养基为： DMEM高糖培养基加 10% FBS, 购自北京金紫晶生物医药技术有 限公司） ； 小鼠黑色素瘤 B-16细胞 （培养基为： RIPM 1640加 10% FBS , 购自北京金紫晶生物医药技术有限公司 ) ； 人小细胞肺癌细胞 NCI-H446 (培养基为： RIPM 1640加 10% FBS , 购自南京凯基生物科技发展有限公 司 ) ； 胰腺癌细胞 PC-3 (培养基为： RIPM 1640加 10% FBS , 购自南京凯 基生物科技发展有限公司）； 人结肠癌细胞 LOVO (培养基为： RIPM 1640 加 10% FBS , 购自南京凯基生物科技发展有限公司） 。

实验方法为 MTT比色法：检测原理为活细胞线粒体中的琥珀 酸脱氢酶 能使外源性 MTT还原为水不溶性的蓝紫色结晶曱瓒（ Formazan )并沉积在 细胞中， 而死细胞无此功能。 二曱基亚砜（DMSO ) 能溶解细胞中的曱瓒， 用酶联免疫检测仪在 490 nm波长处测定其光吸收值，可间接反映活细胞� �� 量。 在一定细胞数范围内， 曱瓒结晶形成的量与细胞数成正比。 该方法已 广泛用于一些生物活性因子的活性检测、 大规模的抗肿瘤药物筛选、 细胞 毒性试验以及肿瘤放射敏感性测定等。

具体实验步骤为： 细胞经胰蛋白酶消化后， 分散成单个细胞， 并使其 悬浮在相应培养基中。 将细胞接种于 96孔培养板上， 4000 cells/孔。 置于 37摄氏度二氧化碳（5% )培养箱中过夜培养， 使细胞贴壁。 第二天， 弃去 培养液， 加入含一系列多西环素浓度的细胞培养液（具 体浓度在每种细胞 结果中述及），并设置不加药物浓度的对照孔 。置于 37摄氏度二氧化碳（ 5 % ) 培养箱培养 48小时后，每孔加入 20 μ MTT母液（母液浓度为 5 mg/mL ) , 继续孵育 4 h。 然后将培养液吸出， 每孔加入 150 μ DMSO作溶剂溶解曱 瓒 , 溶解后用酶标仪（ Multiscan FC , Thermo公司产品 )测定 490 nm处的 吸光度， 按下式计算细胞存活率：

(实验组 OD/对照组 OD) x l 00 %

实验结果 1 多西环素对人乳腺癌细胞系 MCF-7的抑制作用

多西环素对人乳腺癌细胞系 MCF-7 的细胞毒性的剂量响应曲线如附 图 1所示。 所用的多西环素的浓度为： 0 μΜ、 0.39063 μΜ、 0.78125 μΜ、 1.5625 μΜ、 3.125 μΜ、 6.25μΜ、 12.5 μΜ、 25 μΜ、 50 μΜ、 100 μΜ。 从图 1中可以看出 100 μΜ时， MCF-7细胞的存活率为 20%。多西环素对 MCF-7 细胞增殖的抑制达到了 80%。表明多西环素对 MCF-7细胞的增殖有很好的 抑制效果。

实验结果 2 多西环素对人肝癌细胞系 HepG-2的抑制作用。

多西环素对人肝癌细胞系 HepG-2的细胞毒性的剂量响应曲线如附图 2 所示。 所用的药物浓度为： 0 μΜ、 0.39063 μΜ、 0.78125 μΜ、 1.5625 μΜ、 3.125 μΜ、 6.25μΜ、 12.5 μΜ、 25 μΜ、 50 μΜ、 100 μΜ。 从图 2中可以看 出， 多西环素浓度为 100 μΜ时， HepG-2细胞的存活率为 80%。 多西环素 对 HepG-2细胞增殖的抑制率达到 20%。表明多西环素对 HepG-2细胞增殖 有一定的抑制效果。

实验结果 3多西环素对小鼠黑色素瘤 B-16细胞的抑制作用

多西环素对小鼠黑色素瘤 B-16细胞毒性测试结果如附图 3所示。所用 的药物浓度为： 0 μΜ、 0.78 μΜ、 1.56 μΜ, 3.125 μΜ、 12.5 μΜ、 25 μΜ、 50 μΜ、 100 μΜ。 从图中可以看出， 药物浓度为 100 μΜ时， 细胞的存活率 为 0.04%。 多西环素对 B-16细胞增殖的抑制率达到 99.6%。 表明多西环素 对 B-16细胞增殖有非常好的抑制效果。

实验结果 4多西环素对人小细胞肺癌细胞 NCI-H446的抑制作用

多西环素对人小细胞肺癌细胞 NCI-H446测试结果如附图 4所示。 所 用的多西环素的浓度为： 0 μΜ、 0.78μΜ、 1.5625 μΜ、 3.125 μΜ、 6.25 μΜ、 12.5 μΜ、 25 μΜ、 50 μΜ、 100 μΜ、 200 μΜ。 从图中可以看出， 药物浓度 为 200 μΜ 时， 细胞的存活率为 29%。 多西环素对人小细胞肺癌细胞 NCI-H446 增殖的抑制率达到 71%。 表明多西环素对人小细胞肺癌细胞 NCI-H446增殖有艮好的抑制效果。

实验结果 5 多西环素对胰腺癌细胞 PC-3的抑制作用

多西环素对人胰腺癌细胞 PC-3的毒性测试结果如附图 5所示。所用的 药物浓度为： 0 μΜ、 1.563 μΜ、 3.125 μΜ、 6.25 μΜ、 12.5 μΜ、 25 μΜ、 100 μΜ、 200 μΜ。 从图中可以看出， 药物浓度为 200 μΜ时， 细胞的存活 率为 74%。 多西环素对人胰腺癌细胞 PC-3增殖的抑制率达到 26%。表明多 西环素对人胰腺癌细胞 PC-3的增殖有一定的抑制效果。

实验结果 6 多西环素对人结肠癌细胞 LOVO的抑制作用

多西环素对人结肠癌细胞 LOVO的毒性测试结果如附图 7所示。 所用 的药物浓度为： 0 μΜ、 0.781μΜ、 1.563 μΜ、 3.125 μΜ、 6.25 μΜ、 12.5 μΜ、 25 μΜ、 100 μΜ、 200 μΜ。 从图中可以看出， 药物浓度为 200 μΜ时， 细 胞的存活率为 79%。 多西环素对人结肠癌细胞 LOVO 增殖的抑制率达到 21%。 表明多西环素对人结肠癌细 LOVO的增殖有一定的抑制效果。 实施例 2 体外细胞水平检测多西环素对细胞迁移的影响

实验方法:

细胞经胰蛋白酶消化后， 分散成单个细胞， 并使其悬浮在相应培养基 中。将细胞接种于 96孔培养板上， 4000 cells/孔。置于 37 °(二氧化碳（ 5% ) 培养箱中过夜培养， 使细胞贴壁。 第二天， 弃去培养液， 加入含一系列浓 度受试物（多西环素） 的培养液。 第二天， 吸弃培养液， PBS洗细胞两次， 加入 Hochest 33342(溶解在 pH 7.4的碑酸盐緩冲液中，终浓度为 5 g/mL ) 染色液 50 μ!7孔， 37 °C二氧化碳（5% )培养箱中孵育 20 min。 吸弃染色 液， PBS 洗两次， 加入含有一定浓度待测药物的培养液。 然后放在高内涵 分析平台 ArrayScanVTI ( Thermo公司生产）上进行实时动态监测， 测试药 物对细胞迁移的影响。

多西环素对细胞的影响， 可以通过高内涵分析平台自带的软件进行分 析。 药物对细胞迁移速率的影响主要通过得到的平 均距离-时间图中的曲线 的斜率来显示。 斜率越大， 细胞的迁移速率越快， 斜率越小， 表明细胞的 迁移速率越慢。

实验结果 1多西环素对 MCF-7细胞迁移的抑制

多西环素对 MCF-7细胞迁移的抑制作用如图 7所示。 图中 D7是对照 组， D8 , D9是加药组， D8组药物浓度为 20 μΜ, D9组药物浓度为 4 μΜ。 从图中可以看出， 加药组细胞的运动曲线的斜率明显小于对照组 的。 证明 多西环素对 MCF-7细胞的迁移有明显的抑制作用。

实验结果 2. 多西环素对 HepG-2细胞迁移的抑制

多西环素对 HepG-2细胞迁移的抑制作用如图 8所示。 图中 C6是对照 组， C7 , C8是加多西环素组， C7 , C8组药物浓度均为 20 μΜ。 从图中可 以看出， 加药组细胞的运动曲线的斜率明显小于对照组 的。 证明多西环素 对 HepG-2细胞的迁移有抑制作用。

实验结果 3 多西环素对 B16细胞迁移的抑制

多西环素对 B16细胞迁移的抑制作用如图 9所示。 图中 B6是对照组， B7 , B8是力。药组， B7组药物浓度为 4 μΜ, Β8组药物浓度为 20 μΜ。 图 中可以看出， 加药组细胞的运动曲线的斜率明显小于对照组 的。 证明多西 环素对 B16细胞的迁移有明显的抑制作用。

实验结果 4 多西环素对 NCI-H446细胞迁移的抑制

多西环素对 NCI-H446细胞迁移的抑制作用如图 10所示。 图中 D11是 对照组， D9 , D10是加药组， D9组药物浓度为 4 μΜ, D10组药物浓度为 20 μΜ。 图中可以看出， 加药组细胞的运动曲线的斜率明显小于对照组 的。 证明多西环素对 NCI-H446细胞的迁移有明显的抑制作用。

实验结果 5 多西环素对 PC-3细胞迁移的抑制

多西环素对 PC-3细胞迁移的抑制作用如图 11所示。图中 C2是对照组， C3 , C4, C5为加药组， 药物浓度均为 20 μΜ。 图中可以看出， 加药组细胞 的运动曲线的斜率小于对照组的。证明多西环 素对 PC-3细胞的迁移有一定 的抑制作用。

实验结果 6 多西环素对 LOVO细胞迁移的抑制 多西环素对 LOVO细胞迁移的抑制作用如图 12所示。 D2是对照组， C9 , CIO , C11为加药组， C9药物浓度均为 20 μΜ, C10药物浓度为 10 μΜ, Cl l药物浓度为 4 μΜ。 图中可以看出， 加药组细胞的运动曲线的斜率明显 小于对照组的。 证明多西环素对 LOVO细胞的迁移有一定的抑制作用。 实施例 3 多西环素对黑色素瘤小鼠模型的影响

小鼠荷瘤模型的建立实验方法：

1. B-16细胞悬液的制备： 细胞经胰蛋白酶消化后， 800 rpm离心， 将细胞用 PBS重悬， 再次离心， 洗去残余的培养基。 细胞计数 后， 将细胞制成 l x l0 ⁷ cells/mL的细胞悬液。

2. 荷瘤小鼠模型的建立： 取 C57/BL小鼠 10只， 随机分为 2组， 黑色素瘤细胞接种于 C57BL/6小鼠鼠蹊部皮下， 每只小鼠接种 100 μ ₀

3. 接种细胞后 ,观察小鼠肿瘤的生长时间和小鼠肿瘤的生长� �点。

待小鼠肿瘤生长至可触及时， 进行给药。

4. 将多西环素用生理盐水配制成 10 mg/ml。 取一组小鼠作为实验 组， 腹腔注射多西环素， 每只老鼠给药 50 mg/kg。 另外一组小 鼠作为对照组， 腹腔注射生理盐水作为对照。 每天给药， 并每 天测量给药组和对照组的肿瘤的体积。给药六 天后， 处死小鼠， 并取肿瘤组织做成切片， 进行组织形态学分析。

实验结果：

多西环素对荷瘤小鼠肿瘤大小的抑制作用如图 13所示 （C: 对照组， 不给药， 只给生理盐水； DOX: 多西环素给药组） ， 多西环素给药组小鼠 肿瘤的体积明显小于对照组， 而且多西环素组小鼠的肿瘤体积比较均一， 这显示了多西环素对小鼠黑色素瘤的生长有很 好的抑制作用。

多西环素对荷瘤小鼠肿瘤生长状态的影响如图 14 ( C: 对照组， 不给 药， 只给生理盐水； DOX: 多西环素给药组） 所示： 对照组肿瘤体积大， 血管丰富， 侵犯腹膜， 中间坏死少； 多西环素给药组， 肿瘤体积小， 血管 稀少， 不侵腹膜易于剥离， 中间大量坏死。 与对照组相比， 多西环素给药 组的肿瘤转移侵袭不明显。 显示了， 多西环素具有一定的抗肿瘤转移侵袭 的能力。

通过实施例 1 可知， 当多西环素的浓度为 100 μΜ 时， 多西环素对 MCF-7 细胞增殖的抑制率达到了 80%、 对 HepG-2 细胞增殖的抑制率为 20%、对 B-16细胞增殖的抑制率达到 99.6%。 当多西环素的浓度为 200 μΜ 时， 多西环素对人小细胞肺癌细胞 NCI-H446增殖的抑制率达到 71%、 对 人胰腺癌细胞 PC-3增殖的抑制率达到 26%、 对人结肠癌细胞 LOVO增殖 的抑制率达到 21%。 通过实施例 2可知， 加药组细胞的运动曲线的斜率小 于对照组， 证明多西环素对 MCF-7细胞、 HepG-2B16细胞、 NCI-H446细 胞、 PC-3细胞、 LOVO细胞的迁移均有一定的抑制作用。 从而说明多西环 素对乳腺癌、 肝癌、 黑色素瘤、 肺癌、 胰腺癌、 结肠癌类的恶性肿瘤细胞 的增殖和迁移均有不同程度的抑制作用。 通过实施例 3可知， 多西环素给 药组的 d、鼠肿瘤的体积均小于对照组小鼠， 多西环素给药组的 d、鼠的肿瘤 大小比较均一， 没有出现恶性生长； 同时发现， 多西环素可以明显的抑制 肿瘤对腹膜的侵袭。

通过以上的实验可以看出多西环素在制备抗肿 瘤药物中的用途。 同时 本发明的多西环素具有其它药物不可比拟的优 势， 患者易于接受且便于了 解患者对药物的反应、 价格低廉、 容易获取。 此外， 多西环素将会改变已 有肿瘤化疗药物的市场格局， 逐步成为一种可长期服用， 且有效抑制肿瘤 转移、 侵袭和复发的临床药物。

以上所述仅为本发明的较佳实施例而已， 并不用以限制本发明， 凡在 本发明的精神和原则之内， 所作的任何修改、 等同替换、 改进等， 均应包 含在本发明的保护范围之内。